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Heft 20 Kurze Originalmitteilungen 491 1964 (Jg. 5t) Etude subsidide par le Centre Technique et Scientifique de la Brasserie et de la Malterie. Laboratoire de Biochimie, Universitd de Gand, Belgique I. F. DUMITRU*), RITA VERBEEK U. L. MASSART Eiugegangen am 14. April 1964 *) Fellow dans le cadre des 6changes culturels entre l'Universit6 de Gaud et la Romnanie. Adresse actuelle: Facultatea de Biologic, Catedra de Biochimie, Bueuresti, Roumanie. 1) MASSART,L.: Rev. fermentations et inds. aliment. 12 (6), 289 (1957). -- ~) SU~r CHR. VAN, H. HILDERSON et L. MASSART: Naturwissenschaften 45, 292 (1958).- ~) MASSART, L., H. HILDERSON, et CHR. VAN SUM~RE: Eur. Brew. Cony., Proc. of the Congr. Rome, P. 7. Amsterdam: Elsevier Publ. Co. 1959. -- 4) SUMERE, C.F. VAN, C. VAN SUMERE-DE PRETER, L.C. VINING et G.A. LEDINGHAM : Can. J. MicrobioI. 3, 847 (1957). - - 5) KNYPL, J.S.: Naturwissen- schaften sl, 117 (1964). -- 6)BRINGS, D.E.: J. Inst. Brewing 67 427 ( 1 9 5 1 ) . - 7)MAYER, A.M., et A. POLJAKOFF-MAYBER: Plant Growth Regulation, p. 735. Ames: Iowa State University Press 1961. - - 8) LAVOLLAY, J., et F. LABOREY: Compt. rend. 232, 2348 (1951). - - 9) JONES, D.F., J. MAC MILLAN et M. RADLEY: Phyto- chemistry 2, 307 (1963). On three New Species of Noeggerathiopsis FEISTMANTEL 1) The cuticutar structure of some leaves assigned to N. his- lopi, has been described by ZEILLXR2), SEWARD and SAHI~Ia), FIOEG and BOSE a) and SAX~NAS). AS the cuticles described by these authors are markedly different, we collected a large number of leaves of Noeggerathiopsis from the Lower Gond- wanas of Madhya Pradesh, India. Our leaves show three different types of cuticular structure, which we recognize as three new species. None of them can be assigned to N. hiM@i, Fig. I Fig. 3 Fig. 2 Fig. 1. Noeggerathiopsisbunburyana n. sp. Lower cuticle showing a stomatiferous area between rows of cells of two nonstomatiferous areas on either side. Note the ill-defined rows and the darker surface of subsidiary cells, • 200 Fig. 2. Noeggerathiopsis papillosa i1. sp. Lower cuticle showing a few stomata and papillae. (Some papillae of the subsidiary cells overarch the guard cells), • 500 Fig. 3. Noeggerathiopsis ]ibrosa n, sp. Lower cuticle of stomatiferous area showing numerous ill-defined rows of stomata, • 120 because its type (V. 19649) in the British Museum (Nat. Hist.) is without carbon. Brief diagnoses of the new species are outlined below : N. bunburyana n. sp. (Fig. 1). Leaf form and concentration of veins like N. hislopi (10--13 per cm near base, 13--19 else- where). Lamina amphistomatic, cuticles thick : Upper showing rectangular cells all over, cells arranged in rows parallel to veins, stomata few. Lower cuticle showing alternately arranged nonstomatiferous and stomatiferous bands respectively above and between veins. Cells of nonstomatiferous bands like those in upper cuticle, those of stomatiferous bands shorter, poly- gonal, and less regularly arranged. Surface of cells sometimes showing thickened papillae and cntin folds. Stomata numerous, haplocheilic, arranged in t--8 ill-defined rows per stomati- ferous band. Stomata of adjacent rows generally alternating, guard cells sunken, longitudinally orientated, subsidiary cells usually six, non-papillate, polars usually distinct from laterals. Holotype Pant Collection No. 1 t00. N. papillosa n. sp. (Fig. 2). Form, concentration of veins and cuticles mostly like those of N. bunburyana but lamina hypostomatic. Most ceils of nonstomatiferous and stomati- ferous bands in lower cuticle show prominent thickly cutinized hollow papillae with rounded ends. Stomata as in N. bun- buryana but arranged in 2--8 rows per band and subsidiary cells often papillate. Holotype No. t t 54. N. /ibeosa n. sp. (Fig. 3). Form like N. bunburyana but often with fibres between veins and concentration of veins 9--tl per cm in basal region, 12--t6 elsewhere. Lamina hypostomatic. Cuticles like N. bunburyana but upper and nonstomatiferous bands in lower showing cutin folds and sometimes a few papillae. Lower cuticle of nonstomatiferous bands and margins often showing rows of thick-wailed fibrous cells. Stomata like those of N. papillosa but arranged in 8--t7 rows per band and only their polar subsidiaries some- times papillate. Holotype No. l 170. The occurrence of interstitial fibres in N. ]ibrosa leaves little by way of generic distinction between Noeggeeathiopsis and Cordailes but a detailed comparison of the two genera will be made in a fuller report. Department o/ Botany, University o[ Allahabad, India D. ]). PANT and B. K. V~RMA Eingegangen am 6. April t964 1) FEISTMANTEL, O.: Pal. Indica (Mem. Geol. Surv. India) [12] 3 (1879/80). - - 2) ZEILLER, R.: Bull. soc. g6oL France [3] 24, 349 (t896). -- s) SEWARD, A.C., and B. SATIN1: Pal. Indiea (N.S.) (Mem. Geol. Surv. India) 7, 5 (1920).- 4)HOEG, O.A., and M.N. BosE: Ann. mus4e roy. Congo Belge, S6r. Sci. g6ol. 32, 39 (1960). - - s) SAXENA, S.D.: Palaeobotanist 11 (1, 2), 25 (1963). Die Aminosiiurezusammensefzung von Laccase aus Podospora anserina Bet dem Ascomyceten Podospora anse- rina kennt man eine Reihe yon nicht ge- koppelten Genen, die einen Einflul3 auf die Synthese der Phenoloxydasen habenl). Von den beiden Phenoloxydasen (Laecase und Tyrosinase), die yon diesem Pilz ge- bildet werden2), konnte bisher die Laecase in reiner Form dargestellt werden3). Als Grundlage fiir eine Analyse der Mutanten- Laccasen erschien es uns angebracht, zu- n~tehst die qualitative und quantitative Aminosiiurezusammensetzung der Laeease des Wildstammes zu bestimmen. Die Reinigung der Lacease erfolgte nach der Vorschrift yon ESSER et al.8). Zur Hydrolyse wurde das Enzym mit 6 n Salzs~ure 16 Std in einem zuge- schmolzenen R6hrehen auf a t5~ erhitzt. Das im Vakuum bet 30 bis 40 ~ C getroek- nete Hydrolysat ISsten wir ill 0,2 m Na- triumcitratpuffer, pH 2,2. Die Bestimmung der Aminos~turen wurde mit Hilfe des Beckman-Aminosiiureanalysators (Mod. 120) nach der Methode yon SPACKMAN et al. a) durchgeffihrt. Zum Nachweis der Amino- s/iuren (auger Tryptophan) benutzten wir das Ninhydrincyanid-Reagenz nach ROSEN et aI.S). Tryptophan wurde spektrophoto- metrisch bestimmt 6). Die Ergebnisse unserer Untersuchungen sind in Fig. t zusammengefaf3t. Aus diesen Daten l~il3t sich folgendes ent- nehmen: Die Podospora-Laccase enthXlt kein Cystin. Diese Aminos~iure fehlt ebenfalls in der funktionell verwandten Tyrosinase aus NeurosporaT). Der auff~illig hohe Gehalt an AminodicarbonMiuren deutet auf eine schwach negative La- dung des Proteins hin. Dies kommt auch in dem isoelektrischen Punkt der Laccase yon pH 5,13) zum Ausdruck. Da es sich bet der Laccase um ein Glykoprotein handelta), haben wir die Aminozucker in einem getrennten Analysen- gang bestimmt. Das Enzym wurde mit 4 n SalzMiure 8 Std auf 100~ erhitzt und das Hydrolysat auf die 150 cm-S~iule des Aminos~iureanalysators gebracht. Zur Abtrennung der Aminozucker yon den aromatischen Aminosiiuren wurde der Pufferwechsel yon pH 3,25 auf ptI 4,25 nach 380 min durchgeffihrtS). W~Lhrend Glukosamin in relativ grogen Mengen vorliegt (t0,03 ~ 0,64 ~zMol/100 mg Protein, entspricht t,8 %), konnte Galaktosamin nur in Spuren 4O

On three new species ofNoeggerathiopsisFeistmantel

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Page 1: On three new species ofNoeggerathiopsisFeistmantel

Heft 20 Kurze Originalmittei lungen 491 1964 (Jg. 5t)

E tude subsidide par le Centre Technique et Scientifique de la Brasserie et de la Malterie.

Laboratoire de Biochimie, Universitd de Gand, Belgique

I. F. DUMITRU*) , RITA VERBEEK U. L. MASSART

Eiugegangen am 14. April 1964

*) Fellow dans le cadre des 6changes culturels entre l'Universit6 de Gaud et la Romnanie. Adresse actuelle: Facultatea de Biologic, Catedra de Biochimie, Bueuresti, Roumanie.

1) MASSART, L.: Rev. fermentations et inds. aliment. 12 (6), 289 (1957). -- ~) SU~r CHR. VAN, H. HILDERSON et L. MASSART: Naturwissenschaften 45, 292 (1958).- ~) MASSART, L., H. HILDERSON, et CHR. VAN SUM~RE: Eur. Brew. Cony., Proc. of the Congr. Rome, P. 7. Amsterdam: Elsevier Publ. Co. 1959. -- 4) SUMERE, C.F. VAN, C. VAN SUMERE-DE PRETER, L.C. VINING et G.A. LEDINGHAM : Can. J. MicrobioI. 3, 847 (1957). - - 5) KNYPL, J.S.: Naturwissen- schaften sl, 117 (1964). - - 6)BRINGS, D.E.: J. Inst. Brewing 67 427 ( 1 9 5 1 ) . - 7)MAYER, A.M., et A. POLJAKOFF-MAYBER: Plant Growth Regulation, p. 735. Ames: Iowa State University Press 1961. - - 8) LAVOLLAY, J., et F. LABOREY: Compt. rend. 232, 2348 (1951). - - 9) JONES, D.F., J. MAC MILLAN et M. RADLEY: Phyto- chemistry 2, 307 (1963).

On three New Species of Noeggerathiopsis FEISTMANTEL 1)

The cuticutar s t ruc ture of some leaves assigned to N. his- lopi, has been described by ZEILLXR2), SEWARD and SAHI~Ia), FIOEG and BOSE a) and SAX~NAS). AS the cuticles described by these au thors are markedly different, we collected a large n u m b e r of leaves of Noeggerathiopsis f rom the Lower Gond- wanas of Madhya Pradesh, India. Our leaves show three different types of cuticular s t ructure , which we recognize as three new species. None of them can be assigned to N. hiM@i,

Fig. I

Fig. 3 Fig. 2 Fig. 1. Noeggerathiopsis bunburyana n. sp. Lower cuticle showing a stomatiferous area between rows of cells of two nonstomatiferous areas on either side. Note the ill-defined

rows and the darker surface of subsidiary cells, • 200

Fig. 2. Noeggerathiopsis papillosa i1. sp. Lower cuticle showing a few stomata and papillae. (Some papillae of the subsidiary cells overarch the guard cells), • 500

Fig. 3. Noeggerathiopsis ]ibrosa n, sp. Lower cuticle of stomatiferous area showing numerous ill-defined rows of stomata, • 120

because its type (V. 19649) in the Brit ish Museum (Nat. Hist.) is wi thou t carbon. Brief diagnoses of the new species are outlined below :

N. bunburyana n. sp. (Fig. 1). Leaf form and concentra t ion of veins like N. hislopi (10--13 per cm near base, 13--19 else- where). Lamina amphis tomat ic , cuticles thick : Upper showing rec tangular cells all over, cells arranged in rows parallel to veins, s toma ta few. Lower cuticle showing al ternately arranged nons tomat i fe rous and s tomat i ferous bands respectively above and between veins. Cells of nons tomat i fe rous bands like those in upper cuticle, those of s tomat i ferous bands shorter, poly- gonal, and less regularly arranged. Surface of cells sometimes showing thickened papillae and cnt in folds. S tomata numerous , haplocheilic, arranged in t - - 8 ill-defined rows per s tomat i - ferous band. S toma ta of adjacent rows generally alternating, guard cells sunken, longitudinally orientated, subsidiary cells usually six, non-papillate, polars usual ly dist inct from laterals. Holotype Pan t Collection No. 1 t00.

N. papillosa n. sp. (Fig. 2). Form, concentrat ion of veins and cuticles most ly like those of N. bunburyana bu t lamina hypostomat ic . Most ceils of nons tomat i fe rous and s tomat i - ferous bands in lower cuticle show prominen t thickly cutinized hollow papillae wi th rounded ends. S toma ta as in N. bun- buryana but arranged in 2 - -8 rows per band and subsidiary cells often papillate. Holotype No. t t 54.

N. /ibeosa n. sp. (Fig. 3). Fo rm like N. bunburyana bu t often wi th fibres between veins and concentrat ion of veins 9 - - t l per cm in basal region, 12 - - t 6 elsewhere. Lamina hypostomat ic . Cuticles like N. bunburyana b u t upper and nons tomat i fe rous bands in lower showing cut in folds and sometimes a few papillae. Lower cuticle of nons tomat i fe rous bands and margins often showing rows of thick-wailed fibrous cells. S toma ta like those of N. papillosa bu t arranged in 8 - - t 7 rows per band and only their polar subsidiaries some- t imes papillate. Holotype No. l 170.

The occurrence of intersti t ial fibres in N. ]ibrosa leaves little by way of generic dist inction between Noeggeeathiopsis and Cordailes bu t a detailed compar ison of the two genera will be made in a fuller report .

Department o/ Botany, University o[ Allahabad, India

D. ]). PANT and B. K. V~RMA Eingegangen am 6. April t964

1) FEISTMANTEL, O.: Pal. Indica (Mem. Geol. Surv. India) [12] 3 (1879/80). - - 2) ZEILLER, R.: Bull. soc. g6oL France [3] 24, 349 (t896). - - s) SEWARD, A.C., and B. SATIN1: Pal. Indiea (N.S.) (Mem. Geol. Surv. India) 7, 5 ( 1 9 2 0 ) . - 4)HOEG, O.A., and M.N. BosE: Ann. mus4e roy. Congo Belge, S6r. Sci. g6ol. 32, 39 (1960). - - s) SAXENA, S.D.: Palaeobotanist 11 (1, 2), 25 (1963).

Die Aminosiiurezusammensefzung von Laccase aus Podospora anserina

Bet dem Ascomyceten Podospora anse- rina kennt m a n eine Reihe yon nicht ge- koppel ten Genen, die einen Einflul3 auf die Synthese der Phenoloxydasen habenl) . Von den beiden Phenoloxydasen (Laecase und Tyrosinase), die yon diesem Pilz ge- bildet werden2), konnte bisher die Laecase in reiner F o r m dargestell t werden3). Als Grundlage fiir eine Analyse der Mutanten- Laccasen erschien es uns angebracht , zu- n~tehst die qual i ta t ive und quan t i t a t ive Aminosi iurezusammensetzung der Laeease des Wilds tammes zu best immen.

Die Reinigung der Lacease erfolgte nach der Vorschrif t yon ESSER et al.8). Zur Hydrolyse wurde das E n z y m mit 6 n Salzs~ure 16 Std in einem zuge- schmolzenen R6hrehen auf a t 5 ~ erhitzt. Das im V a k u u m bet 30 bis 40 ~ C getroek- nete Hydro lysa t ISsten wir ill 0,2 m Na- t r iumci t ra tpuffer , p H 2,2. Die Bes t immung der Aminos~turen wurde mit Hilfe des Beckman-Aminosi iureanalysators (Mod. 120) nach der Methode yon SPACKMAN et al. a) durchgeffihrt. Zum Nachweis der Amino- s/iuren (auger Tryptophan) benutz ten wir das Ninhydr incyanid-Reagenz nach ROSEN et aI.S). T r y p t o p h a n wurde spekt rophoto- metr isch bes t immt 6).

Die Ergebnisse unserer Unte rsuchungen sind in Fig. t zusammengefaf3t. Aus diesen Daten l~il3t sich folgendes ent- nehmen: Die Podospora-Laccase enthXlt kein Cystin. Diese Aminos~iure fehlt ebenfalls in der funktionell ve rwandten Tyrosinase aus NeurosporaT). Der auff~illig hohe Gehalt an AminodicarbonMiuren deutet auf eine schwach negative La- dung des Proteins hin. Dies k o m m t auch in dem isoelektrischen P u n k t der Laccase yon p H 5,13) zum Ausdruck.

Da es sich bet der Laccase u m ein Glykoprotein handelta), haben wir die Aminozucker in einem get rennten Analysen- gang bes t immt. Das E n z y m wurde mi t 4 n SalzMiure 8 Std auf 100~ erhitzt und das Hydro lysa t auf die 150 cm-S~iule des Aminos~iureanalysators gebracht.

Zur Ab t rennung der Aminozucker yon den aromat ischen Aminosiiuren wurde der Pufferwechsel yon p H 3,25 auf p t I 4,25 nach 380 min durchgeffihrtS). W~Lhrend Glukosamin in relativ grogen Mengen vorliegt (t0,03 ~ 0,64 ~zMol/100 mg Protein, entspr icht t,8 %), konnte Galaktosamin nur in Spuren

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