Sommaire - Pôle laboratoires du CHU de NANCYchu-nancy.manuelprelevement.fr/Docs/polelaborato... · - Bon de laboratoire: feuille de couleur avec sachet intégré qui permet de transmettre

Sommaire

Procédure de réalisation de prélèvements biologiques ...............................................2

Fiche technique de prélèvement de liquide de drain ...................................................8

Fiche technique de prélèvement sanguin sur cathéters centraux veineux et artériels

(voie veineuse centrale, cathéter de dialyse, cathéter artériel)..................................10

Fiche technique de prélèvement de Liquide Céphalo-Rachidien (LCR)

sur dérivation externe ................................................................................................12

Fiche technique de prélèvement par écouvillonnage ................................................14

Fiche technique de prélèvement de peau et de phanères ........................................17

Fiche technique de prélèvement respiratoire ............................................................20

Fiche technique de prélèvement de sang artériel pour gazométrie ..........................23

Fiche technique de prélèvement sanguin veineux ....................................................25

Fiche technique de prélèvement sanguin capillaire en micro méthode.....................28

Fiche technique de prélèvement de dialysat péritonéal ............................................29

Fiche technique de prélèvement urinaire sur un recueil d’urines de 24 heures ........31

Fiche technique de prélèvement urinaire .................................................................32

Fiche technique de prélèvement de selles ...............................................................37

Fiche technique de prélèvement de lait maternel ....................................................38

Mode opératoire de prise en charge des prélèvements de patients suspects d’êtreinfectés par le nouveau coronavirus (NCo ou MERS-CoV) au CHU DE NANCY ......40

Réalisation de

Prélèvements biologiques Version 1

Applicable le : 07/08/2013

Rédaction Vérification Approbation

Marie Ange MORET Sylvain SALIGNAC Philippe JONVEAUX

« Seule la version électronique du document est valide » LABO210-PROC-0006 Page 1 sur 6

Sommaire

1. Objet ........................................................................................................................................ 2

2. Domaine d’application ........................................................................................................... 2

3. Référence(s) et document(s) annexe(s) ............................................................................... 2

3.1. Référence(s) .................................................................................................................................. 2 3.1.1. Références documents internes ................................................................................................................................... 2 3.1.2. Références externes .................................................................................................................................................... 2

3.2. Document(s) annexe(s) .................................................................................................................. 2

4. Définitions et abréviations .................................................................................................... 2

5. Responsabilités et personnes ressources .......................................................................... 3

5.1. Responsabilités .............................................................................................................................. 3 5.2. Personnes ressources ................................................................................................................... 3

5.2.1. Participants à la rédaction ......................................................................................................................................... 3 5.2.2. Référents ..................................................................................................................................................................... 3

6. Diffusion ................................................................................................................................. 3

7. Contenu .................................................................................................................................. 4

7.1 Logigramme .................................................................................................................................... 4 7.2 Description ...................................................................................................................................... 5

Procédure

Réalisation des prélèvements biologiques

LABO210-PROC-0006

Version 3



Marie ange MORET Christine JACOB, Sylvain SALIGNAC Philippe JONVEAUX


1. Objet Ce document a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter pour réaliser un prélèvement biologique conforme à la réglementation et en tenant compte de la chronologie des actions dans le but de maîtriser les risques.

2. Domaine d’application Cette procédure s’applique lors de tout prélèvement biologique réalisé par des professionnels de santé qui réalisent des prélèvements biologiques.

3. Référence(s) et document(s) annexe(s)

3.1. Référence(s)

3.1.1. Références documents internes

- Référentiel de prévention des risques d’exposition au sang et aux liquides biologiques - SRRM7761-PROC-0014 « Bracelet d'identification patients hospitalisés » - LABO210-FITEC-0001 « Prélèvement sanguin veineux »

- LABO210-FITEC-0002 « Prélèvement de sang artériel pour gazométrie »

- LABO210-FITEC-0003 « Prélèvement sanguin sur cathéters centraux veineux et artériels (voie veineuse centrale, cathéter de dialyse, cathéter artériel...) »

- LABO210-FITEC-0004 « Prélèvement de liquide de drain » - LABO210-FITEC-0005 « Prélèvement de lait maternel » - LABO210-FITEC-0006 « Prélèvement de Liquide céphalo-rachidien (LCR) sur dérivation

externe » - LABO210-FITEC-0007 « Prélèvement par écouvillonnage » - LABO210-FITEC-0008 « Prélèvement de peau et de phanères » - LABO210-FITEC-0009 « Prélèvement respiratoire » - LABO210-FITEC-0010 « Prélèvement sanguin capillaire en micro méthode » - LABO210-FITEC-0011 « Prélèvement de selles » - LABO210-FITEC-0012 « Prélèvement urinaire » - LABO210-FITEC-0013 « Prélèvement urinaire sur recueil d'urines de 24 heures » - LABO210-FITEC-0029 « Prélèvement de dialysat péritonéal » - LABO210-FITEC-0014 « Consigne d'utilisation d'un bon de laboratoire »

3.1.2. Références externes

- Norme NF EN ISO 15189 Laboratoire d’analyses de biologie médicale Exigences particulières

concernant la qualité et la compétence - Norme NF EN ISO 22870 Analyses de biologie délocalisées (ADBD) Exigences concernant la

qualité et les compétences - NF EN ISO/CEI 17025 Exigences générales concernant la compétence des laboratoires

d'étalonnages et d'essais - Manuel de certification des établissements de santé V2010 révisé 2011

3.2. Document(s) annexe(s)

NA

4. Définitions et abréviations

- Bon de laboratoire : feuille de couleur avec sachet intégré qui permet de transmettre un ou des


échantillons biologiques aux différentes structures du pôle Laboratoires. Ces documents permettent de retranscrire les prescriptions des cliniciens et de transmettre des informations concernant l’identité du patient, les renseignements cliniques, les traitements ou tout autre renseignement utile pour établir le diagnostic biologique.

- Prélèvement biologique : acte de soins qui consiste à prélever un échantillon biologique en vue

d’analyse

- Préleveur : professionnel de santé habilité à réaliser des prélèvements biologiques

5. Responsabilités et personnes ressources

5.1. Responsabilités

- Directeur du Laboratoire de Biologie Médicale - Coordonnateur Général des Soins - Cadres de Santé Supérieur - Cadres de Santé

5.2. Personnes ressources

5.2.1. Participants à la rédaction

- Karine BLOCH, Cadre de Santé, pôle Neuro Tête et Cou - Frédéric GIMENEZ, Ingénieur Qualité, Direction de la Qualité et des Usagers - Marie-Ange MORET, Cadre Supérieur de Santé, référent qualité et gestion de risques, Direction

de la Qualité et des Usagers - Caroline OLEON, Technicien de Laboratoire Médical, pôle Laboratoire - Lydia PROSIC, Technicien de Laboratoire Médical, pôle Laboratoire

5.2.2. Référents

- MA. MORET Cadre Supérieur de Santé référent qualité et gestion de risques

6. Diffusion Cette procédure concerne tous les professionnels de santé habilités à réaliser des prélèvements biologiques.


7. Contenu

7.1 Logigramme

Médecins

IDE - Interne –Externe - Manipulateur en radiologie - étudiant IDE -Technicien de Laboratoire Médical – Praticien

Prescription médicale D'examen biologique

Prise de connaissance de la prescription médicale

Préparation du ou des contenants(s), matériel(s) et bon(s) de laboratoire

Information du patient

Contrôle de l’identité du patient

Réalisation du prélèvement

Identification des contenants et des bons de laboratoire

Conditionnement des contenants dans les bons

d'examen

Échantillon prêt à être transporté

Rangement et nettoyage du poste de prélèvement

Renseignements obligatoires à compléter sur le ou les bons

de laboratoire

Feuille de prescription dans le dossier du patient

Manuel de prélèvement


7.2 Description

Prise de connaissance de la prescription médicale : Avant tout prélèvement, le préleveur doit :

- prendre connaissance de la prescription médicale afin de préparer au mieux le patient - préparer le matériel nécessaire en fonction de la nature du prélèvement : aiguille, sonde,

écouvillon, tubes, pots, désinfectant, compresses, bon de laboratoire…

Préparation du ou des contenant(s), matériel(s), et bon(s) de laboratoire : Le préleveur prépare :

- le ou les différent(s) contenant(s) qui seront nécessaires pour réaliser le prélèvement conforme à la prescription médicale

- les bons de laboratoire qui correspondent aux différents laboratoires dans lesquels seront envoyés les contenants prélevés de matériel biologique

- une planche d’étiquette d’identification du patient - une paire de gants à usage unique

Il doit connaître les différents contenants existants. En cas de difficultés, il peut :

- se référer au manuel de prélèvement, accessible à partir de l'intranet ou directement à l'adresse : http://chu-nancy.manuelprelevement.fr/

- appeler le centre de tri du Laboratoire de Biologie Médicale - appeler directement la structure du Laboratoire de Biologie Médicale concernée

Information du patient : Le préleveur se rend auprès du patient et lui explique l’acte qu’il s’apprête à réaliser. Selon la nature de la prescription médicale, un consentement éclairé peut être nécessaire pour la réalisation des examens biologiques. Le préleveur s’assure que le consentement a été signé par le patient lors de la prescription médicale. Si le patient refuse la réalisation du prélèvement biologique le préleveur doit rapidement informer le médecin prescripteur et notifier le refus du prélèvement par écrit dans le dossier du patient. Si le consentement éclairé n’est pas signé, le préleveur informe le prescripteur qui doit faire le nécessaire auprès du patient.

Contrôle de l’identité du patient : Le préleveur demande au patient de décliner son identité, sa date de naissance et d’épeler son nom. Il vérifie que les informations communiquées par le patient sont conformes aux informations écrites sur l’étiquette GAM. Si le patient est non communicant, le préleveur vérifie la concordance des informations contenues sur les étiquettes GAM de la planche qu’il va utiliser et celles figurant sur le bracelet d’identification au poignet du patient.

Réalisation du prélèvement : Le préleveur recueille le matériel biologique dans les contenants prévus à cet effet en respectant les fiches techniques :

- LABO210-FITEC-0001 « Prélèvement sanguin veineux »

- LABO210-FITEC-0002 « Prélèvement de sang artériel pour gazométrie »

- LABO210-FITEC-0003 « Prélèvement sanguin sur cathéters centraux veineux et artériels (voie

veineuse centrale, cathéter de dialyse, cathéter artériel...) » - LABO210-FITEC-0004 « Prélèvement de liquide de drain »

http://chu-nancy.manuelprelevement.fr/


- LABO210-FITEC-0005 « Prélèvement de lait maternel » - LABO210-FITEC-0006 « Prélèvement de Liquide céphalo-rachidien (LCR) sur dérivation

externe » - LABO210-FITEC-0007 « Prélèvement par écouvillonnage » - LABO210-FITEC-0008 « Prélèvement de peau et de phanères » - LABO210-FITEC-0009 « Prélèvement respiratoire » - LABO210-FITEC-0010 « Prélèvement sanguin capillaire en micro méthode » - LABO210-FITEC-0011 « Prélèvement de selles » - LABO210-FITEC-0012 « Prélèvement urinaire » - LABO210-FITEC-0013 « Prélèvement urinaire sur recueil d'urines de 24 heures » - LABO210-FITEC-0029 « Prélèvement de dialysat péritonéal »

Identification des contenants et des bons de laboratoire : Le préleveur colle sur le ou les différents contenants et bon(s) de laboratoire une étiquette GAM d’identification du patient. Il met le ou les contenant(s) dans les bons d’examens appropriés.

Rangement et nettoyage du poste de prélèvement : Le préleveur élimine tout le matériel utilisé à usage unique selon la procédure institutionnelle d’élimination des déchets et en respectant les recommandations du référentiel de prévention des risques d’exposition au sang et aux liquides biologiques. Il récupère tout le matériel non jetable pour le désinfecter et assure la désinfection du poste de travail.

Conditionnement des contenants : Le préleveur met les contenants appropriés dans les bons de laboratoire correspondants. Cette étape est réalisée auprès du patient sur le lieu de prélèvement. Elle a pour but d’éviter le mélange de tube et bon de laboratoire entre plusieurs patients lorsqu’il y a plusieurs prélèvements. Dans le cas d’examens biologiques à réaliser sur des urines de 24h, le préleveur peut être amené à conditionner un échantillon d’urine à partir du bocal de recueil d’urines de 24h00 sur un poste de travail différent et à distance du patient (par exemple local sale, office de décontamination, retour de soins...). Dans ce cas, il colle une étiquette d’identification du patient GAM sur le bocal de recueil avant de sortir de la chambre du patient. /!\ Il est formellement interdit d’étiqueter les contenants, les bons de laboratoires et remplir les bons de laboratoires à l’avance.

Renseignements obligatoires à compléter sur le ou les bons de laboratoire : Le préleveur remplit de façon exhaustive les renseignements demandés sur chaque bon de laboratoire en respectant les consignes sur la fiche technique LABO210-FITEC-0014 « Consigne d'utilisation d'un bon de laboratoire ». Pour certains examens biologiques, une fiche de renseignements spécifiques est demandée par le biologiste. Il est indispensable de la compléter et la mettre dans le bon de laboratoire. Les fiches de renseignements spécifiques sont disponibles dans le manuel de prélèvement.

Échantillon prêt à être transporté : Les prélèvements sont déposés au lieu de prise en charge défini institutionnellement par le service concerné ou transportés directement dans les structures du pôle Laboratoires.

Le préleveur trace dans le dossier de soins la réalisation du prélèvement et l’heure à laquelle il a été réalisé.

« Seule la version électronique du document est valide » LABO210-FITEC-0004 Page 1 sur 2

1 OBJET :

Cette fiche technique a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter pour réaliser un prélèvement de liquide de drain.

2 Personnes habilitées à réaliser l’acte :

Infirmier (e) diplômé(e) d’état, étudiant IDE

3 Matériel standard:

Gants à usage unique Masque et callot Tubes ou pots stériles Seringue Aiguille Collecteur à aiguille Pince à clamper Compresses

4 Technique

4.1 Drain :

Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre les gants à usage unique Clamper le drain 10 minutes avant le prélèvement en plaçant une compresse entre la pince à

clamper et le drain Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre les gants à usage unique

Cas d’un drain sans site de prélèvement : Déconnecter la tubulure au niveau du bocal de recueil Déclamper le drain Vider le liquide de drain dans le tube ou le pot stérile Réadapter la tubulure au bocal de recueil Enlever les gants Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

Cas d’un drain avec site de prélèvement : Désinfecter le septum du site de prélèvement avec l’antiseptique en vigueur Prélever le liquide avec la seringue

Fiche technique

Prélèvement de liquide de drain

LABO210-FITEC-0004

Version 2


Approbateur

Sylvain SALIGNAC


Vider le liquide de drain dans le tube ou le pot stérile Enlever les gants Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

4.2 Drain de Redon :

Réaliser un changement de Redon en respectant particulièrement les conditions d’asepsie (cf

fiche technique) Clamper l’orifice du flacon avant envoi au labo


1 Objet : Cette fiche technique a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter lors de la réalisation d’un prélèvement sanguin à partir d’un cathéter veineux ou artériel (voie veineuse centrale, cathéter de dialyse, cathéter artériel,…).

2 Personnes habilitées à réaliser l’acte : Infirmier (e) diplômé(e) d’état, Infirmier (e) de bloc opératoire diplômé (e) d’état, infirmier (e) anesthésiste diplômé d’état, puéricultrice, médecin, étudiants des métiers pré cités sous la responsabilité du professionnel chargé de l’encadrement et selon leur niveau d’apprentissage.

3 Matériel standard :

Masque de soins Gants à usage unique Collecteur d’aiguilles Antiseptique alcoolique en vigueur Compresses stériles Corps de sécurité pour prélèvement sanguin Tubes à prélèvement sous vide pour la prescription biologique 2 tubes secs 7mL pour purger le système Bouchon stérile Seringue de 20 mL Sérum physiologique 20 mL Ruban adhésif

4 Technique :

Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Préparer tout le matériel à proximité Mettre le masque Réaliser une friction au SHA Mettre les gants Ouvrir la protection :

o du robinet o de l’adaptateur

Visser le corps de sécurité du prélèvement sur l'adaptateur Utiliser des compresses imbibées de l’antiseptique alcoolique en vigueur pour toutes

manipulations du robinet Mettre l’adaptateur sur le robinet trois voies

Fiche technique

Prélèvement sanguin sur cathéters centraux veineux et artériels ( voie

veineuse centrale , cathéter de dialyse , cathéter artériel ... )

LABO210-FITEC-0003

Version 2


Approbateur

Sylvain SALIGNAC


ouvrir le robinet Purger le système avec les 2 tubes secs 7 mL Introduire un premier tube dans le corps du prélèvement, le sang s’écoule dans le tube Ne Retirer les tubes que lorsque le sang arrête de s’écouler complètement dans le

tube (vide totalement comblé) Agiter les tubes immédiatement après chaque retrait par des retournements lents en

respectant les recommandations du fabriquant Remplir les différents tubes en respectant l’ordre :

o Tube sec sans additif (bouchon rouge) o Tube citraté (bouchon bleu) o Tube avec gel activateur de la coagulation (bouchon jaune) o Tube hépariné (bouchon vert) o Tube EDTA (bouchon violet) o Tube pour VS (bouchon noir) o Tube fluoré (bouchon gris)

Fermer le robinet trois voies avant de retirer le dernier tube Jeter l’ensemble du dispositif de prélèvement dans le collecteur d’aiguilles Rincer le cathéter et le robinet trois voies (pas de trace de sang) Mettre un bouchon stérile si le robinet n’est plus utilisé Imbiber un paquet de compresses de Bétadine ® Entourer le robinet trois voies avec le paquet de compresses Noter le prélèvement sur la feuille de surveillance ou de prescription


1 Objet : Cette fiche technique a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter lors de la réalisation d’un prélèvement biologique de liquide céphalo rachidien (LCR) sur dérivation externe.


3 Matériel standard : Gants stériles à usage unique Surblouse, masque et calot Seringue stérile de 10 cc Compresses Champ stérile Antiseptique alcoolique Bouchon stérile Plateau vide stérile Tubes à prélèvement biologique

4 Technique :

Travailler avec une asepsie rigoureuse Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Clamper la dérivation externe Mettre un masque, une coiffe et une surblouse Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Sortir de l’emballage la seringue dans le plateau stérile Mettre le bouchon stérile dans le plateau stérile Ouvrir le champ stérile et 2 paquets de compresses imbibées d’antiseptique alcoolique Ouvrir le tube de prélèvement à l’aide compresses stériles Accéder au robinet proximal, enlever les compresses bétadinées Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre les gants stériles Glisser le champ stérile sous le robinet Désinfecter le robinet et le manipuler avec les compresses préalablement imbibées

d’antiseptique alcoolique Faire couler la première goutte dans des compresses Faire couler les gouttes suivantes (14 à 15 gouttes) dans le tube à prélèvement

Fiche technique

Prélèvement de Liquide Céphalo - Rachidien ( LCR ) sur dérivation

externe

LABO210-FITEC-0006

Version 2


Approbateur

Sylvain SALIGNAC


Fermer le robinet Remettre le bouchon stérile sur le tube de prélèvement Remettre des compresses imbibées sur le robinet proximal Enlever les gants Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Déclamper la dérivation externe Noter sur le diagramme de soins la réalisation et la quantité du prélèvement Important : en cas de difficultés d’écoulement de LCR, utiliser la seringue stérile : Désinfecter le robinet proximal Adapter la seringue au niveau du robinet proximal Aspirer très doucement 1 ml de LCR Transférer le prélèvement dans le tube Boucher le tube avec le bouchon stérile


1 Objet : Cette fiche technique a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter pour réaliser un prélèvement par technique d’écouvillon.



3.1 Prélèvement d’une plaie sur peau saine et non suintante :

Gants à usage unique Ecouvillon 1 ou plusieurs selon l’importance de la plaie Dosette de sérum physiologique stérile Antiseptique Ruban adhésif Compresses

3.2 Prélèvement de vésicules :

Gants à usage unique Kit de prélèvement (fourni par le laboratoire de Virologie) Aiguille sous cutané Container à aiguille

3.3 Prélèvement sur plaie aigue ou chronique :

Gants à usage unique Ecouvillons 2 à 3 selon l’importance de la plaie Dosette de à sérum physiologique stérile Pince et scalpel Ruban adhésif Compresses

3.4 Prélèvement du site opératoire :

Gants à usage unique Ecouvillons 2 à 3 selon l’importance de la plaie

Fiche technique

Prélèvement par écouvillonnage

LABO210-FITEC-0007

Version 2


Approbateur

Sylvain SALIGNAC


Dosette de sérum physiologique stérile Ruban adhésif Compresses

3.5 Prélèvement de nez, plis inguinaux ou axillaires :

Gants à usage unique Ecouvillon Dosette de sérum physiologique stérile

4 Technique :

4.1 Prélèvement d’une plaie sur peau saine et non suintante :

Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre les gants à usage unique Imbiber la partie cotonnée de l’écouvillon de sérum physiologique (1 à 2 gouttes de sérum

physiologique) Appliquer la partie cotonnée en effectuant plusieurs rotations pour récupérer le matériel

biologique Capuchonner l’écouvillon Enlever les gants Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

4.2 Prélèvement de vésicules :

Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre les gants à usage unique Percer la vésicule à l’aide de l’aiguille sous cutanée Gratter le planché de la vésicule en insistant sur les berges de la vésicule Plonger l’écouvillon dans le liquide de transport Casser l’écouvillon Capuchonner le kit de prélèvement contenant le milieu de transport Enlever les gants Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

4.3 Prélèvement sur plaie aigue ou chronique :

Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre les gants à usage unique Nettoyer la plaie à l’aide d’une compresse stérile de sérum physiologique stérile Eliminer les exsudats Procédure au débridement des tissus de la plaie si cela est nécessaire avec la pince et/ ou le

scalpel Rincer la plaie au sérum physiologique stérile Imbiber la partie cotonnée de l’écouvillon de sérum physiologique stérile (1 à 2 gouttes de sérum

physiologique) Appliquer la partie cotonnée en effectuant plusieurs rotations pour récupérer le matériel

biologique Capuchonner l’écouvillon Enlever les gants Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA


4.4 Prélèvement du site opératoire :

L’écouvillonnage simple de la cicatrice est strictement interdit, l’écouvillonnage n’est réalisé que dans le cas d’écoulement spontané. Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre les gants à usage unique Eliminer les exsudats Désinfecter la zone cutanée autour de la cicatrice à l’aide d’un antiseptique (cf protocole) Rincer au sérum physiologique abondamment pour éliminer les reliquats d’antiseptiques Imbiber la partie cotonnée de 2 ou 3 écouvillons de sérum physiologique stérile (1 à 2 gouttes de

sérum physiologique sur chaque écouvillon) Appliquer la partie cotonnée de chaque écouvillon en effectuant plusieurs rotations pour

récupérer le matériel biologique Capuchonner l’écouvillon Enlever les gants Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

4.5 Prélèvement plis inguinaux ou axillaires :

Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre les gants à usage unique Imbiber la partie cotonnée de l’écouvillon de sérum physiologique (1 à 2 gouttes de sérum

physiologique) Appliquer la partie cotonnée sur le site à prélever en effectuant plusieurs rotations pour récupérer

le matériel biologique Capuchonner l’écouvillon Enlever les gants Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

4.6 Prélèvement de nez :

Le prélèvement nasal est réalisé dans le cas de recherche de BMR ou dans les cas de recherche de virus respiratoire (cf. procédure institutionnelle)

Remarque : dans le cas de prélèvement de nez, un seul écouvillon à appliquer dans les 2 narines.

4.7 Prélèvement rectal :

Le prélèvement rectal est réalisé dans le cas de recherche de BMR cf document MESDOCS LABO4316-PROC-0007 Prise en charge de patients ERV Important : si le prélèvement est réalisé par le patient, il est indispensable de lui expliquer qu’il faut ouvrir l’écouvillon et faire le prélèvement avec la partie cotonnée de l’écouvillon.


1 Objet :

Cette fiche technique a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter pour réaliser unprélèvement de peau ou de phanères.

2 Personnes habilitées à réaliser l’acte :Infirmier (e) diplômé(e) d’état, Infirmier (e) de bloc opératoire diplômé (e) d’état, infirmier (e) anesthésistediplômé d’état, puéricultrice, médecin, étudiants des métiers pré cités sous la responsabilité duprofessionnel chargé de l’encadrement et selon leur niveau d’apprentissage.

3 Matériel standard:

3.1. Prélèvement de peau :

� Gant à usage unique� Collecteur d’aiguilles� Surblouse (selon le cas)� Vaccinostyle ou curette tranchante (grattoir de vidal), et/ ou scotch transparent, et/ ou

compresses stériles, selon le type de prélèvement� Récipient stérile (Boîte de Pétri stérile)� Lames porte objet

3.2. Prélèvement d’ongles :

� Gant à usage unique� Collecteur d’aiguilles� Vaccinostyle ou curette tranchante (grattoir de vidal)� Pinces à ongles� Récipient stérile (Boîte de Pétri stérile)

3.3. Prélèvement de cheveux ou de poils :

� Pince à épiler� Récipient stérile (Boîte de Pétri stérile)� vaccinostyle

4 Technique

4.1 Prélèvement de peau :

Le choix de la technique du prélèvement se fait selon le type d’examen à réaliser (Mesdocs, RéférentielLaboratoire)

U343013

Tampon


4.1.1 Technique dite du « Grattage » :

� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Préparer le matériel sur le chariot décontaminé avec le produit en vigueur� Mettre des gants à usage unique� gratter en périphérie la lésion afin de recueillir les squames à l’aide d’un vaccinostyle ou d’une

curette� Recueillir dans un récipient stérile (boîte de pétri stérile)� Jeter le vaccinostyle ou la curette dans le collecteur d’aiguilles� Enlever les gants� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

Cas particulier :

Pour la recherche de Sarcopte, le grattage doit être assez profond jusqu’à l’apparition d’une gouttelettede sang. Le port de la surblouse est obligatoire

4.1.2 Technique dite de « Compresses » :

� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Préparer le matériel sur le chariot décontaminé avec le produit en vigueur� Mettre des gants à usage unique� frotter énergiquement la lésion à l’aide d’une compresse stérile pendant au moins 30 secondes

par mouvement de rotation� Mettre la compresse dans un récipient stérile (boîte de pétri stérile)� Enlever les gants� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

4.1.3 Technique dite du « Scotch » :

� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Préparer le matériel sur le chariot décontaminé avec le produit en vigueur� Mettre des gants à usage unique� appliquer un ruban de cellophane adhésive transparent en périphérie de la lésion� coller et décoller le ruban plusieurs fois� coller le ruban sur une lame porte objet� Enlever les gants� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

4.2 Prélèvement d’ongles :

� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Préparer le matériel sur le chariot décontaminé avec le produit en vigueur� Mettre des gants à usage unique� Couper et éliminer le bord libre de l’ongle (permet d’éviter les souillures)� Prélever plusieurs morceaux d’ongles (≥ 6) dans un récipient stérile (boîte de pétri stérile) jusqu’à

la lisière de la partie saine/malade� Racler le lit de l’ongle pour récupérer la poudre nécessaire à la réalisation de l’examen direct

dans le même récipient stérile (boîte de pétri stérile)� Enlever les gants� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA


4.3 Prélèvement de cheveux ou poil :

� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Préparer le matériel sur le chariot décontaminé avec le produit en vigueur� Mettre des gants à usage unique� Prélever dans un récipient stérile (boîte de pétri stérile) au moins 10 cheveux malades à l’aide

d’une pince à épiler� Gratter en périphérie des lésions à l’aide d’un vaccinostyle pour récupérer les squames dans un

récipient stérile (boîte de pétri stérile)� Jeter le vaccinostyle dans le collecteur d’aiguilles� Enlever les gants� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA


1 Objet : Cette fiche technique a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter lors de la réalisation d’un prélèvement bronchique.


3 Matériel :

3.1 Prélèvement par aspiration nasale :

Masque de soins Gants à usage unique Aspirateur de mucosités avec connecteur universel Système d’aspiration fonctionnel avec pince stop-vide 1 pipette de sérum physiologique mouchoirs

3.2 Prélèvement pour une examen cytobactériologique des crachats ECBC

Masque de soins Gants à usage unique (UU) Pot stérile Masque aérosol Débimètre à air Pipette de sérum physiologique Mouchoirs

3.3 Mini Lavage Broncho Alvéolaire (LBA) à l’aveugle :

Gants à usage unique stériles Compresses stériles Masques, calots Combicath Champ fendu stérile Seringue de 10 ml Trocard Ampoule de Nacl 0,9 % 10 ml Système d’aspiration fonctionnel avec pince stop-vide Bouchon mâle femelle (luer lock) Antiseptique alcoolique

Fiche technique

Prélèvement respiratoire

LABO210-FITEC-0009

Version 2


Approbateur

Sylvain SALIGNAC


3.4 Prélèvement par aspiration trachéale :

CF. fiche technique institutionnelle du C.H.U. de Nancy - 5.1. – G – 3 Paragraphe 2 Masque de soins Gants à usage unique (UU) Pot stérile Aspirateur de mucosités avec connecteur universel Système d’aspiration fonctionnel avec pince stop-vide 1 pipette de sérum physiologique mouchoirs

4 Technique

4.1 Prélèvement par aspiration nasale :

Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Préparer le matériel sur le chariot de soins décontaminé avec les produits en vigueur Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre un masque et des gants à usage unique Installer le patient en position assise Incliner la tête du patient en arrière Demander au patient de ne pas inspirer et instiller le contenu de la pipette dans les narines du

patient Aspirer le contenu des narines avec l’aspirateur de mucosités avec connecteur universel Donner des mouchoirs au patient Désadapter la sonde de l’aspirateur à mucosités et la jeter, désadapter la pince stop-vide du

connecteur universel, casser le connecteur universel au niveau du raccord et adapter l’embout sur l’aspirateur de mucosités

Rincer le tuyau et la pince stop vide avec de l’eau stérile au travers du système de décontamination

Ranger la pince stop vide sur le support de décontamination. Retirer les gants. Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

4.2 Prélèvement pour une examen cytobactériologique des crachats ECBC

Prélèvement à réaliser de préférence le matin, au réveil ou à distance des repas, après rinçage bucco-dentaire à l’eau. Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Préparer le matériel sur le chariot de soins décontaminé avec les produits en vigueur Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre un masque et des gants à usage unique Mettre une protection sous le menton du patient Provoquer un effort de toux ou effectuer un aérosol de sérum physiologique qui favorise

l’expectoration faire expectorer le patient dans le pot stérile Essuyer la bouche du patient si besoin Evacuer les déchets Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

4.3 Mini Lavage Broncho Alvéolaire (LBA) à l’aveugle :

Le soin nécessite deux opérateurs, un opérateur prépare le matériel au fur et à mesure de la réalisation du prélèvement tandis que l’autre réalise le prélèvement.


Vérifier la fonctionnalité du système d’aspiration Régler la FIO2 à 100% durant la procédure Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA préparer le matériel sur le chariot décontaminé avec le produit en vigueur Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre le masque, la charlotte, les gants à usage unique Procéder à une aspiration trachéale Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre les gants stériles Mettre le champ fendu sur la sonde d’intubation Désinfecter l’opercule du cathéter double rotule (raccord annelé) à l’aide d’une compresse

imbibée d’antiseptique alcoolique Prélever 10ml de NaCl 0,9% à l’aide du trocard dans la seringue de 10ml Introduire le combicath à travers le cathéter double rotule jusqu’à une résistance Oter le bouchon du combicath Faire sortir la partie distale en ôtant l’ailette verte et pousser le cathéter interne aussi loin que

possible à travers le cathéter externe Injecter 10 ml de NaCl 0,9% et réaspirer doucement Mettre le bouchon luer lock sur la seringue

4.4 Prélèvement par aspiration trachéale

1 sonde d’aspiration = 1 aspiration Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA préparer le matériel sur le chariot décontaminé avec le produit en vigueur Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre une blouse et un masque de soins Vérifier le bon fonctionnement de l’aspiration en ouvrant le manomètre et en actionnant la pince

stop-vide Mettre des gants à usage unique non stériles Ouvrir le sachet de compresses, l’enveloppe de la sonde et l’enveloppe de l’aspirateur à

mucosités Adapter la sonde d’intubation à l’aspirateur de mucosités et la pince stop-vide au connecteur

universel Prendre une compresse stérile et retirer la sonde du sachet en la maintenant avec la compresse Ouvrir l’opercule du cathéter double rotule (raccord annelé) Introduire la sonde sans brutalité jusqu’au niveau souhaité dans la trachée (jusqu’à la garde de la

sonde) Actionner la pince stop-vide Retirer la sonde en aspirant et en effectuant un mouvement de rotation. Ne jamais faire de va-et-

vient Refermer l’opercule Désadapter la sonde de l’aspirateur à mucosités et la jeter, désadapter la pince stop-vide du

connecteur universel, casser le connecteur universel au niveau du raccord et adapter l’embout sur l’aspirateur de mucosités

Rincer le tuyau et la pince stop vide avec de l’eau stérile au travers du système de décontamination

Procéder à l’aspiration des sécrétions buccales avec une autre sonde Procéder à un nouveau rinçage de la pince stop vide et du tuyau Ranger la pince stop vide sur le support de décontamination Retirer les gants Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA


1. OBJET :Cette fiche technique a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter pour réaliser unegazométrie artérielle.

2. Personnes habilitées à réaliser l’acte :Infirmier (e) diplômé(e) d’état, interne, externe, médecin, étudiants des métiers pré cités.

3. Matériel standard:

� Gants à usage unique� Collecteur d’aiguilles� Antiseptique en vigueur� Ruban adhésif� Compresses stériles� Alcool modifié� Kit seringue auto pulsée à gaz du sang (système pré monté)� Bande de gaze de 3 cm de large

4. Technique

� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Réaliser le test Allen (documentation professionnelle)� Installer le champ de protection sous le membre à ponctionner si besoin� Positionner la main du patient en hyper extension pour une ponction radiale� Prendre les repères (prise du pouls)� Désinfecter largement la zone de ponction� Mettre les gants à usage unique� Aseptiser la zone de ponction� Positionner les doigts sur l’artère� Ponctionner à la base des doigts (aiguille à environ 90°), la seringue se remplit seule� Retirer le montage seringue-aiguille� Prendre une compresse stérile et comprimer au moins 5 minutes le point de ponction

tout en purgeant les bulles d’air� Eliminer l’aiguille dans le collecteur� Obturer la seringue� Remettre une compresse stérile� faire un bandage semi compressif afin d’éviter un saignement ultérieur� Transférer les prélèvements dans la glace ou réaliser immédiatement l’analyse sur

l’automate de biologie délocalisée de l’unité, le délai entre le prélèvement et la réalisationde l’analyse ne doit pas excéder 30 min

U343013

Tampon


Cas particulier du prélèvement pour gazométrie prélevé sur cathéter artériel :

Cf fiche technique Prélèvement sanguin sur cathéters centraux veineux et artériel(voie veineuse centrale, cathéter de dialyse, cathéter artériel, introducteur pour SwanGanz,…) :

� Commencer par désadapter l’aiguille de la seringue à gaz du sang du système prémonté

� Mettre l’adaptateur sur le robinet puis suivre la technique ci-dessus

Remarque :

Dans le cas ou la prescription comporte d’autres examens biologiques :

� Remplacer l’aiguille sur la seringue auto pulsée à gaz du sang (système pré monté) parl’aiguille à ailettes

� Prélever le gaz du sang� Désadapter la seringue en pinçant avec les doigts le prolongateur� Réadapter un corps de prélèvement� Effectuer le prélèvement en introduisant les tubes


1 Objet :

Cette fiche technique a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter pour réaliser un prélèvement sanguin veineux.

2 Personnes habilitées à réaliser l’acte : Infirmier (e) diplômé(e) d’état, technicien de laboratoire médical, manipulateur d’électroradiologie, médecin, biologistes, étudiants des métiers précités.


3.1 Prélèvement sanguin veineux sans prélèvement d’hémoculture :

Gants à usage unique Collecteur d’aiguilles Garot Antiseptique Ruban adhésif (type micropore) Compresses Dispositif de prélèvement :

o aiguille Eclipse ou prélèvement à ailettes o corps de sécurité

Tubes à prélèvement sous vide Champ de protection (type ABSORBEX) Pommade anesthésiante (type EMLA) si besoin

3.2 Prélèvement sanguin veineux avec prélèvement d’hémoculture :

Masque et calot obligatoire pour le prélèvement d’hémoculture Gants à usage unique stériles Collecteur d’aiguilles Garot Antiseptique Ruban adhésif (type micropore) Compresses Dispositif de prélèvement :

o aiguille Eclipse ou prélèvement à ailettes o corps de sécurité

Flacon d’hémoculture aérobie et flacon d’hémoculture anaérobie Tubes à prélèvement sous vide (si la prescription prévoit d’autres prélèvements sanguins) Champ de protection (type ABSORBEX) Pommade anesthésiante (type EMLA)

Fiche technique

Prélèvement sanguin veineux

LABO210-FITEC-0001

Version 2


Approbateur

Sylvain SALIGNAC


4 Technique :

4.1 Prélèvement sanguin veineux sans prélèvement d’hémoculture :

Appliquer une pommade anesthésiante si nécessaire Installer le patient confortablement en fonction du point de ponction Libérer le bras du patient de tout vêtement encombrant Installer une protection sous le membre à ponctionner si besoin Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Poser le garrot Repérer la veine avec l’index en exerçant de légères pressions Mettre les gants à usage unique Aseptiser la peau Préparer le dispositif de prélèvement sanguin en adaptant l’aiguille Eclipse ou le prélèvement à

ailette sur le corps de sécurité Introduire l’aiguille dans la veine Introduire un premier tube dans le corps du prélèvement, le sang s’écoule dans le tube Ne Retirer les tubes que lorsque le sang arrête de s’écouler complètement dans le tube

(vide totalement comblé) Agiter les tubes avec anticoagulants immédiatement après chaque retrait en respectant les

recommandations du fabriquant Remplir les différents tubes en respectant l’ordre :


Retirer le garrot Prendre une compresse Retirer le dispositif de prélèvement sanguin Comprimer le point de ponction avec la compresse Jeter l’ensemble du dispositif de prélèvement dans le collecteur d’aiguilles Fixer la compresse avec le ruban adhésif sur le point de ponction après le contrôle d’une bonne

hémostase Enlever les gants Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

4.2 Prélèvement sanguin veineux avec prélèvement d’hémoculture :

Appliquer une pommade anesthésiante si nécessaire Installer le patient confortablement en fonction du point de ponction Libérer le bras du patient de tout vêtement encombrant Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre le masque et le calot Installer le champ de protection sous le membre à ponctionner si besoin Poser le garrot Repérer la veine avec l’index en exerçant de légères pressions Mettre les gants à usage unique Aseptiser la peau Préparer le dispositif de prélèvement sanguin en adaptant l’aiguille Eclipse ou le prélèvement à

ailette sur le corps de sécurité


Introduire l’aiguille dans la veine Introduire en premier le flacon aérobie puis le flacon anaérobie Introduire les tubes en respectant l’ordre :


Ne Retirer les tubes que lorsque le sang arrête de s’écouler complètement dans le

tube (vide totalement comblé) Agiter les tubes avec anticoagulants immédiatement après chaque retrait par retournements

lents après chaque retrait en respectant les recommandations du fabriquant Retirer le garrot Prendre une compresse Retirer le système Vacutainer Comprimer le point de ponction avec la compresse Jeter l’ensemble du dispositif de prélèvement dans le collecteur d’aiguilles Fixer la compresse avec le ruban adhésif sur le point de ponction après le contrôle d’une bonne

hémostase Coller les étiquettes code barre présents sur les flacons d’hémoculture sur les bons d’examens

en respectant le flacon et le bon aérobie et anaérobie Enlever les gants Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

Remarque importante : chaque flacon aérobie et anaérobie doit être mis dans des bons de laboratoires différents. Les étiquettes code barres présents sur les flacons d’hémoculture doivent être collées sur chaque bon de laboratoire respectif.


1. Objet : Cette fiche technique a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter pour réaliser un prélèvement capillaire dans le but de recueillir des petites quantités de sang (quelques centaines de microlitres) dans des micro tubes adaptés aux analyses désirées.

2. Personnes habilitées à réaliser l’acte : Infirmier (e) diplômé(e) d’état, Infirmier (e) de bloc opératoire diplômé (e) d’état, infirmier (e) anesthésiste diplômé d’état, technicien de laboratoire, puéricultrice, médecin, étudiants des métiers pré cités sous la responsabilité du professionnel chargé de l’encadrement et selon leur niveau d’apprentissage.

3. Matériel standard : Gants à usage unique Collecteur d’aiguilles Antiseptique en vigueur Ruban adhésif Masque Compresses stériles Micro lancettes stériles à usage unique dont la pointe n’excède pas 2,5 mm Micro tubes avec porte tube Produit anesthésiant (type EMLA) Vaseline

4. Technique Installer le patient confortablement Choisir le point de ponction

o Bord externe ou interne du talon dans les premiers mois de vie de l’enfant en s’assurant que le pied est bien chaud

o Pulpe des doigts réchauffé si besoin (sous l’eau tempérée, frottement) Appliquer une pommade anesthésiante si nécessaire Libérer le point de ponction de tout vêtement encombrant Installer le champ de protection sous le membre à ponctionner si besoin Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Mettre les gants à usage unique Aseptiser la zone à ponctionner Piquer la zone à ponctionner avec une micro lancette à usage unique Essuyer la première goutte de sang sur une compresse Recueillir les gouttes de sang dans le micro tube en :

o exerçant des pressions douces autour du point de ponction o en relâchant légèrement le membre entre chaque pression pour assurer le retour du

flux sanguin capillaire o en agitant le micro tube entre chaque goutte s’il contient un anticoagulant

Désinfecter le point de ponction Mettre un pansement Eliminer la micro lancette dans le container d’aiguilles

Fiche technique

Prélèvement sanguin capillaire en micro méthode

LABO210-FITEC-0010

Version 2


Approbateur

Sylvain SALIGNAC


1 OBJET :

Cette fiche technique a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter pour réaliser un prélèvement aseptique de dialysat péritonéal en vue du diagnostic et du suivi cytobactériologique de péritonite chez un patient sous dialyse péritonéale.

2 Personnes habilitées à réaliser l’acte : Infirmier (e) diplômé(e) d’état, médecins, étudiant des métiers précités

3 Matériel :

3.1 Cas de la présence d’une tubulure (ligne) sans site de prélèvement

Gants à usage unique non stériles Masque et callot 1 Pot recueil urines 120ml 1 Tube bactériologie des urines 10ml bouchon vert 1 Tube chimie des urines 10ml bouchon beige 1 canule de transfert Vacutainer® Feuille de demande d’examen de Bactériologie

3.2 Cas de la présence d’une tubulure (ligne) avec site de prélèvement

Gants à usage unique non stériles Masque et callot matériel de désinfection selon protocole d’hygiène en vigueur 1 trocart rose 3 seringues de 60ml 1 seringue de 10ml 3 bouchons Luer Lock® stériles Feuille de demande d’examen de Bactériologie

4 Technique

Au moment du changement de poche de dialyse Drainer le dialysat, infusé depuis au moins 4 heures, vers une poche vide Réaliser une friction au SHA Clamper la tubulure de la poche de drainage Mettre les gants à usage unique

Fiche technique

Prélèvement de dialysat péritonéal

LABO210-FITEC-0029

Version 2


Approbateur

Sylvain SALIGNAC


4.1 Cas d’une ligne sans site de prélèvement

Désinfecter le raccord poche / ligne avec l’antiseptique en vigueur Déconnecter la tubulure au niveau du raccord poche / ligne Brancher la tubulure de la poche suivante ou mettre en place un bouchon stérile sur la ligne de

dialyse péritonéale Suspendre la poche contenant le dialysat drainé à la potence Déclamper la tubulure et recueillir environ 100 ml de dialysat dans le pot stérile Remplir les tubes de dialysat à l’aide de la canule de transfert Refermer hermétiquement le pot de recueil Enlever les gants à usage unique Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Etiqueter les tubes et le pot conformément aux bonnes pratiques d’identitovigilance Faire parvenir les prélèvements accompagnés de la feuille de demande d’examen

bactériologique dûment renseignée au laboratoire de bactériologie

4.2 Cas d’une ligne avec site de prélèvement

Désinfecter le septum du site de prélèvement avec l’antiseptique en vigueur Prélever à l’aide du trocart (ne piquer qu’une seule fois) 3 seringues 60 mL et 1 seringue 10 mL

de dialysat Boucher les seringues avec les bouchons stériles Enlever les gants à usage unique Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA Réaliser l’étiquetage de toutes les seringues conformément aux bonnes pratiques

d’identitovigilance Faire parvenir les prélèvements accompagnés de la feuille de demande d’examen

bactériologique dûment renseignée au laboratoire de bactériologie


1 Objet :

Cette fiche technique a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter pour réaliser unprélèvement urinaire à partir d’un recueil d’urines de 24 heures.



� Gants à usage unique� Collecteur d’aiguilles� Bocaux à urines pour recueil des urines de 24 heures� Cupule stérile� Dispositif de prélèvement :

o aiguille Eclipse ou prélèvement à ailetteso corps de sécurité

� Tube à prélèvement sous vide

4 Technique :

� Jeter les urines de la première miction matinale, noter l’heure = H0� Recueillir toutes les urines émises jusque H24 (y compris la dernière miction à H24)� Recueillir les urines de 24 h dans le(s) bocal(aux) prévu à cet effet� Noter le volume total recueilli� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Préparer le matériel sur le chariot de soins décontaminé avec le produit en vigueur� Mettre les gants� Transvaser un peu d’urines de chaque bocal* dans la cupule après les avoir homogénéisés� Prélever avec le dispositif à prélèvement les urines dans la cupule stérile� Introduire le(s) tube(s) dans le corps du prélèvement, l’urine s’écoule dans le tube� Ne Retirer le tube que lorsque l’urine s’arrête de s’écouler complètement dans le tube

(vide totalement comblé)� Désadapter le tube� Désadapter le dispositif de prélèvement� Jeter l’ensemble du dispositif dans le collecteur d’aiguilles� Enlever les gants� Faire une friction au SHA� Mettre des gants à usage unique� Eliminer les urines dans le vidoir� Enlever les gants� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

*le recueil des urines de 24 heures peut nécessiter plusieurs récipients

U343013

Tampon


1 OBJET :

Cette fiche technique a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter pour réaliser unprélèvement urinaire.



3.1 Prélèvement urinaire chez un patient non sondé et continent autonome :

� Gants à usage unique� Collecteur d’aiguilles� Antiseptique� Compresses stériles� Haricot� Cupule stérile� Dispositif de prélèvement :


� Tube à prélèvement sous vide ou pot (selon prescription)

3.2 Prélèvement urinaire chez un patient sondé :

� Gants à usage unique� Collecteur d’aiguilles� Antiseptique� Compresses stériles� Haricot� Dispositif de prélèvement :



3.3 Prélèvement urinaire chez un patient non sondé incontinent :

� Gants stériles à usage unique

U343013

Tampon


� Gants non stériles à usage unique� Masque, charlotte� Blouse de soins stérile� Collecteur d’aiguilles� Antiseptique� Compresses stériles� Champ stérile troué� Plat bassin, haricot� Sonde vésicale� Set de toilette de sondage urinaire� Lubrifiant� Cupule stérile� Dispositif de prélèvement :



3.4 Prélèvement urinaire chez un patient en pédiatrie non autonome et prélèvementurinaire avec sonde de néphrostomie :

� Gants à usage unique (UU)� Collecteur d’aiguilles� Antiseptique� Compresses stériles� Champ de protection� Haricot� poche Urinocol� Cupule stérile� Dispositif de prélèvement :



3.5 Prélèvement urinaire chez un patient avec stomie urinaire :

Pas d’antiseptique

� Gants à usage unique (UU)� Collecteur d’aiguilles� Compresses stériles� Compresses non stériles� Eau et savon doux� Protection à usage unique� Haricot� Plat bassin� Cupule stérile� Dispositif de prélèvement :




� Tube bactériologique à urine

4 Technique :

4.1 Prélèvement urinaire chez un patient non sondé et continent autonome :

Rôle du patient :

� Réaliser une toilette génito-urinaire à l’eau et au savon doux� Rincer, sécher� Réaliser une toilette génito-urinaire avec des compresses stériles et imbibées d’un

antiseptique� Eliminer le premier jet d’urines dans les toilettes� Recueillir le deuxième jet dans la cupule stérile

Rôle IDE

� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� préparer le matériel sur le chariot décontaminé avec le produit en vigueur� Mettre des gants à usage unique� Récupérer la cupule stérile� Prélever avec le dispositif à prélèvement les urines dans la cupule stérile� Introduire le (ou les) tube dans le corps du prélèvement, l’urine s’écoule dans le tube� Ne Retirer le tube que lorsque l’urine s’arrête de s’écouler complètement dans le

tube (vide totalement comblé)� Désadapter le tube� Désadapter le dispositif de prélèvement� Jeter l’ensemble du dispositif dans le collecteur d’aiguilles� Enlever les gants� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

4.2 Prélèvement urinaire chez un patient sondé :

� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Clamper la tubulure du sac collecteur de la sonde en aval du site de prélèvement pendant 10

minutes� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Préparer le matériel sur le chariot décontaminé avec le produit en vigueur� Imbiber les compresses d’antiseptique� Mettre des gants à usage unique� Décontaminer le site de prélèvement� Prélever avec le dispositif à prélèvement les urines� Introduire le (ou les) tube dans le corps du prélèvement, l’urine s’écoule dans le tube� Ne Retirer le tube que lorsque l’urine s’arrête de s’écouler complètement dans le tube

(vide totalement comblé)� Désadapter le tube� Désadapter le dispositif de prélèvement� Jeter l’ensemble du dispositif dans le collecteur d’aiguilles� Décontaminer le site de prélèvement� Déclamper la tubulure du sac collecteur de la sonde� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA


4.3 Prélèvement urinaire chez un patient non sondé incontinent :

� Installer le patient sur le plat bassin� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Préparer le matériel sur le chariot décontaminé avec le produit en vigueur� Poser la sonde vésicale selon la fiche technique de sondage vésical� Recueillir les urines dans la cupule stérile� Prélever avec le dispositif à prélèvement les urines dans la cupule stérile� Introduire le (ou les) tube dans le corps du prélèvement, l’urine s’écoule dans le tube� Ne Retirer le tube que lorsque l’urine s’arrête de s’écouler complètement dans le tube

(vide totalement comblé)� Désadapter le tube� Désadapter le dispositif de prélèvement� Jeter l’ensemble du dispositif dans le collecteur d’aiguilles� Enlever les gants� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

4.4 Prélèvement urinaire chez un patient en pédiatrie non autonome :

� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Préparer le matériel sur le chariot décontaminé avec le produit en vigueur� Installer le patient en cubitus dorsal� Mettre des gants à usage unique� Mettre une alèse de protection sous le patient� Réaliser une toilette génito-urinaire� Réaliser l’antisepsie selon la même procédure que la toilette génito-urinaire en utilisant

l’antiseptique adapté en pédiatrie� 1 compresse = 1 mouvement� Laisser une compresse d’antiseptique sur le méat urinaire� Retirer les gants� Réaliser une friction au SHA� Mettre des gants� Enlever la compresse� Apposer la poche à recueil d’urine de pédiatrie type Urinocole� Changer la poche au bout de 30 minutes en l’absence d’urine� Mettre des gants� Recueillir les urines dans la cupule stérile� Prélever avec le dispositif à prélèvement les urines dans la cupule stérile� Introduire le (ou les) tube(s) dans le corps du prélèvement, l’urine s’écoule dans le tube� Ne Retirer le tube que lorsque l’urine s’arrête de s’écouler complètement dans le tube


4.5 Prélèvement urinaire avec sonde de néphrostomie :

� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Préparer le matériel sur le chariot décontaminé avec le produit en vigueur� Mettre des gants à usage unique� Enlever le sac collecteur� Gants stériles� Réaliser une antisepsie de la peau ou de l’extrémité de la sonde� Tirer le piston d’une seringue de 20 cc stérile� Adapter la seringue sur l’extrémité de la sonde


� Faire boire le patient (production rapide d’urines)� L’urine remplit le réservoir de la seringue sans utiliser le piston afin de ne pas provoquer de

dépression ou surpression dans le rein (clampage et pompage avec la seringue interdit)� Retirer la seringue� Adapter une aiguille sur la seringue et introduire l’aiguille dans les tubes sous vide� Ne Retirer le tube que lorsque l’urine s’arrête de s’écouler complètement dans le tube


4.6 Prélèvement urinaire chez un patient avec stomie urinaire :

� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Préparer le matériel sur le chariot décontaminé avec le produit en vigueur� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Mettre des gants à usage unique� Mettre une protection sous la poche de stomie� Désadapter la poche de stomie� Faire une toilette de la stomie à l’eau et au savon doux à l’aide de compresses� Rincer, sécher la peau

La procédure diffère selon le type de stomie :

Cas de stomie type Bricker :

Dans la majorité des cas, la stomie est équipée d’un sonde, si ce n’est pas le cas, adapter unesonde vésicale puis réaliser le prélèvement comme indiqué dans le paragraphe 4.3

Cas de stomie type urétérostomie :

Réaliser le prélèvement comme indiqué dans le paragraphe 4.5

Cas particulier de stomie chez les enfants :

� Mettre la poche de recueil d’urine de type Urinocol� Changer la poche au bout de 30 minutes en cas d’absence d’urines*� Désadapter la poche Urinocol� Réadapter une poche de stomie et un socle� Recueillir les urines dans la cupule stérile� Prélever avec le dispositif à prélèvement les urines dans la cupule stérile� Introduire le (ou les) tube(s) dans le corps du prélèvement, l’urine s’écoule dans le tube� Ne Retirer le tube que lorsque l’urine s’arrête de s’écouler complètement dans le tube


* privilégier le prélèvement au moment d’un biberon dans la mesure du possible


1. Objet :

Cette fiche technique a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter pour réaliser unprélèvement de selles.

2. Personnes habilitées à réaliser l’acte :Infirmier (e) diplômé(e) d’état, Infirmier (e) de bloc opératoire diplômé (e) d’état, infirmier (e) anesthésistediplômé d’état, puéricultrice, médecin, étudiants des métiers pré cités sous la responsabilité duprofessionnel chargé de l’encadrement et selon leur niveau d’apprentissage.

3. Matériel standard:

� Gants à usage unique� Boite de recueil spécifique avec spatule� Plat bassin

4. Technique

� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA� Mettre les gants à usage unique� Donner le plat bassin au patient� préparer le matériel sur le chariot décontaminé avec le produit en vigueur� Prélever un échantillon de selles à l’aide de la spatule de la valeur d’une noix au minimum� Remettre le couvercle sur le pot� Enlever les gants� Se laver les mains ou réaliser une friction au SHA

Cas particuliers :

Patient avec protection individuelle : recueillir l’échantillon directement dans la protection individuelle.

Patient avec stomie : recueillir l’échantillon directement dans la poche de stomie.

Patient paraplégique : recueillir l’échantillon directement après extraction manuelle des selles

Remarque : les selles ne doivent pas être contaminées par l’urine dans toute la mesure du possible.

Dans le cas particulier du recueil dans une protection individuelle, si l’échantillon est souillé d’urine,effectuer le prélèvement sur le dessus des matières fécales.

U343013

Tampon


1. OBJET :

Cette fiche technique a pour objet de décrire les différentes étapes à respecter pour réaliser un prélèvement de lait maternel destiné à être envoyé au laboratoire.

2. Personnes habilitées à réaliser l’acte : Infirmier (e) diplômé(e) d’état, puéricultrice, auxiliaire de puériculture, aide soignant, étudiants des métiers pré cités

3. Matériel standard: Savon neutre liquide Biberons à usages uniques Embout de tire lait à usage unique Prise de vide Pot à recueil d’échantillons de lait spécifique fourni par le laboratoire de biologie Glacière

4. Technique :

4.1 Information et éducation de la maman :

Donner à la maman le livret « Guide des bonnes pratiques du recueil du lait maternel destiné à

son enfant hospitalisé » Commenter ce livret avec la maman Remplir et expliquer à la maman la procédure de recueil de lait à l’aide de « La grille d’évaluation

de la maman au recueil de son lait » Expliquer comment préparer les échantillons destinés aux prélèvements bactériologiques (cf.

paragraphe suivant) Expliquer les conditions de stockage et de transport des biberons et des échantillons (cf.

paragraphe suivant) S’assurer que la maman a bien compris à l’aide de la grille d’évaluation le bon déroulement du

recueil de lait

4.2 Technique de prélèvement :

Lavage de mains de la maman au savon doux en présence du personnel Toilette simple des seins mamelons avec un savon neutre liquide suivi d’un rinçage à l’eau et

d’un séchage avant chaque recueil, Brancher le tire lait à usage unique sur la prise de vide Adapter le biberon sur l’autre partie de tire lit Placer la partie d’aspiration sur le mamelon

Fiche technique

Prélèvement de lait maternel

LABO210-FITEC-0005

Version 2


Approbateur

Arnaud FLORENTIN


Aspirer le lait dans le biberon Etiqueter le biberon avec une étiquette GAM de l’enfant et préciser la date et l’heure du recueil,

le numéro de chambre Si le lait est destiné à être utiliser au-delà de 12 heures après le recueil, réaliser un

échantillonnage à chaque recueil de lait pendant 24h : mettre quelques millilitres de lait de chaque recueil dans le même pot stérile à bactériologie (couvercle rouge)

Noter la date sur l’étiquette de l’échantillon destiné au laboratoire Transmettre le prélèvement à la biberonnerie avec les biberons à congeler dans une glacière Noter le recueil dans le dossier de soin du patient afin que l’équipe se transmette cette

information en vue de récupérer le lait à la sortie de l’enfant La conservation des biberons se fait selon le mode opératoire « Bonnes pratiques de recueil et conservation du lait maternel à usage interne »

« Seule la version électronique du document est valide » LABO210-MOOP-0005 Page 1 sur 6

Sommaire

1. Objet ........................................................................................................................................ 2

2. Domaine d’application ........................................................................................................... 2

3. Référence(s) et document(s) annexe(s) ............................................................................... 2

3.1. Référence(s) .................................................................................................................................. 2 3.1.1. Références documents internes ................................................................................................................................... 2 3.1.2. Références externes .................................................................................................................................................... 2

3.2. Document(s) annexe(s) .................................................................................................................. 2

4. Définitions et abréviations .................................................................................................... 2

5. Responsabilités et personnes ressources .......................................................................... 2

5.1. Responsabilités .............................................................................................................................. 2 5.2. Personnes ressources ................................................................................................................... 2

5.2.1. Participants à la rédaction ......................................................................................................................................... 2 5.2.2. Référents ..................................................................................................................................................................... 2

6. Diffusion ................................................................................................................................. 3

7. Contenu .................................................................................................................................. 3

7.1. Logigramme ................................................................................................................................... 3 7.2. Patients concernés ........................................................................................................................ 4 7.3. Prélèvements ................................................................................................................................. 4

7.3.1. Prélèvements à destination du CNR ........................................................................................................................... 4 7.3.1.1 Matériels nécessaires ................................................................................................................................................................. 4 7.3.1.2 Prélèvements respiratoires ......................................................................................................................................................... 4 7.3.1.3 Autres prélèvements nécessaires ............................................................................................................................................... 5

7.3.2. Analyses autres que virologiques ............................................................................................................................... 5 7.4. Conditionnement des prélèvements ............................................................................................... 5

7.4.1. Prélèvements destinés aux analyses virologiques....................................................................................................... 5 7.4.2. Prélèvements destinés aux autres laboratoires du CHU ............................................................................................ 5

7.5. Acheminement des échantillons ..................................................................................................... 5 7.6. Modalités d'envoi au Centre National de Référence par le centre de tri ......................................... 6

Mode opératoire

Prise en charge des prélèvements suspects d'être infectés par le nouveau Coronavirus (NCo ou MERSCoV) au CHU de Nancy

LABO210-MOOP-0005

Version 5



Helene JEULIN Chantal FINANCE Evelyne SCHVOERER


1. Objet Ce document a pour objet de décrire les modalités de prise en charge des prélèvements de patients suspects d’être infectés par le Nouveau Coronavirus (NCoV ou MERS-CoV).

2. Domaine d’application Services cliniques du CHU de Nancy Plateforme de Génomique Microbienne (PFGM)

3. Référence(s) et document(s) annexe(s)

3.1. Référence(s)

3.1.1. Références documents internes

Procédures de gestion des non-conformités pré-analytiques Fiche technique LABO210-FITEC-0034 " Manipulations de prélèvements de patients suspects ou avérés de Nouveau Coronavirus (NCoV ou MERS-CoV)"

3.1.2. Références externes

- Norme NF EN ISO 15189 - COFRAC SH REF 02 Rév 01 juin 2012

Avis du Haut Conseil de la santé publique du 28 juin 2013 relatif à la prise en charge des patients suspects d’infections dues au nouveau coronavirus (MERS-CoV)

3.2. Document(s) annexe(s)

4. Définitions et abréviations MERS-CoV = NCoV : Middle East Respiratory Syndrome - Coronavirus = Nouveau Coronavirus CNR : Centre national de référence ARS : Agence régionale de santé InVS : Institut national de veille sanitaire

5. Responsabilités et personnes ressources

5.1. Responsabilités

Pr E. Schvoerer (Laboratoire de virologie) Pr C. Finance (Laboratoire de virologie) Dr V. Venard (Laboratoire de virologie)

5.2. Personnes ressources

5.2.1. Participants à la rédaction

Dr V. Venard (Laboratoire de virologie) Dr H. Jeulin (Laboratoire de virologie) Pr E. Schvoerer (Laboratoire de virologie)

5.2.2. Référents

Laetitia Lanista (cadre du laboratoire de virologie)


Pr C. Finance (Laboratoire de virologie) Dr V. Venard (Laboratoire de virologie) Dr H Jeulin (Laboratoire de virologie) Pr E. Schvoerer (Laboratoire de virologie) S. Berger (ingénieur PFGM)

6. Diffusion Personnel médico-technique de la plateforme de génomique microbienne pour application. Services cliniques du CHU Nancy

7. Contenu

7.1. Logigramme

Patient suspect

de NCoV

Prélèvement

et conditionnement

Acheminement au centre

de tri

Validation

par ARS / INVS

Levée de la suspicion

de NCoV

Non

Oui

Médecin

Médecin

Soignant

Validation de l'envoiBiologiste

Envoi au CNR

TLM

Acheminement au

Laboratoire de Virologie

Du lundi au vendredi de 8h30 à 17h

Le samedi de 8h30 à 12hDu samedi 12h au lundi 8h30

Prise en charge

au Laboratoire

Patient suspect

de NCoV

Prélèvement

et conditionnement

Acheminement au centre

de tri

Validation

par ARS / INVS

Levée de la suspicion

de NCoV

Non

Oui

Médecin

Médecin

Soignant

Validation de l'envoiBiologiste

Envoi au CNR

TLM

Acheminement au

Laboratoire de Virologie

Du lundi au vendredi de 8h30 à 17h

Le samedi de 8h30 à 12hDu samedi 12h au lundi 8h30

Prise en charge

au Laboratoire


7.2. Patients concernés

Tout cas suspect doit être signalé à la plate-forme Lorraine de veille et d'urgence sanitaire de l'ARS : 03 83 39 28 72 (fax : 03.83.39.29.73 ; [email protected]) En lien avec l’InVS, la plateforme classera ou non le cas en « possible » et se mettra en relation avec le CNR. Patients concernés par cette procédure de gestion des prélèvements : les cas possibles de MERS-CoV définis selon l'avis du Haut Conseil de la santé publique [Actualisations régulières des données épidémiologiques sur le site de l’InVS : http://www.invs.sante.fr/Actualites/Actualites/Surveillance-des-infections-liees-au-nouveau-coronavirus-NCoV-.-Point-au-19-juin-2013.]

7.3. Prélèvements

7.3.1. Prélèvements à destination du CNR

7.3.1.1 Matériels nécessaires

- 1 kit dédié au prélèvement de virus respiratoires, constitué d’un écouvillon et d’un milieu de transport (Kits UTM), disponibles au service de Maladies Infectieuses (Bâtiment Philippe Canton, Brabois), au SAMU (Hôpital Central) et au Service d'Accueil des Urgences pédiatriques (Hôpital d'enfants). - 2 Boîtes de transport triple emballage, disponibles au service de Maladies Infectieuses (Bâtiment Philippe Canton, Brabois), au SAMU (Hôpital Central) et au Service d'Accueil des Urgences pédiatriques (Hôpital d'enfants). - 1 tube sec, 1 tube EDTA Avant de réaliser les prélèvements, le soignant assure sa protection en respectant l’association des conditions de précautions complémentaires de type "air" et "contact".

7.3.1.2 Prélèvements respiratoires

Les prélèvements respiratoires doivent être réalisés le plus tôt possible dès l'admission du patient. J0 étant défini comme le premier jour d'apparition de la fièvre, des prélèvements réalisés avant J4 qui s'avèreraient négatifs pour le MERS-CoV doivent être répétés à partir de J4. Dans tous les cas, lors de ces prélèvements, les professionnels de santé seniors doivent respecter strictement l’application des mesures d’hygiène, précautions complémentaires de type « air » (en particulier le port d’un appareil de protection respiratoire FFP3 pour le soignant) et de type « contact ». Le patient et les soignants doivent se désinfecter les mains avec un SHA. Pour la recherche de MERS-CoV : Prélèvement des voies respiratoires basses Chez les patients non intubés/non ventilés : Pour les adultes :

Des échantillons des voies respiratoires basses peuvent être obtenus lors d’un effort de toux, une expectoration provoquée ou par aspiration trachéale.

Pour les enfants :

Le recueil d’une expectoration étant très difficile, on réalisera une aspiration naso-pharyngée immédiatement après une séance de kinésithérapie respiratoire (Expectoration provoquée).

Chez les patients dont l’état clinique a nécessité une intubation :

Qu’il s’agisse d’adultes ou d’enfants, le prélèvement des voies respiratoires basses est idéalement un lavage broncho-alveolaire effectué sous fibroscopie ou à défaut un autre prélèvement profond (prélèvement distal protégé, aspiration trachéale, mini-lavage alvéolaire dirigé par fibroscopie ou aveugle).

mailto:[email protected]


Pour la recherche des autres virus respiratoires : Ecouvillonnage nasal ou pharyngé • Les prélèvements naso-pharyngés doivent être réalisés avec un kit dédié aux prélèvements de virus respiratoires, constitué d’un écouvillon et d’un milieu de transport (Kits UTM).

• Réalisation du prélèvement : incliner la tête du patient, introduire l’écouvillon profondément dans la narine parallèlement au plancher du palais, bien frotter les parois pharyngées suffisamment haut dans chaque narine avec l'écouvillon puis plonger ce dernier dans le milieu de transport, casser la tige et bien refermer le tube.

7.3.1.3 Autres prélèvements nécessaires

Prélèvements de sang : 1 tube sec et 1 tube EDTA (pour sérologie et charge virale sérique) A réaliser systématiquement. Les prélèvements de selles ou écouvillonnage rectal seront réalisés en cas de diarrhée en respectant strictement l’application des mesures d’hygiène de type « contact ».

7.3.2. Analyses autres que virologiques

Le risque de contamination au cours de manipulations d'échantillons de sang total ou sériques est possible. En conséquence, il est nécessaire de limiter le nombre d'analyses. Si des analyses très urgentes doivent être réalisées sur des prélèvements (respiratoires, sanguins, urinaires, selles, LCR, etc), signaler la suspicion de Nouveau Coronavirus sur la demande au Laboratoire correspondant. Le personnel technique assure sa protection en respectant l’association des conditions de précautions complémentaires de type "air" et "contact" (cf Fiche technique Manipulations de prélèvements de patients suspects ou avérés de MERS-CoV (NCoV).

7.4. Conditionnement des prélèvements

! TOUT PRELEVEMENT, quelle que soit sa nature, doit circuler en triple emballage, y compris à l'intérieur de l'établissement !

7.4.1. Prélèvements destinés aux analyses virologiques

Deux boites "triple emballage" doivent être utilisées par patient

1 boite : 1 prélèvement respiratoire naso-pharyngé. + 1 tube EDTA + 1 tube sec

1 boite : 1 prélèvement respiratoire bas

! Joindre la feuille de renseignements cliniques (cf. annexe) à l'extérieur de la boite ! Préciser sur chaque boite : "suspicion de MERS-CoV " et le numéro de poste du service prescripteur qui permettra au virologue d'astreinte de s'assurer que la procédure a été intégralement appliquée. Les boites contenant les échantillons doivent être stockées et envoyées à 4°C (pas de congélation).

7.4.2. Prélèvements destinés aux autres laboratoires du CHU

Tous les prélèvements doivent être conditionnés en triple emballage : 1 boite / laboratoire destinataire

Préciser sur la boite ET sur la feuille d'accompagnement qu'il s'agit d'un cas possible de MERS-CoV.

7.5. Acheminement des échantillons

Les prélèvements à destination du Laboratoire de Virologie doivent être transportés par un agent de l'unité de soin informé au Laboratoire de virologie, du lundi au vendredi de 8h30 à 17h00 et le samedi de 8h30 à 12h, ou au Centre de tri de Biochimie de Brabois ou de Central en dehors de ces horaires, selon les règles applicables à tout prélèvement susceptible de contenir des germes dangereux, connus ou


non, sans utiliser le système pneumatique. Les autres prélèvements à destination des laboratoires du CHU doivent être transportés par un agent de l'unité de soin informé directement au laboratoire concerné, selon les règles applicables à tout prélèvement susceptible de contenir des germes dangereux, connus ou non, sans utiliser le système pneumatique.

7.6. Modalités d'envoi au Centre National de Référence par le centre de tri

Confer Fiche Technique "Manipulations de prélèvements de patients suspects ou avérés de Nouveau Coronavirus (NCoV ou MERS-CoV)". Aux prochaines heures ouvrables, le virologue qui a géré l'envoi prend contact avec le CNR par mail : [email protected].

Documents

Sommaire - Pôle laboratoires du CHU de NANCYchu-nancy.manuelprelevement.fr/Docs/polelaborato... · - Bon de laboratoire: feuille de couleur avec sachet intégré qui permet de transmettre