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Clonage positionnel du gène de résistance Pi33 du riz ACE1 - Pi33 AIP séquençage INRA JB Morel, D Tharreau UMR BGPI, Montpellier MH Lebrun Bioger, Grignon

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Clonage positionnel du gène de résistance Pi33 du riz

ACE1 - Pi33

AIP séquençage INRA

JB Morel, D TharreauUMR BGPI, Montpellier

MH LebrunBioger, Grignon

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• 5 M T pertes annuelles• 2/3 marché fongicide riz• Localement 100 % pertes• Distribution géographique =

toutes les zones de culture du riz

- Principale maladie fongique du riz

Introduction

CABI- Modèle d’interaction Monocot-champignon phytopathogène

• Hôte et agent pathogène séquencés• Nombreux outils de génétique et génomique

Goff et al 2002 Science ; Dean 2005 Nature ; Veneault Fourrey et Talbot 2006 Adv Appl Microbiol

Pyriculariose du riz :champignon Magnaporthe oryzae

CABI

Michel Vales, CIRAD

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Interactions riz-M. oryzaeThéorie gène pour gène

R/R or R/s s/s

AVR

vir

Plante

Agent Pathogène

Introduction

Silué et al, 1992, Phytopathology

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Les interactions plantes / agents pathogènes

Gènes de Résistance des plantes

LRR : Leucine Rich RepeatNBS : Nucleotide Binding Site

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Interaction avec ACE1 originale ?

Les interactions plantes / agents pathogènes

InconnueFonction

OuiSécrétée

Petite(<400 aa)Taille

Protéinesd'avirulencefongiques 

Enzymesynthèse

Métabolite2aire

Non

Grande(>4 000 aa)

ACE1

Magnaporthe oryzae

Böhnert et al. 2004 Plant Cell ; Fudal et al. 2007 Euk. Cell

Gènes d’avirulence fongiques

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Hypothèse

Böhnert et al. Plant Cell 2004

O OOH

Metabolite 2aire

ACE1

Fudal et al Eukaryotic Cell 2007

Pi33 Reconnaissance

Signalisation

Défense

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L’interaction ACE1-Pi33

ACE1 cloné (MH Lebrun):

- Études fonctionnelles avancées

- Production du métabolite 2aire en cours

Gène de résistance du riz correspondant à ACE1 est connu : Pi33

Clonage positionnel de Pi33

Etude moléculaire de l’interaction

Guy112/0/3

2/0/3::ACE1Guy11ΔACE1

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Prédiction des gènes de résistance dans la zone chez Nipponbare (S)

LRR Kinases

NBS-LRR

Cartographie génétique et physique de Pi33

Clones BAC d’IR64 (R)

21 gènes prédits dont 9 ressemblent à des gènes de résistances,

2 de ces gènes seraient de meilleurs candidats (fct, expression, polymorphisme).

Zone de 33B02 et 44H23 analysée en priorité

NB11NB10

Variété IR64 (R)Carte

génétique

Carte physique

Nipponbare

Carte physique

IR64

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Nuc 4321Nip NB11

Nip NB10

AP004565

Rtp

Nipponbare (Sensible)

3 kb HPNuc NucHP

CACTA

4321

64 NB11 4.564 NB11 3.564 NB11 X

64 NB10 2

33B02

44H23

64 NB11 tps

CACTA Tg1

64 NB10 1

31M18

IR64 (Résistant)

Financements : AIP séquençage INRA + CIRAD Séquençage « shotgun » des clones 33B02 et 44H23

Séquençage de 2 clones BACS

NBS-LRR

Transposons

Autres

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HP

Nuc

43b21b

93 NB11 93 NB11 tps

CACTA Tg1

93 NB10

9311 (Sensible)

32b1RtpRtp

93 NB11b

Ctg 1 Ctg 2 Ctg 3

Financement : AIP séquençage INRA + CIRAD Séquençage shotgun des clones 33B02 et 44H23

Séquençage de 2 clones BACS

3 kb HPNuc NucHP

CACTA

4321

64 NB11 4.564 NB11 3.564 NB11 X

64 NB10 2

33B02

44H23

64 NB11 tps

CACTA Tg1

64 NB10 1

31M18

IR64 (Résistant)

NBS-LRR

Transposons

Autres

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Conséquences pour le clonage de Pi33

Organisation en cluster des NBS-LRR,

nb de copies variable en fct variétés de riz

Chez IR64 (R), au moins 5 candidats de type NBS-LRR,

Homologies de séquence importantes entre ces gènes (paralogues).

Clones BAC d’IR64 (R)

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Compléter le séquençage du locus

Perspectives

- Stratégie avec a priori (gène candidat) :

1) Identifier Pi33 grâce à des mutantsRechercher des mutants sensibles

Identifier le gène muté parmi les gènes candidats (Tilling)

2) Identifier Pi33 par complémentation des candidatsAmplifier les candidats (PCR long-range)Complémenter

Identifier et cloner le gène de résistance Pi33

Séquençage de 3 clones BAC d’IR64

- Stratégie sans a priori :

Sous cloner des clones BAC et complémenter

priorité : clones 33B02 et 44H23 en cours

en cours

en cours

en coursCNS

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Merci de votre attention