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Programmes nationaux d’Evaluation Externe de la Qualité 2018
Côlon, Poumon, Mélanome, Ovaire, Par gène Présentation des résultats Réunion de restitution
5 juillet 2019
Journée
10-11h Présentation des résultats Gen&tiss 2018 – Côlon, Poumon, Mélanome, Ovaire, Gènes (E Rouleau) 11h-12h Base de données de variants somatiques – résultats NGS ( C Béroud – F Koeppel) 12h-13h Déjeuner 13h-14h Perspective européenne des contrôles de qualité (C Keppens, K Dufraing) 1. Effet des méthodes et des échantillons pour la détection de EGFR c.2369C>T p.(Thr790Met) 2. Nomenclature HGVS des variants somatiques en théranostic : vers un consensus standardisé 3. Exhaustivité du comptes-rendus tissulaires en Europe et France 4. Eléments présents sur le compte rendu pour ctDNA 14h-15h Présentation des résultats Gen&tiss 2018 - ADN circulant (M Denis) EEQ pilote - interprétation des variants (E Rouleau) 15h30-16h30 Groupes de discussion Harmonisation des panels – TMB et HRD (C Le Maréchal) Arbre décisionnel et bonne pratique de facturation (K Leroy) 16h30-17h Debriefing
Gen&tiss
Depuis 2012
10 à 5 échantillons / programme
5475 échantillons
16425 lames Leuven
Nijmegen
AFAQAP GFCO
Partner Platforms Joint partners
Reference Platform
IGR
Nantes
Merci ! Comité de pilotage Jean-Christophe SABOURIN Aude LAMY Frederique PENAULT-LLORCA Cécile AUBE Anne CAYRE Cédric LEMARECHAL Laurent DOUCET Clotilde DESCARPENTRIES Hélène BLONS Jean-François EMILE Jean-François COTE Antoinette LEMOINE Valérie DURANTON-TANNEUR Yves DENOUX Karen LEROY Isabelle SOUBEYRAN Véronique HADDAD Paul HOFMAN Florence PEDEUTOUR Alexandre HARLE Ludovic LACROIX Alexander VALENT Marc-Antoine BELAUD-ROTUREAU Pierre-Jean LAMY
AFAQAP Caroline Egele Jean-Pierre Bellocq Dominique Fetique Gustave Roussy Jean-Yves Scoazec Isabelle Miran Catherine Richon Ludovic Lacroix Sophie Cotteret Biomedical Quality Assurance Research unit of the University of Leuven Cleo Keppens Kelly Dufraing Els Dequeker Lien Tembuyser Veronique Tack
Departement of Pathology of the Radboud University Nijmegen Medical Centre Marjolijn Ligtenberg Han van Krieken
Institut National du Cancer Frédérique Nowak
Support financier :
UFR de Médecine Marseille Genetics and Bioinformatics team Christophe BEROUD David SALGADO Jean-Pierre DERIVES
UFR de Médecine - Nantes Laboratoire de Biochimie Marc DENIS
Participants à la journée
Avis sur les programmes
Thématiques de la journée
Base de données variants somatiques 35,71% 15
BRCA/HRD somatique 16,67% 7
Elargissement des panels en somatique (TMB) 16,67% 7
Facturation des actes RIHN 11,90% 6
MSI/POLE 9,52% 4
Signatures moléculaires / nouveaux biomarqueurs (expression / Sein / Autres) 4,76% 2
Réponses
Organisation
Programmes
• Programme “Tissu” • 20 lames à évaluer pour tissu: 5 côlon, 5 poumon, 5 mélanome, 5 ovaire • 1 échantillon éducatif par tissu
• Programme “Nouveau participant” par gène • Gènes : EGFR, BRAF, NRAS, KRAS • 5 échantillons artificiels
• Programme “ADN circulant” • 5 échantillons pour EGFR (IQNPath) • 6 échantillons pour KRAS/NRAS/BRAF (G&T)
Planning EEQ 2018
• Envoi des échantillons FFPE: 12 décembre 2018 • Envoi des échantillons ADN circulant IQNPath: 10 décembre 2018 • Envoi des échantillons ADN circulant G&T: 27 mars 2019 • Fin du programme FFPE: 20 février 2019 • Fin du programme ADN circulant IQNPath: 25 janvier 2019 • Fin du programme ADN circulant G&T: 5 juin 2019 • Réunion d’évaluation: 7 & 8 mars 2019 • Libération des génotype: 27 mars 2019 • Accès aux résultats individuels: 21 mai 2019 • Fin des réclamations: 15 juin 2019 • Réunion de restitution: 5 juillet 2019
Participants
Participants
N° des participants Colon Poumon Mélanome Ovaire
Nouveaux participants
Comptes rendu
2018 51 49 51 26 5 61
2017 47 42 44 21 3 57
2016 48 44 46 17 2 53
2015 48 46 45 48
2014 49 46 44
2013 49 45 45
2012 50 45 45
Participants par marqueur
Colon Poumon Mélanome Ovaire Nouveaux participants
Marqueur Nombre Marqueur Nombre Marqueur Nombre Marqueur Nombre Marqueur Nombre
KRAS 51 EGFR 49 BRAF 51 BRCA1 26 EGFR 4
NRAS 51 KRAS 48 NRAS 50 BRCA2 26 KRAS 5
BRAF 50 BRAF 46 KIT 39 TP53 5 BRAF 3
PIK3CA 40 PIK3CA 41 EDU 48 EDU 21 NRAS 1
MSI 41 ERBB2 41
MLH1 14 EDU 45
EDU 49
Programmes
Participations N° des labs
Colon + poumon + melanome + ovaire 21
Colon + poumon + melanome 22
Colon + poumon + ovaire 1
Poumon + melanome + ovaire 0
Colon + poumon 2
Colon + melanome 3
Colon + ovaire 1
Poumon + melanome 2
Poumon + ovaire 0
Melanome + ovaire 0
Colon 1
Poumon 1
Melanome 3
Ovaire 0
Nouveaux participants 5
2018: 64 participants uniques 2017: 60 participants uniques 2016: 56 participants uniques 2015: 50 participants uniques
Résultats des génotypes
Notation
- Europe < 90% = “échec de participation” - G&T < 80% = “échec de participation”
• La réussite au génotypage correspond à un score supérieur ou égal à 8 sur 10 en fonction du marqueur choisi.
• En cas d’erreur grave sur le génotype (faux négatif/faux positif), il y a échec au
génotypage.
• Pour les échantillons “éducatifs”, tout marqueur avec une erreur entraîne un échec au génotypage.
Grille de notation
Score Points given
a Génotype correct 2
b Génotype incorrect 0
c Mutation non identifiée car non recherchée pour KRAS/NRAS exon 2,3,4 ou EGFR exon 18 0
d Génotype partiel – manque une des mutations 0
e Mutation détectée, mais le changement de nucleotide est non décrit à cause de la technique utilisée – analyse de fragment, qPCR
2
f Mutation détectée, mais la nomenclature est fausse après séquençage (erreur de nucleotide, mais même codon), pas de mutation mentionnée 'muté', ou faux nombre des paires de bases en cas d'une
1,5
g Mutation détectée, mais erreur de mutation (erreur de codon) 0
h Echantillon non contributif 0,5
i Erreur d'écriture dans le tableau de génotypage (0 points) ; compte-rendu correct 0/2 (CR correct)
j Essais en cascade 1
k Statut muté / non muté correct, mais génotype non saisi dans le tableau 1/2 (CR correct)
L KRAS/NRAS sauvage dans le colon sans recherche de l’exon 4 de KRAS/NRAS -0,25 une fois
Notation: nomenclature HGVS
- X (aucun point déduit): • Parenthèses sur les changements d’acide aminé • Confusion avec un codon de termination:
- ‘X’ au niveau p.
- Y (-0,50 points une fois): • KRAS Glu12Val au lieu de p.(Gly12Val) • Ancienne nomenclature
- Z (-0,50 points une fois): • Pas de génotype sur niveau c. ou p.
Aucun point déduit: mélange de nomenclature ancienne avec nomenclature HGVS
EEQ tissu – résultats globaux
EEQ côlon
Résultat génotype – Colon 2018
Numéro
d'échantillonCellularité % KRAS NRAS BRAF PIK3CA MSI
Méthylation du
promoteur MLH1EEQ Divers (hors EEQ)
2018-C-1 70%
c.34G>T
p.(Gly12Cys)
VAF: 50%WT WT WT MSS Non méthylé GENOTYPE
TP53: c.638G>A
p.(Arg213Gln)
VAF: 45%
2018-C-2 90% WT
c.182A>T
p.(Gln61Leu)
VAF: 50%
WT WT MSS Non méthylé GENOTYPETP53: c.856G>C
p.(Glu286Gln)
VAF: 40%
2018-C-3 60% WT
c.35G>A
p.(Gly12Asp)
VAF: 45%
WT WT MSS Non méthylé GENOTYPETP53: c.524G>A
p.(Arg175His)
VAF: 55%
2018-C-4 70% WT WT
c.1799T>A
p.(Val600Glu)
VAF: 30%
WT MSS Méthylé GENOTYPETP53: c.524G>A
p.(Arg175His)
VAF: 60%
2018-C-5 80% WT
c.182A>G
p.(Gln61Arg)
VAF: 20%
WT WT MSS Non méthylé GENOTYPETP53: c.1015G>T
p.(Glu339*)
VAF : 50%
Echantillon
éducatif "CÔLON
2018"
NA
c.35G>T
p.(Gly12VAl)
VAF: 5% WT WT WT MSI Méthylé EDUCATIF
MAP2K1 :c.355C>T p.(His119Tyr)
VAF: 50%
MAP2K1 :c.167A>C p.(Gln56Pro)
VAF: 50%
EGFR:c.2155G>A p.(Gly719Ser)
VAF: 30%
IDH2:c.435del p.(Thr146fs*15)
VAF: 50%
CTNNB1: c.98C>A;p.(Ser33Tyr)
VAF:40%
WT : aucune mutation identifiée / *: ce variant est à but éducatif hors score « génotype GENOTYPE : participe au score « génotype » / EDUCATIF : ne participe pas au score « génotype »
Non méthylé
Globalement
Marqueur Nombre Succes % succes Score moyen
KRAS 51 51 100% 99,3
NRAS 51 48 94% 97,9
BRAF 50 50 100% 99,2
PIK3CA 40 38 95% 98,8
MSI 41 39 95% 98,5
Méthylation MLH1
14 14 100% 98,9
Educatif 49 38 78% 90,8
Très bon niveau >94% de succès
Colon - KRAS
4
1
0
1
2
3
4
5
18-C-1 18-C-2 18-C-3 18-C-4 18-C-5
KRAS: 51 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
c.34G>T, p.(Gly12Cys) WT WT WT WT
1: Nomenclature fausse: c.38G>T, p.(Gly12Cys) 4: La technique ne spécifie pas la mutation
Colon - NRAS
c.182A>T, p.(Gln61Leu) WT c.35G>A, p.(Gly12Asp) WT c.182A>G, p.(Gln61Arg)
4: La technique ne spécifie pas la mutation
0
1
2
3
4
5
18-C-1 18-C-2 18-C-3 18-C-4 18-C-5
NRAS: 51 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
1: NRAS non testé 1: FN 1: erreur de codon (c.182A>T, p.(Gln61Leu)) 4: La technique ne spécifie pas la mutation
1: erreur d’écriture
Colon - BRAF
WT c.1799T>A; p.(Val600Glu) WT
1: erreur d’écriture 4: La technique ne spécifie pas la mutation
0
1
2
3
4
5
18-C-1 18-C-2 18-C-3 18-C-4 18-C-5
BRAF: 50 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
WT WT
Colon – PIK3CA
WT WT
1: Echantillon non contributif
WT WT
0
1
2
3
4
5
18-C-1 18-C-2 18-C-3 18-C-4 18-C-5
PIK3CA: 40 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
WT
Colon – MSI
MSS MSS
*: ‘WT’, mais MSS dans le CR
MSS MSS MSS
0
1
2
3
4
5
18-C-1 18-C-2 18-C-3 18-C-4 18-C-5
MSI: 41 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
1: FP
* * * * *
Colon – méthylation du promoteur MLH1
Non methylé
1: échantillon non contributif
0
1
2
3
4
5
18-C-1 18-C-2 18-C-3 18-C-4 18-C-5
MLH1: 14 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
Non methylé
Non methylé
Non methylé
Non methylé
Colon – Educatif
c.35G>T p.(Gly12Val) WT WT MSI-H WT
0
1
2
3
4
5
KRAS NRAS BRAF PIK3CA MSI MLH1
Educatif: 52
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
Methylé
4: FN 3: KRAS non testé 2: La technique ne spécifie pas la mutation 1: Erreur de codon 1: Non contributif
1: FP (c.182A>G p.(Gln61Arg)) 3: KRAS non testé 1: Non contributif
2: FP (c.1799T>A, p.(Val600Glu)) 1: Non contributif
2: FP c.3140A>G, p.(His1047Arg) & c.2740G>A, p.(Gly914Arg) 1: Non contributif
2: FN 1: Non contributif
2: Non contributif
KRAS:c.35G>T VAF 5%
MSI
Au final
Pour les échantillons FFPE (1230 analyses – 255 échantillons):
• 1 faux négatif • 1 faux positif • 1 mutation erronée • 1 fois NRAS non testé • 2 non contributifs
Résultats limites sur NRAS et difficulté sur la VAF 5% Taux d’erreur : 2/255 = 0,78%
Echecs 3 pour NRAS
1 pour PIK3CA 1 pour MSI
EEQ poumon
Résultat génotype – Poumon 2018
WT : aucune mutation identifiée / *: ce variant est à but éducatif hors score « génotype GENOTYPE : participe au score « génotype » / EDUCATIF : ne participe pas au score « génotype »
Numéro
d'échantillonCellularité % EGFR KRAS BRAF PIK3CA ERBB2 EEQ Divers (hors EEQ)
18-P-6 70%
c.2236_2250del
p.(Glu746_Ala750del)
VAF: 20%WT WT WT WT GENOTYPE
TP53:c.839G>C p.(Arg280Thr)
VAF :30%
MSS
18-P-7 70% WT
c.34G>T
p.(Gly12Cys)
VAF: 50%
WT WT WT GENOTYPE
CTNNB1: c.101G>T, p.(Gly34Val)
VAF:5%
STK11 c.298C>T, p.(Gln100*)
VAF:50%
MSS
18-P-8 80% WT WT WT WT WT GENOTYPE
TP53:c.461G>T p.(Gly154Val)
VAF: 50%
Amplification EGFR
MSS
18-P-9 80%
c.2314_2319dup
p.(Pro772_His773dup)
VAF: 45%
WT WT WT WT GENOTYPETP53:c.584T>C p.(Ile195Thr)
VAF: 80%
MSS
18-P-10 80% WT WT WT WT WT GENOTYPETP53 :c.454_457delinsTC p.(Pro152fs)
VAF:45%
MSS
Echantillon
éducatif "POUMON
2018"
NA
c.2582T>A
p.(Leu861Gln)
VAF: 5%
WT
c.1799T>A
p.(Val600Glu)
VAF: 65%
c.3140A>G
p.(His1047Arg)
VAF: 50%
WT EDUCATIFHRAS:c.218G>A p.(Arg73His)
VAF:5%
Globalement
Marqueur Nombre Succes % succes Score moyen
EGFR 49 42 86% 95,9
KRAS 48 48 100% 99,7
BRAF 46 46 100% 99,7
PIK3CA 41 40 98% 99,1
ERBB2 41 40 98% 98,1
Educatif 45 39 87% 93,9
Résultats moyens > 86%
Poumon – EGFR
c.2236_2250del; p.(Glu746_Ala750del)
6: la technique ne spécifie pas la mutation
WT WT c.2314_2319dup; p.(Pro772_His773dup)
WT
0
1
2
3
4
5
6
7
18-P-6 18-P-7 18-P8 18-P-9 18-P-10
EGFR: 49 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
1: EGFR non testée
2: FP c.2156G>A, p.(Gly719Asp) et c.2369C>T, p.(Thr790Met)
2: FN 2: mutation non spécifiée 5: nomenclature fausse (delins) 2: erreur de codon 1: erreur d’écriture
Poumon – KRAS
WT
2: la technique ne spécifie pas la mutation
c.34G>T; p.(Gly12Cys) WT WT WT
1: erreur d’écriture
0
1
2
3
4
5
18-P-6 18-P-7 18-P8 18-P-9 18-P-10
KRAS: 48 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
Poumon – BRAF
WT WT WT WT WT
1: Echantillon non contributif
0
1
2
3
4
5
18-P-6 18-P-7 18-P8 18-P-9 18-P-10
BRAF: 46 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
Poumon – PIK3CA
WT WT WT WT WT
1: Echantillon non contributif
0
1
2
3
4
5
18-P-6 18-P-7 18-P8 18-P-9 18-P-10
PIK3CA: 41 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
Poumon – ERBB2
WT WT WT WT WT
1: Echantillon non contributif
0
1
2
3
4
5
18-P-6 18-P-7 18-P8 18-P-9 18-P-10
ERBB2: 41 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
Poumon – Educatif
c.2582T>A; p.(Leu861Gln)
WT c.1799T>A; p.(Val600Glu)
c.3140A>G; p.(His1047Arg)
WT
*1: Echantillon non contributif
0
1
2
3
4
5
EGFR KRAS BRAF PIK3CA ERBB2
Educatif: 45 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
* * * * *
1: génotype incorrect (c.2155G>A, p.(Gly719Ser)) 3: la technique ne spécifie pas la mutation 1: fausse nomenclature
1: FP (c.35G>T, p.(Gly12Val))
1: FN 5: FN 2: la technique ne spécifie pas la mutation
Au final
• Pour les échantillons FFPE (1122 analyses – 245 échantillons ):
• 2 faux négatifs • 2 faux positifs • 1 mutation erronée • 1 fois EGFR non testé • 3 non contributifs
Pas de difficulté sur la VAF à 5% Taux d’erreurs : 4/245 = 1,6%
Echecs 6 pour EGFR
EEQ mélanome
Résultat génotype – Mélanome 2018
WT : aucune mutation identifiée / *: ce variant est à but éducatif hors score « génotype GENOTYPE : participe au score « génotype » / EDUCATIF : ne participe pas au score « génotype »
Numéro
d'échantillonCellularité % BRAF NRAS KIT EEQ Divers (hors EEQ)
18-M-11 80%
c.1799T>A
p.(Val600Glu)
VAF: 80%
WT WT GENOTYPE Amplification BRAF
MSS
18-M-12 70% WT
c.182A>T,
p.(Gln61Leu)
VAF: 40%
WT GENOTYPEFBXW7: c.1375G>T, p.(Gly459Trp)
MSS
18-M-13 50% WT
c.182A>G
p.(Gln61Arg)
VAF: 70%
WT GENOTYPE MSS
18-M-14 90%
c.1798_1799delinsAG
p.(Val600Arg)
VAF: 70%
WT WT GENOTYPE
MAP2K1:c.370C>T (p.(Pro142Ser)) VAF:29%
ALK:c.3659C>T (p.(Ser1220Phe)) VAF:30%
EGFR:c.1346G>A (p.(Gly449Glu)) VAF:40%
TP53:c.530C>T (p.(Pro177Leu)) VAF:70%
MSS
18-M-15 90% WT
c.182A>T
p.(Gln61Leu)
VAF: 30%
WT GENOTYPETP53:c.718A>C p.(Ser240Arg))V AF:10%
TP53:c.743G>A (p.(Arg248Gln))VAF:5%
TP53:c.524G>A (p.(Arg175His))VAF:5%
MSS
Echantillon
éducatif
"MELANOME
2018"
NA
c.1798_1799delinsAA
p.(Val600Lys)
VAF: 5%
WT WT EDUCATIF
KRAS:c.38G>A (p.(Gly13Asp)) VAF:50%
PIK3CA:c.3140A>G (p.(His1047Arg))VAF:50%
CTNNB1: c.133_135delTCT p.(Ser45del)VAF:50%
MSI-H
Globalement
Marqueur Nombre Succes % succes Score moyen
BRAF 51 50 98% 98,9
NRAS 50 49 98% 99,0
KIT 39 34 87% 95,9
Educatif 48 40 83% 2,6/2,75
Mélanome – BRAF
c.1799T>A, p.(Val600Glu)
WT WT c.1798_1799delinsAG, p.(Val600Arg)
WT
4: la technique ne spécifie pas la mutation
0
1
2
3
4
5
18-M-11 18-M-12 18-M-13 18-M-14 18-M-15
BRAF: 51 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
1: erreur de mutation (p.Val600Lys)
Mélanome – NRAS
WT WT WT WT WT
1: Echantillon non contributif
0
1
2
3
4
5
18-M-11 18-M-12 18-M-13 18-M-14 18-M-15
NRAS: 50 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
Mélanome – KIT
WT WT WT WT WT
4: Echantillon non contributif
0
1
2
3
4
5
18-M-11 18-M-12 18-M-13 18-M-14 18-M-15
KIT: 39 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
Mélanome – Educatif
c.1798_1799delinsAA, p.(Val600Lys)
WT WT
5: FN 2: la technique ne spécifie pas la mutation 2: erreur de mutation c.1799T>A, p.(Val600Glu) & c.1798G>A, p.(Val600Met)
0
1
2
3
4
5
BRAF NRAS KIT
Educatif: 48 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
BRAF VAF 5% c.1798_1799delinsAA, p.(Val600Lys)
Au final
• Pour les échantillons FFPE (698 analyses - ):
• 2 mutation erronées • 10 non contributifs
Echecs 1 pour BRAF 1 pour NRAS
4 pour KIT
4 laboratoires avec 2 non contributifs: • 2 laboratoires n’ont donné aucune raison • 1 lab: qualité de séquençage trop faible (M13) & melanine (M15) • 1 lab: échec d’amplification
Difficulté sur la VAF à 5% Taux d’erreur : 0 / 255 = 0%
EEQ ovaire
Résultat génotype – Ovaire 2018
Numéro
d'échantillonCellularité % BRCA1 BRCA2 EEQ Divers (hors EEQ)
18-O-16 90%
c.2601del
p.(Gln867fs) VAF: 75%
Délétion des exons 14 à 24*
WT GENOTYPETP53: c.358A>G p.(Lys120Glu)
VAF:75%
18-O-17 80% WT/NC***
c.8487+1G>A
p.(?)
VAF: 90%
/ NC***
GENOTYPETP53.c.1024del p.(Arg342Glyfs*3)
VAF:75%
18-O-18 90% WT WT GENOTYPE -
18-O-19 90% WT WT GENOTYPE
TP53: c.713G>C; p.(Cys238Ser)
RAD51C : c.577C>T; p.(Arg193*)
VAF:95%
18-O-20 90% WT WT GENOTYPE
TP53 c.713G>A p.(Cys238Tyr)
RAD51D:c.803G>A (p.(Trp268*)
VAF:95%
Echantillon
éducatif "OVAIRE
2018"
NA Délétion des exons 1 à 14 WT EDUCATIFTP53: c.818G>A;p.(Arg273His)
VAF:75%
WT : aucune mutation identifiée / * : ce variant est à but éducatif hors score « génotype *** : 18-O-17 – les conclusions « mutés » / « non contributif » sont acceptés. GENOTYPE : participe au score « génotype » / EDUCATIF : ne participe pas au score « génotype »
Globalement
Marqueur Nombre Succes % succes Score moyen
BRCA1 26 24 92% 96,3
BRCA2 26 23 88% 95,7
TP53 5 3 60% 96,0
Educatif 21 3 14% 60,5
Résultats moyens > 88%
Ovaire – BRCA1
c.2601del, p.(Gln867Hisfs*26) WT WT
1: FN
0
1
2
3
4
5
O-16 O-17 O-18 O-19 O-20
BRCA1: 25 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
WT WT
1: FP (c.1289A>T) 5: non contributif MAIS mauvaise qualité de l'échantillon 2 points
1: FP Mutation délétère (dans le CR): Duplication exon 2; p.(Cys27*)
Ovaire – BRCA2
c.2601del, p.(Gln867Hisfs*26)
WT WT WT WT
2: FN 1 point 4: non contributif MAIS mauvaise qualité de l'échantillon 2 points
1: FP (c.-39-12_-39-10del)
0
1
2
3
4
5
O-16 O-17 O-18 O-19 O-20
BRCA2: 25 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
1: FP (p.(Val211Glu))
Ovaire – TP53
c.358A>G p.(Lys120Glu)
WT c.713G>C p.(Cys238Ser)
c.713G>A p.(Cys238Tyr)
0
1
2
3
4
5
O-16 O-17 O-18 O-19 O-20
TP53: 5 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
c.1024del p.(Arg342Glyfs*3)
1: erreur de mutation: c.713G>C p.(Cys238Tyr)
Ovaire – Educatif
WT WT large délétion des exons 2 à 14
15: FN 1: non contributif 1: erreur d’écriture
0
2
4
6
8
10
12
14
BRCA1 BRCA2 TP53
Educatif: 21 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
1: FP (c.426_631Dup;p.(Pro143GlnfsX2)) 1: non contributif 1: erreur d’écriture
• 2017 • BRCA1: 11/20 (55.0%) participants n’ont pas rapporté le variant classe III
c.1303G>T; p.(Asp435Tyr) VAF 7%
• BRCA2: 10/20 (50.0%) participants n’ont pas rapporté le variant classe V c.8021dup; p.(Ile2675Aspfs*6) VAF 10%
• 2018 • Grand réarrangement sur BRCA1 : 4 / 21 (éducatif – 3 détections + 1 erreur de
saisie)
• Grand réarrangement sur BRCA1 : 2 / 25 (case 1)
Ovaire – Educatif
Au final
• Pour les échantillons FFPE (273 analyses – 130 échantillons ):
• 3 faux négatifs • 4 faux positifs • 1 mutation erronées • 13 non contributifs
Echecs: 3 pour BRCA1 2 pour BRCA2 1 pour TP53
O-17: qualité ADN limite : 2 points donnés pour les NC et 1 point pour les FN
Absence de détection des grands réarrangements Taux d’erreurs : 7 / 130 = 5,3%
• 2017 : 3 faux négatifs– 2,7% • 110 analyses • 22 participants
• 2018 : 3 faux négatifs / 4 faux positifs– 5,3% • 130 analyses • 26 participants
• Autres gènes 2018 • 2018 – TP53 – 5 participants – aucune erreur • RAD51C – 3 participants l’ont détectée • RAD51D – 1 participant l’a détectée
Au final
Educative sample
• 2017 • BRCA1: 11/20 (55.0%) participants miss a class III variant c.1303G>T;
p.(Asp435Tyr) VAF 7%
• BRCA2: 10/20 (50.0%) participants miss a class V variant c.8021dup; p.(Ile2675Aspfs*6) VAF 10%
• 2018 • Large rearrangement in BRCA1 : 5 / 21 (educational)
• Large rearrangement in BRCA1 : 2 / 25 (case 1)
16/07/2019 TITRE DU DIAPORAMA Général
EEQ nouveaux participants « EEQ par gène »
Nouveaux participants 2018
“EEQ par gène”
WT : aucune mutation identifiée GENOTYPE : participe au score « génotype »
Numéro
d'échantillonCellularité % KRAS BRAF EGFR NRAS EEQ
1-A NA WT
c.1798_1799delinsAA
p.(Val600Lys)
VAF: 5%
c.2155G>A
p.(Gly719Ser)
VAF: 5%
c.436G>A,
p.(Ala146Thr)
VAF: 50%
GENOTYPE
2-B NA
c.38G>A
p.(Gly13Asp)
VAF: 5%
WT
c.2235_2249del
p.(Glu746_Ala750del)
VAF: 5%
c.35G>T
p.(Gly12Val)
VAF: 50%
GENOTYPE
3-C NA
c.35G>C
p.(Gly12Ala)
VAF: 5%
c.1798_1799delinsAG
p.(Val600Arg)
VAF: 50%
c.2573T>G
p.(Leu858Arg)
VAF: 5%
WT GENOTYPE
4-D NA
c.35G>T
p.(Gly12Val)
VAF: 50%
c.1799T>A
p.(Val600Glu)
VAF: 20%
c.2300_2308dup
p.(Ala767_Val769dup)
VAF: 50%
c.38G>A
p.(Gly13Asp)
VAF: 50%
GENOTYPE
5-E NA
c.436G>A
p.(Ala146Thr)
VAF: 50%
WT WT
c.183A>T
p.(Gln61His)
VAF: 50%
GENOTYPE
Globalement
Marqueur Nombre Succes % succes Score moyen
EGFR 4 4 100% 96,3
KRAS 5 5 100% 94,0
NRAS 1 1 100% 100
BRAF 3 3 100% 98,3
Résultats excellents à 100%
Nouveaux participants – KRAS
c.35G>T p.(Gly12Val)
c.38G>A, p.(Gly13Asp)
1: non contributif * la technique ne spécifie pas la mutation
0
1
2
3
4
5
1-A 2-B 3-C 4-D 5-E
KRAS: 5 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
WT c.35G>C, p.(Gly12Ala)
c.436G>A, p.(Ala146Thr)
* * *
*
Nouveaux participants – BRAF
c.1799T>A, p.(Val600Glu)
WT
* la technique ne spécifie pas la mutation
c.1798_1799delinsAA, p.(Val600Lys)
c.1798_1799delinsAG, p.(Val600Arg)
WT
0
1
2
3
1-A 2-B 3-C 4-D 5-E
BRAF: 3 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
* * *
0
1
2
3
4
1-A 2-B 3-C 4-D 5-E
EGFR: 4 participants
b
c
d
e
f
g
h
i
j
k
Nouveaux participants – EGFR
c.2300_2308dup, p.(Ala767_Val769dup)
c.2235_2249del, p.(Glu746_Ala750del)
* la technique ne spécifie pas la mutation
c.2155G>A, p.(Gly719Ser)
c.2573T>G, p.(Leu858Arg)
WT
* * * *
Nouveaux participants – NRAS
Seulement pour 1 participant: tous les échantillons ont été correctement analysés
Délai de l’analyse
Délais
0
10
20
30
40
50
60
Délai pour réception - génotypage Délai pour début de l'analyse -génotypage
Jou
rs
COLON: 4 participants
0
10
20
30
40
50
60
Délai pour réception - génotypage Délai pour début de l'analyse -génotypage
Jou
rs
POUMON: 3 participants
0
10
20
30
40
50
60
Délai pour réception - génotypage Délai pour début de l'analyse -génotypage
Jou
rs
OVAIRE: 2 participants
0
10
20
30
40
50
60
Délai pour réception - génotypage Délai pour début de l'analyse -génotypage
Jou
rs
MELANOME: 4 participants
! Attention: le délai n’était pas un critère de L’EEQ 2018
Résultats des items du compte-rendu
Evaluation
• 7/8 Mars 2019 • Relecture des deux premiers comptes-rendus • Relecteurs: Louvain (4) – France (4) • Relecteurs France: Aude Lamy, Alexandre Harlé, Ludovic Lacroix, Etienne Rouleau • Relecteurs Louvain: Cleo Keppens, Kaat Van Casteren, Kelly Dufraing, Els Dequeker • Croisement des résultats • Mise en place et validation de la grille de notation
Evaluation
• 29 items dont 3 pour l’interprétation et 26 autres items • Interprétation: score pour variant muté + variant sauvage de chaque cancer • Nouveau: interprétation notée pour MSI & méthylation MLH1 • Numéro de version à modifier pour BRAF & NRAS • QC metric pour NGS: couverture/profondeur minimale • Description de la méthode NGS: kit, séquenceur et pipeline de bioinformatique
Evolution du score du compte-rendu
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
2012 2013 2014 2015 2016 2017 2018
% m
oye
n
% Moyen du score de Compte-Rendu
Interprétation
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
90%
100%
Interprétationdu résultatKRAS/NRAS
(muté)
Interprétationdu résultatKRAS/NRAS
(muté)
Interprétationdes autresmarqueurs
InterprétationMSI
InterprétationMLH1
Interprétationdu résultat
EGFR (muté)
Interprétationdu résultat
EGFR (sauvage)
Interprétationdes autresmarqueurs
Interprétationdu résultat
BRAF (muté)
Interprétationdu résultat
BRAF (sauvage)
Interprétationdes autresmarqueurs
Interprétationdu résultat
BRCA1 (muté)
Interprétationdu résultat
BRCA2 (muté)
PER
CEN
TAG
E O
F LA
BO
RA
TOR
IES
WIT
H A
GIV
EN S
CO
RE
PER
ITEM
(n
=52
) + Present and correct +/- Present, but unclear +/-* Direct patient advice - Not present w Wrong
Colon Poumon Mélanome Ovaire
Evolution – interprétation des cas mutés
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
2012 2013 2014 2015 2016 2017 2018
Sco
re (
%) KRAS/NRAS mut
EGFR mut
BRAF mut
BRCA mut
Evolution – interprétation des cas sauvages
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
2012 2013 2014 2015 2016 2017 2018
Sco
re (
%) KRAS/NRAS WT
EGFR WT
BRAF WT
BRCA WT
Identification – méthodes – info génerale
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
90%
100%
PER
CEN
TAG
E O
F LA
BO
RA
TOR
IES
WIT
H A
GIV
EN S
CO
RE
PER
ITEM
(n
=52
) + Present and correct +/- Present, but unclear - Not present w Wrong
Evolution sur les items “identification”
0,0
10,0
20,0
30,0
40,0
50,0
60,0
70,0
80,0
90,0
100,0
Nom du patient Nom de naissance N° identification/ date denaissance
Numéro d'échantillon Référence interne ouEQA
Nature de l'échantillon Histologie Raison de la prescription
Sco
re (
%)
Identification
2012 2013 2014 2015 2016 2017 2018
Evolution sur les items “méthodes”
0,0
10,0
20,0
30,0
40,0
50,0
60,0
70,0
80,0
90,0
100,0
% cellularité Méthode utilisée Sensibilité Liste des mutations testées Séquence de référence
Sco
re (
%)
Méthodes
2012 2013 2014 2015 2016 2017 2018
Evolution sur les items “informations générales”
0,0
10,0
20,0
30,0
40,0
50,0
60,0
70,0
80,0
90,0
100,0
Un identifiantunique par page
Indication dunombre total de
page
Indication dunuméro de page
Titre explicite Nom et adresse duprescripteur
Date deprélèvement
Date de réception Date de validationdu compte-rendu
Nom et/ou signaturedu pathologiste
Sco
re (
%)
Information générales
2012 2013 2014 2015 2016 2017 2018
Cellularité tumorale
Estimation de la cellularité tumorale
Figure : exemple de la distribution des 5 échantillons EEQ côlon par ordre croissant de cellularité estimée
Cel
lula
rité
tu
mo
rale
est
imée
3 /52 utilisation des intervalles proposés
Organisation
Organisation des structures
• 60% intégralité sur une unique structure (29/48)
• Organisation de l’extraction au compte-rendu
• 13 uniquement anatomie pathologie
• 30 uniquement génétique moléculaire
• 11 mixte / plateforme commune
pre-ana - TC% pre-ana extraction ADN ana technique compte rendu
service d'anatomie pathologique service de génétique somatique service de génétique somatique service de génétique somatique 20
service d'anatomie pathologique service d'anatomie pathologique service d'anatomie pathologique service d'anatomie pathologique 9
service d'anatomie pathologique service de génétique somatique service de génétique somatique service d'anatomie pathologique 3
Pré-analytique - cellularité Pré-analytique - extraction Analytique Post-analytique
Anatomie pathologique 46 13 9 14
Génétique somatique 2 31 32 29
Commun 6 10 13 11
Activités
Tableau : estimation de l’activité hebdomadaire en 2018.
poumons /
semaine
côlons /
semaine
mélanomes /
semaine
ovaires /
semaine
ADNct /
semaine
Moyenne 9 6,6 3 4,25 4
Min 1 1 1 1 1
Max 45 35 8 12 15n=36 (poumon, côlon, mélanome) n=16 (ovaire) n=29 (ctDNA)
Accréditation/certification
5
33
Certifié ISO9001? (N=38)
Oui Non
29 24
Accredité ISO15189 pour les analyses de génétiques somatiques (N=53)
Oui Non
45
9
Accredité ISO15189 pour analyses médicales? (N=54)
Oui Non
45% des laboratoires accrédités en génétique somatique (n=53) 30% des laboratoires ont accrédité le NGS (n=53)
RCP
0
5
10
15
20
25
30
35
Oui Non En cours Non, discussion parRCP d'organe des
résultats
RCP moléculaire (N=63)
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20
Interprétation des résultatsmoléculaires
Mise en place d'analysescomplémentaires pour
certains patients
Tous les deux
Sujets (N=30)
0
2
4
6
8
10
12
14
A la démande Une fois parsemaine
Toutes lesdeux semaines
Mensuel Tous les deuxmois
Trimestrielle
Fréquence (N=30)
0 5 10 15 20 25 30 35
Le technicien de laboratoire
Le pathologiste
Le biologiste moléculaire
Le directeur de laboratoire
L'oncologue
Le médecin généraliste
Le chirurgien
Le médecin radiologiste
Le bioinformaticien
Participants (N=30)
Méthodes
Extraction
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
2016 2017 2018
Automatique vs manuel
Automatic Manual
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
Colonne Bille Enzymatique Intégré à la cartoucheIdylla
Type d'extraction
2016
2017
2018
Figure : Automatisation de l’extraction. Figure : Distribution des techniques d’extraction.
Maxwell 16 FFPE LEV DNA Isolation Kit (Promega) 3
Maxwell 16 FFPE Plus LEV DNA purification Kit (Promega) 17
Maxwell RSC DNA FFPE kit (Promega 1
Maxwell RSC DNA FFPE Kit (Promega AS1450) 1
Maxwell RSC DNA FFPE KIT (Promega) 8
Maxwell® RSC FFPE Plus Kit custom (Promega) 2
Extraction
Tableau : Diversité des kits – exemple Maxwell
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
Maxwell 16(Promega)
QIAGENEQIAcube
QIAGENEquiasymphony
Sentosa SQNSCLC Panel
Bionobis TPS (Siemens) Biocartis
Automate d'extraction
2016
2017
2018
Figure : Répartition des automates d’extraction
Diffusion du NGS auprès des participants aux EEQ Gen&tiss
Diffusion du NGS en France
Analytique
9 non NGS dans le poumon 4 technique identique 1 Séquençage Sanger 2 Mass-Array 1 Idylla (Biocartis) 5 technique différente Essentiellement Taqman / Idylla (Biocartis)
16 non NGS dans le côlon 9 techniques identiques 2 Séquençage Sanger 3 Mass Array 2 Idylla system (Biocartis) 1 HRM/Séquençage Sanger 1 SNaPshot/extension 7 techniques différentes Taqman, NGS, Idylla, pyroséquençage
15 non NGS dans le mélanome 6 techniques identiques 2 Séquençage Sanger 2 Idylla system (Biocartis) 1 SNaPshot/extension 1 Mass Array 9 techniques différentes Taqman, Sanger NGS, Idylla, pyroséquençage
Méthodes NGS
Equipement en séquenceurs NGS
Techniques d’enrichissement NGS
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9
Panel maison Qiagen solution (Qiagen)
Access Array System (Fluidigm)
Jeu d'amorces maisons
BRCA MASTR plus Dx (Multiplicom)
Tumor Hotspot MASTR Plus (Multiplicom)
TruSeq Custom Amplicon (Illumina)
Autres
STS (Sophia Genetics)
Ion AmpliSeq Colon and Lung Cancer Panel (Life technologies)
Oncomine Solid Tumour DNA kit (Life Technologies)
Ion Ampliseq Custom panel - Régions sélectionnées par le laboratoire (Life Technologies)
NGS kit enrichissement (N=53)
Figure : Nature des kits d’enrichissement utilisé en NGS (poumon, côlon, mélanome)
Analyse bioinformatique NGS
13
15
25
Evaluation données informatiques (N=53)
Développement bioinformatique commercial
Prestataire extérieur
Développement bioinformatique local
14
1
Prestataire extérieur (N=15)
Sophiagenetics
Autre
8 3
2
Développement bioinformatique commercial (N=13)
Ion Reporter
SeqNext
Autre
0 5 10 15 20 25 30
GenomeBrowser
Aucune
Alamut/IGF
Alamut
IGV
Relecture (N=53)
Figure : Prise en charge de l’analyse bioinformatique et de la relecture des résultats.
Choix des contrôles internes NGS
3 4
46
Utilisation des contrôles internes (N=53)
Qui, fréquence differente Non Oui, a chaque run
43
6
Type de contrôle interne (N=49)
Contrôle commercial Contrôle maison
Figure : Nature des contrôles internes utilisés en NGS (poumon, côlon, mélanome)
Estimation de la performance Profondeur / VAF minimale
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20
1-2% 2-5% 5% 5-10% 10-20%
N la
bo
rato
ries
VAF
VAF minimale (N=53)
Maintien des cibles depuis 2017
Figures : Performance attendue et acceptable en profondeur et limite de détection en NGS (poumon, côlon, mélanome)
Questionnaire BRCA1/2
Organisation des tests
Figures : Nature de la spécialité impliquée dans l’analyse BRCA1/2 et délai déclaratif moyen pour le rendu des résultats.
Exigence minimale pour l’analyse
• Aucune exigence (9/22)
• Analyse constitutionnelle d’abord (3/22)
• Cellularité minimale (13/22)
• Surface minimale
• Age du bloc 10% 4
20% 5
30% 4
2mm² 1
5mm² 1
Neoplastic cells
Surface
Genetiss 2018 – survey of BRCA1/2 practices
Technique d’enrichissement et séquenceurs
2017 2018
Ion Proton (Life Technologies) 0 1
Ion S5 system (Life Technologies) 4 4
MiniSeq (Illumina) 1 1
MiSeq (Illumina) 14 14
NextSeq (Illumina) 1 2
PGM IonTorrent (Life Technologies) 2 2
2017 2018
Multiplicom 10 13
Agilent Sureselect 2 2
Qiagen 2 1
Thermofisher 5 5
Fluidigm 0 1
Sophia Genetics 1 2
Cas par série nombre de structures
8 6
12 2
16 11
24 2
32 3
48 1
Table : distribution de la taille des séries d’analyse
Table : distribution des techniques d’enrichissement en fonction des fournisseurs
Table : distribution des séquenceurs utilisés
Performances attendues
Figures : Performance attendue et acceptable en profondeur et limite de détection pour le criblage somatique BRCA1/2
Analyse technique
• Capacité à détecter les grands réarrangements : 7/24 – 4 détections
• Attitude si couverture inférieure à la cible (<300X) sur l’ensemble des gènes
Detection of large rearrangement
No 16
Bioinformatic analysis 6
Germline testing 1
MLPA 1
Rendu du résultat avec la couverture du gène 12
Séquençage en Sanger des zones non couvertes 3
Duplicat 2
Non contributif 5
En fonction des résultats 2
Post-analytique – compte-rendu
• Attitude par rapport à la fréquence allélique / perte d’hétérozygotie
• Attitude en fonction des résultats de variant (plusieurs réponses possibles – n=23)
Il faut signaler toute LOH évidente sur la fréquence allélique de la mutation. 7
Il n'est pas nécessaire de rapporter la fréquence allélique sur les compte-rendus. 9
Non signalée / non analysée 4
Consultation d'oncogenetique recommandée pour variant classe 4 et 5 2
Tout variant (UV-3) doit être rapporté sur le compte-rendu. 20
Un variant peut être rendu avec une application thérapeutique, mais sans application pour la famille (classe 4). 13
Une orientation vers la consultation d'oncogénétique doit être proposée systématiquement pour tout variant (3, 4, 5). 17
Une orientation vers la consultation d'oncogénétique doit être proposé même en l'absence de variant 1
Le variant doit être positionné par rapport aux domaines fonctionnels. 1
Post-analytique – compte-rendu
• Interprétation d’une mutation tumorale si génétique constitutionnelle négative
• Interprétation d’un résultat sauvage sur la tumeur en l’absence de génétique constitutionnelle
conclusion de l'origine tumoral probable de la mutation identifiée sur la tumeur 9
demande de réaliser une vérification technique du criblage constitutionnel indépendemment de la fréquence allélique 11
demande de réaliser une vérification technique du criblage si la fréquence allélique est supérieure à 50% 2
conclusion de l'absence de mutation constitutionnelle et somatique pour la patiente 1
maintien dans le commentaire d'un criblage constitutionnel pour la détection des grands réarrangements (en fonction de la qualité de l'ADN) 12
maintien dans le commentaire d'une consultation de génétique 10
Perspectives
• Autres demandes réalisées – en fonction des AMM / cas post-mortem (n=24)
• Quels sont les prochains cancers qui devront être analysés (n=22) ? Sein 15/22
Pancréas 6/22
Prostate 8/22
Sein 20
Prostate 16
Pancréas 12
Perspectives
• Capacité à doubler le nombre d’analyses (n=22)
• Extension du nombre de gènes à moyen terme : oui 17 (n=24)
• Extension à d’autres gènes à court terme (n=21)
Non, impossible à moyen terme 3
Oui – à court terme mi2019 15
Oui – à moyen terme fin 2019 4
Non 10
Gènes HRD 8
PALB2/RAD51C/D 3
Analyse en cours
Nombre de participants
Organisation Pilot NGS scheme 2016 Lung control 24 Melanoma control 19 Colon control 24
n=27
Pilot NGS scheme 2017 Participants n=40
Data n=39
NGS scheme 2018 Participants inscrits 46
Données sur les 3 échantillons 32 Données partielles 6
Génotypes de référence
Numéro
d'échantillonEGFR KRAS BRAF NRAS PIK3CA
Echantillon éducatif
"POUMON 2018"
c.2582T>A
p.(Leu861Gln)
VAF: 5%
WT
c.1799T>A
p.(Val600Glu)
VAF: 65%
WT
c.3140A>G
p.(His1047Arg)
VAF: 50%
Echantillon éducatif
"MELANOME 2018"WT
c.38G>A
p.(Gly13Asp)
VAF:50%
c.1798_1799delinsAA
p.(Val600Lys)
VAF: 5%
WTc.3140A>G
p.(His1047Arg)
VAF:50%
Echantillon éducatif
"CÔLON 2018"
c.2155G>A p.(Gly719Ser)
VAF: 30%
c.35G>T
p.(Gly12VAl)
VAF: 5%WT WT WT
Qualité par échantillon
Score de qualité global
Conclusion et perspective
Bilan de la session 2018
• Bonne contributivité des échantillons (sauf 1 échantillon BRCA2 muté)
• Confirmation d’un risque de faux négatif sur la limite de détection des technique (5% de VAF)
• Confirmation de la faible capacité de détection des grands réarrangements
Gen&tiss 2019
• Maintien des programmes : ADNct, NGS analyses, interprétation
• EEQ ctDNA – 5 échantillons de plasma EGFR + éducatifs BRAF/NRAS/KRAS
• Simplification du programme tissu : • EEQ tissu NGS – ouvert sur les 3 types de cancers (mélanome, poumon, côlon) :
• 5-10 échantillons sous forme de lames blanches dont 1 éducatif
• EEQ Ovaire – 5 échantillons sous forme de lames blanches + 1 éducatif
• Maintien du programme par gène • Possibilité de s’inscrire individuellement à 1 seul gène (EGFR, NRAS/KRAS, BRAF)
• 5 échantillons par gène sous forme de copeaux
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