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Les rickettsioses: moyens diagnostiques ABIR ZNAZEN MD, PhD, Laboratoire de microbiologie CHU Habib Bourguiba de Sfax Faculté de Médecine de Sfax Hammamet, le 17/04/2015

Les rickettsioses: moyens diagnostiques · 2020-02-16 · gltA, ompB, ompA, 16S rRNA et 17kD Roux V 1997, Roux V2000, Fournier PE 1998, Tzianabos T 1989. Identifiation d’espèes

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Les rickettsioses: moyens diagnostiques

ABIR ZNAZEN MD, PhD, Laboratoire de microbiologie

CHU Habib Bourguiba de Sfax Faculté de Médecine de Sfax

Hammamet, le 17/04/2015

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HISTORIQUE

Fièvre boutonneuse

méditerranéenne: Conor et

Bruch (SPE) 1910.

Institut Pasteur de Tunis

2

Conor, Institut Pasteur de Tunis

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3

Fièvre Boutonneuse méditerranéenne (FBM)

HISTORIQUE

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1928 Reçoit le prix Nobel de médecine: le rôle du poux dans la transmission du typhus épidémique

Charles Nicolle

4

Institut Pasteur de Tunis

HISTORIQUE

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• Introduction

• données cliniques, épidémiologiques

• Moyens diagnostiques:

– Sérologie

– Biologie moléculaire

– Autres méthodes diagnostiques « nouvelles »

– Algorithme diagnostique

• Conclusion

Plan

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Rickettsioses

Maladies infectieuses reémergentes

Répandues dans le monde entier

Causées par des micro-organismes pathogènes

Transmises par une diversité d’arthropodes hématophages

Rickettsia

6

INTRODUCTION

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Rickettsia

Figure 1 : Rickettsia à l’intérieur d’une cellule endothéliale humaine. Coloration de Gimenez.

Des petits coccobacilles à Gram

négatif

coloration de Gimenez à la fuchsine

basique

Se divisent par scission binaire

Se cultivent sur des tissus

7

INTRODUCTION

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Rickettsia

8

SFG TG

Vecteurs Tiques+++ Poux (R. prowazekii)

Puces (R. felis) Puces (R. typhi)

Mîtes (R. akari)

T° de croissance 35° 32°

%GC 32-33 29

Mobilité intracellulaire + .

INTRODUCTION

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Figure 2 : Classification de l’ordre des Rickettsiales.

Genre famille Ordre

Rickettsiales

Rickettsiaceae

Rickettsia

Orienta

Anaplasmataceae

Erlichia

Anaplasma

Neorickettsia

Wolbachia

9

Rappel théorique

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Les tableaux cliniques

10

Escarre, tache noire Eruption cutanée maculopapuleuse

Fièvre 100% Éruption cutanée Incubation 1-16 jours

INTRODUCTION

FBM R. Conorii conorii

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11

INTRODUCTION

Typhus murin

Singes cliniques Fréquence (%)

Fièvre 98-100

Céphalées 41-90

Rash 20-80

Arthralgies 40-77

Hépatomégalie 24-29

Toux 15-40

Diarrhée 5-40

Splénomégalie 5-24

Piqure d’insecte 0-39

Nausées/ vomissements 3-48

Douleurs abdominales 11-60

Confusion 2-13

Tableau 1 : Fréquence des différents signes cliniques au cours du typhus murin

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12

INTRODUCTION

Les autres rickettsioses

Espèce Maladie Vecteur Caractéristique

R. conorii subsp israelensis

la fièvre boutonneuse d’Israël

Rh. sanguineus Formes sévères

R. conorii subsp caspia la fièvre d’Astrakhan Rhipicephalus

pumilio Conjonctivites,

céphalées et myalgies

R. conorii subsp indica du typhus à tique

d’inde Rh. sanguineus Rash purpurique

R. felis La fièvre boutonneuse à

puce Ctenocephalides felis Rash maculopapulaire

R. africae La fièvre à tique

africaine Amblyomma Escarres multiple

R. slovaca SENLAT Dermacentor Escarre du cuir

chevelu+ adénopathie

R. helvetica Fièvre non éruptive Ixodes

R. rickettsii Fièvre pourprée des

montagnes rocheuses Dermacentor Formes sévères

R. prowazekii Typhus épidémique Pediculus humanis

corporis Formes sévères

Tableau 2 : Caractéristiques cliniques de certaines espèces de rickettsies

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Maladies vectorielles:

13

INTRODUCTION

Epidémiologie

Fréquence et transmission Activité et répartition des vecteurs

Réservoir:

Animaux : rongeurs, mammifères, oiseaux

Vecteurs: TIF et TTO

Homme: hôte accidentel

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Figure 3 : Cycle de transmission et de maintien de l’infection à Rickettsia dans la nature 14

INTRODUCTION

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15

INTRODUCTION

Figure 5 : Répartition mondiale des différentes espèces de rickettsies du SFG décrites comme pathogènes pour l’Homme.

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16

R. conorii conorii

R. conorii israelensis

R. felis

R. massiliae

R. aeschlimannii

R. helvetica

R. typhi

R. monacensis

Répartition des rickettsies en Tunisie

INTRODUCTION

Figure 6: répartition des différentes espèce de Rickettsia rapportées chez les patients et les vecteurs

Vecteur Homme

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Diagnostic?

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Diagnostic biologique

directe

La sérologie

Diagnostic biologique

18

Diagnostic microbiologique

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La sérologie

La méthode de référence Une méthode sensible et spécifique Accessible aux laboratoires de routines Le manque de standardisation Les réactions croisées observées entre les différentes espèces de rickettsies

20

Sérologie

Micro-immunofluorescence (MIF) :

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Sérologie

R. typhi R. conorii

Sérum du patient

Micro-immunofluorescence

21

Sérologie

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seuils de positivité

• IgM =1/32

• IgG =1/128

Critères de positivité

• les IgM sont positives à des taux supérieurs à 1/32

• séroconversion entre deux sérums

• Elévation significative des IgG

22

Sérologie

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Diagnostic d’espèce

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Sérologie

Titres (IgM +IgG)espèce A >

2 Titres (IgM +IgG)espèce B

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Sérologie

En Tunisie

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Sérologie

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Sérologie

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Sérologie

Diagnostic clinique

Nombre FBM/RICK

/Intracellulaire Virose Autre

Sérologie positive 121 (61%) 116 (71,2%) 5 (14,3%)

Sérologie négative 78 (39%) 47(28,8%) 30 (85,7%) 1

199 163 35 1

Tableau 3: Concordance entre la clinique et la sérologie chez les patients ayant eu un 2ème sérum (les données de l’étude multicentrique Tunisie 2012-2014).

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La sérologie

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Sérologie

Immunoblot +/- cross adsorption

Western blot avant (1,2) et après adsorption croisée avec R. typhi (3, 4) et R. felis (5, 6). Pistes 1, 3, 5 : antigène R. typhi ; pistes 2, 4, 6 : antigène R. felis.

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Problématique

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Diagnostic biologique direct

Biopsies cutanées

Sang EDTA

LCR

32

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.

Différentes Techniques de détection des Rickettsies

Culture cellulaire

Immunohistochimie

Biologie moléculaire

PCR standard

PCR nichée

PCR en temps réel

33

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34

Biologie moléculaire

Figure 7: Organisation phylogénétique des espèces de Rickettsia basée sur la comparaison des séquences des gènes 16S rDNA, gltA, ompA, ompB et gène D (par la méthode des maximums de parsimonie) (Fournier et al., 2003).

16s rDNA gltA

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Gènes cibles

gltA, ompB, ompA, 16S rRNA et 17kD

Roux V 1997, Roux V2000, Fournier PE 1998, Tzianabos T 1989.

Identification d’espèces après séquençage

permettra de faire un diagnostic d’espèces.

35

Biologie moléculaire

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Figure 4: les recommandations de la taxonomie poly-phasique pour la classification des rickettsies (Fournier et al., 2003) 36

Biologie moléculaire

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Sfax 2008-2012

37

Biologie moléculaire

ompA ompB gltA 17KDa

BCU (n=44)

Positivité 5

(11,3%) 5

(11,3%) 5

(11,3%) 7

(16%)

Séquençage R. conorii subsp israelensis (3) R. conorii subs conorii (2)

R. conorii subsp israelensis (3) - SFG

Sang-EDTA (n=101)

Positivité 1

(1%) 1

(1%) 1

(1%) 1

(1%)

Séquençage R. conorii subsp israelensis R. conorii subsp israelensis - -

Tableau 4 : PCR conventionnelles chez des patients ayant une rickettsiose

PCR conventionnelles

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PCR en temps réel (qPCR)

38

Biologie moléculaire

Sensibilité

Spécificité (TaqMan)

Rapidité

Utilisation de sonde spécifique d’espèce++

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Biologie moléculaire

Sensibilité > Nested PCR

Diagnostic rapide de la RMSF (R. rickettsii)

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• 2 qPCR: SFG et TG

• 643 échantillons testés: 45 positifs

• 31/ 45: BCU ou ECU

Biologie moléculaire

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• 2 duplex de qPCR:

– SFG (RC0338) et TG (Rp278)

– Toute rickettsies (16s rDNA) puis Rtt (TG)

Biologie moléculaire

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Biologie moléculaire

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Biologie moléculaire

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Biologie moléculaire

Angelakis, 2012

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Biologie moléculaire

Écouvillonnage de l’escarre

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Biologie moléculaire

Etude Écouvillon Biopsie cutanée

Wang 2009 4/4 (100%) (escarre+pustules)

-

Bechah 2011* 8/9(88,9%) 5/5 (100%)

Mouffok 2011 26/41 (63,4%) 4/4 (100%)

Tunisie 2012-2104 10/13 (77%) 42/53 (79,2%)

* : étude expérimentale

Tableau 5: positivité des PCR dans l’écouvillonnage de l’escarre et la biopsie cutanée

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Enquête entomologique

Taux d’infection:

Rh. sanguineus: 37,4%

C. felis: 8,3%

R. conorii dans les puces

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Sérologie rickettsiose

IgG(+) IgM(+)

Diagnostic Rickettsiose (+)

IgG(-)/IgM(+) IgG(-)/ IgM(-)

Diagnostic probable

qPCR PanRick

2ème sérum dans 15 jours

1. qPCR R. conorii/ Rtt 2. qPCR autres espèces 3. PCR ompA/ompB/gltA

suivie de séquençage

Diagnostic d’espèce

biopsie cutanée/écouvillon d’escarre

positive Négative

IgG(+) IgM(+)

Sang-EDTA?

Conclusion

Patient* : Fièvre +/-Rush cutané

Escarre « tache noire »/Piqure de tique/puce Contact avec les animaux

Figure 21 : Algorithme de diagnostic biologique lors d’une suspicion de rickettsiose

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Conclusion

Sérologie:

Diagnostic rétrospectif

De routine +++

Biologie moléculaire

Diagnostic plus accessible

Prélèvements plus simples

Techniques moins couteuses

Nouvelles technologies

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Page 53: Les rickettsioses: moyens diagnostiques · 2020-02-16 · gltA, ompB, ompA, 16S rRNA et 17kD Roux V 1997, Roux V2000, Fournier PE 1998, Tzianabos T 1989. Identifiation d’espèes

53 Zarzis , Juin 2011