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MANUEL DE PRELEVEMENT Laboratoire de Biologie Médicale Oceasoft Manuel de prélèvement

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Laboratoire de

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SOMMAIRE

Sommaire................................................................................................... 1

Résumé des modifications……………………………………………….2

Présentation du laboratoire……………………………………………..3

Traitement des demandes d’examens…………………………………..4

1-Demandes traitées au laboratoire

2-Gestion de l’urgence médicale

3-Informations obligatoires

Prélèvement ……………………………………………………………..9

1-Fiche de prélèvement / Fiche de suivi médical

2-Prélèvements sanguins

3-Recueils urinaires

4-Prélèvements destinées à la microbiologie et autres

Identification des prélèvements…………………………………….….21

Transport ……………………………………………………….………22

1-Conditions de transport

2-Délais d’acheminement

3-Température d’acheminement

Hygiène & Sécurité……………………………………….…………….23

1-Gestion des déchets

2-Incidents de prélèvements

3-Conduite à tenir en cas d’accidents d’exposition au sang

Rendu des résultats................................................................................ 26

Catalogue des examens ………………………………..………………27

Version 4

Les modifications sont annotées dans la marge à gauche par un trait vertical

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Résumé des modifications

Modification de l’adresse du site de Fréjus LOU GABIAN (p3)

Correction de l’erreur de signe pour le temps de pose du garrot pour l’Hémostase (p27)

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Présentation du laboratoire

Site de Montauroux :

Dr BARTOLO Aurore Le plan oriental - Bâtiment B – RD 562 – 83440 MONTAUROUX

Coordonnées : Tel : 04.94.50.28.43 / Fax : 04.94.99.15.69

Site de Fayence :

Dr TREIL Antoine 104 Chemin de Draguignan – 83440 FAYENCE

Coordonnées : Tel : 04.94.39.22.22 / Fax : 04.94.84.17.54

Site de Fréjus LOU GABIAN:

Dr ZANCHI Romain 364 LOU GABIAN 83600 Fréjus

Coordonnées : Tel : 04.94. 85.76.64 / Fax : 04.94.85.76.61

Site de Peymeinade :

Dr ALEX Stéphanie 13 avenue Fréderic Mistral - 06530 Peymeinade

Coordonnées : Tel : 04.93.66.34.07 / Fax : 04.93.66.02.42

Site Fréjus Vinci :

Dr ARNAUD Roger 359 avenue de Triberg - 83600 FREJUS

Coordonnées : Tel : 04.94.51.83.51 / Fax : 04.94.53.03.53

Site de Nice :

Dr COLLET Guillaume 36 boulevard Paul Montel - Résidence l’Alandier - 06200 Nice

Coordonnées : Tel : 04 93 83 46 46 / Fax : 04 93 18 86 43

Site internet du laboratoire :

ilab-analyses.fr

Pour les préleveurs externes, consultation du présent manuel sur le site

http://www.labzero.fr/ilab

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Traitement des demandes d’examens

1. Demandes traitées au laboratoire

Type de demande Documents nécessaires Infos nécessaires

Patients venant au laboratoire

Carte vitale à jour* Au nom du patient

Mutuelle *(le cas échéant) En cours de validité

Ordonnance*

Ou

-Identification univoque du patient (Nom/Prénom/Date de naissance à

minima) -Nom ou identification unique du

prescripteur -Type d’échantillon (plasma, sérum,

urine…) -Examens prescrits

-Signature du médecin

Enregistrement des demandes formulées

oralement et hors nomenclature

Remplie et visée par le patient, scannée dans son dossier

Patient prélevé à l’extérieur par

professionnel de santé (IDE, médecin…)

Coordonnées sécu + mutuelles (le cas échéant) *

Pareil que précédemment

Ordonnance * Pareil que précédemment

Fiche de suivi médical

Complétée avec à minima les données suivantes : Nom + Nom de naissance, Prénom patient, Date de naissance, Sexe, Identité préleveur,

Date et heure de prélèvement, notion d’urgence (le cas échéant)

Demande provenant d’un laboratoire partenaire (sous-

traitance)

Feuille de transmission Numéro de l’échantillon + Nom +

Prénom patient + examens demandés

* En cas de non-présentation de ces documents, au plus tard à l’occasion de la remise des résultats,

le laboratoire sera amené à facturer tout ou partie du dossier.

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2. Gestion de l’urgence médicale

Les urgences sont traitées en priorité dans le cas où la mention est formalisée par le

prescripteur sur l’ordonnance, sur demande justifiée du patient ou à l’initiative du préleveur

et/ou du biologiste s’il juge l’état de santé du patient préoccupant.

Pour les prélèvements hors du laboratoire, les préleveurs sont priés d’attirer l’attention du

secrétariat sur la notion d’urgence associée au prélèvement déposé (en plus de la notification

sur la fiche de prélèvement.)

Pour toute demande urgente, une « Fiche d’urgence » est identifiée et suit le prélèvement

jusqu’à la validation des résultats.

3. Informations obligatoires

Certains examens demandent d’être effectués dans des conditions particulières :

Jeun (glycémie, bilan lipidique)

Renseignements particuliers

Consentements

Ces conditions, à respecter scrupuleusement, conditionnent la qualité du résultat.

Elles sont rappelées systématiquement à tout patient au moment de l’accueil ou en salle de

prélèvement.

Les renseignements cliniques sont en général recueillis par le préleveur en salle de

prélèvement (ex : interférences avec des médicaments ou des aliments, dosage de

médicaments, interférence de certains médicaments avec la thyroïde, interférences de certains

aliments dans les traitements anticoagulants, notion de voyage, origine géographique, etc.)

Enfin certaines demandes d’examens doivent être accompagnées de feuilles de consentement

(voir exemples ci-après) co-signées par le médecin et le patient, le plus souvent destinées à

des laboratoires spécialisés (tri-test, recherche d’anomalie chromosomique, etc.). Le

laboratoire se charge d’entreprendre toute démarche à postériori (en cas de prélèvement hors

du laboratoire).

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Le JEUN :

Un jeun strict est obligatoire pour les examens suivants :

Glycémie

Bilan lipidique : Cholestérol total, HDL, Triglycérides

Des conditions non à jeun peuvent être acceptées pour ces examens lorsque :

Il s’agit d’une demande urgente,

Le prescripteur l’exige

Le patient souhaite quand même réaliser l’examen

Dans ces cas, un commentaire « Patient non à jeun » est mis sur le dossier patient (par le code

« OBSERV »). Celui-ci sera présent sur le compte-rendu de résultat.

Examens nécessitant renseignements :

Catégorie d’analyses Renseignements à obtenir

Bactériologie et virologie Traitement en cours

Heure de prélèvement ou recueil/ Heure de réception au laboratoire

Parasitologie et mycologie

Heure de prélèvement ou recueil/ Heure de réception au laboratoire

Origine géographique

Voyage ? Dans quel pays ?

Immuno-dépression

Antécédents pathologiques

Principaux signes cliniques, traitements en cours

Dosage de médicaments

Posologie et nombre de prise quotidienne

Date et heure de dernière prise

Nom du médicament

Hormonologie Date des dernières règles et/ou absence de règles et/ou traitement

Hémostase Nature des anticoagulants

Biochimie : Calcul de

Crokcroft Poids du patient

Biochimie : CKD-EPI Age, Sexe

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Biochimie : MDRD Couleur de la peau, âge et sexe

Marqueurs Est-ce pour un suivi ? Traitement en cours ?

Consentements :

Certains examens nécessitent le consentement éclairé du patient pour leur réalisation.

Ils sont réalisés dans les laboratoires de biologie spécialisée et concernent pour la plupart les

diagnostics génétiques (dépistage T21, HLA B27…) et le dosage des marqueurs spécifiques.

Pour chaque demande, le laboratoire s’assure de la présence du consentement signé par le

patient et le médecin.

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Figure 1: Feuille de consentement CERBA, dépistage T21

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Prélèvements

1. Fiche de prélèvement / Fiche de suivi médical

Une fiche de prélèvement (exigence de la norme NF EN ISO 15189) est éditée pour chaque

prélèvement au laboratoire. Elle doit contenir les informations nécessaires pour identifier le

patient et le prescripteur autorisé. Elle doit également fournir des données cliniques

pertinentes. Elle comprend les items suivants :

Nom, prénom, date de naissance (et éventuellement nom de jeune fille), adresse,

téléphone ;

Nom du ou des prescripteurs

La liste codée des examens prescrits avec séparation des examens effectués au

laboratoire des examens sous-traités

Les éléments cliniques pertinents (raisons de l’ALD, notion de traitement lors du

dosage des hormones thyroïdiennes ou de marqueurs tumoraux, notion de prise de

médicaments et/ou posologie, contexte de la demande, etc.)

Le paraphe du préleveur

Cette fiche est éditée en même temps que des étiquettes de marquage des différents

échantillons. Chaque étiquette doit être constituée à minima :

Du sexe, nom, prénom, nom de jeune fille en cas de groupe, date de naissance

Du jour et de l’heure du prélèvement

Du numéro de dossier.

Lorsque le prélèvement est effectué à l’extérieur du laboratoire, les préleveurs externes

disposent de fiche de suivi médical. Il s’agit là d’un document primordial, dont la rédaction

va conditionner l’acceptation ou le refus des échantillons par le laboratoire.

Les éléments suivants sont à renseigner:

Identification du préleveur, date et heure de prélèvement

Identification minimaliste du patient : nom, prénom, nom de jeune fille, date de

naissance, sexe, adresse, téléphone et numéro de sécurité sociale

Renseignements cliniques minimalistes

Notion de transmission des résultats et d’urgence

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2. Prélèvements sanguins

Déroulement d’un prélèvement sanguin

Etape Informations IMPORTANT

Appel et installation du patient dans la salle de

prélèvement

Vérification Identité + Prescription

Demander au patient Nom + Prénom + Date de naissance

Nom du prescripteur +

concordance examens prescrits / examens saisis

Visa du préleveur sur la fiche de prélèvement attestant les vérifications suivantes

Recueil des informations nécessaires à la réalisation de

l’examen

Etat de jeun Renseignement cliniques

Contexte de la prise de sang Date de dernières règles

Noter les informations nécessaires sur la fiche de prélèvement

Désinfection des mains Solution hydro alcoolique

Choix des tubes en fonction de la demande et préparation

du matériel de ponction

Se référer au paragraphe suivant

Pose du garrot

Choix de la veine et désinfection de la zone de

prélèvement Alcool 70° + coton

Réalisation du prélèvement Suivre l’ordre de prélèvement

des tubes (se référer au paragraphe suivant)

Desserrer le garrot dès le premier jet de sang

Retrait du dispositif de prélèvement, faire réaliser un point de compression et poser

le pansement

Elimination des déchets : l’aiguille et corps de pompe (si usage unique) dans les DASRI

Attention : RECAPUCHONNAGE INTERDIT

Identification et vérification des tubes

Avec les étiquettes sorties à la saisie du dossier ou au stylo

avec le Nom + Prénom + Date de naissance

Transmettre les tubes selon les recommandations de conservation, ainsi que le

dossier patient pour analyse

Heure de dépôt des échantillons pour les

prélèvements externes

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L’ensemble de ces éléments (à l’exception du 1er

) sont communs aux prélèvements à domicile

et au laboratoire.

Choix des tubes :

Sur le guide de prélèvement fourni avec le manuel et dans le catalogue d’examens

Ordre de prélèvement des tubes :

Figure 2: Ordre de prélèvement des tubes - Recommandations BD

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Protocoles de prélèvements particuliers

Prélèvements pour une hémoculture :

Noter les renseignements nécessaires sur la fiche de renseignement : l’heure du

prélèvement, température du patient au moment du prélèvement ainsi que le

traitement éventuel (antibiotique).

Prendre 1 flacon aérobie et 1 flacon anaérobie ; noter l'heure

Réaliser le prélèvement de préférence lors d'un pic fébrile, à l’aide du dispositif à

ailettes de préférence (ou à défaut à la seringue après une désinfection soignée du site

et des bouchons de chaque flacon) à l’alcool iodé ou à la Bétadine) :

Technique classique au dispositif à ailettes : Prélever la veine avec l’aiguille à

ailettes. Passer les flacons l’un après l’autre (remplir environ 10 ml par flacon).

Prélèvement à la seringue : si veine difficile : Prélever de façon aseptique 20ml de

sang. Introduire stérilement 10ml de sang à travers le centre du bouchon en

caoutchouc de chacun des flacons, en respectant l’ordre suivant : N°1 : Anaérobie, N°

2 : Aérobie.

A la fin du prélèvement, pendant le temps de contention, désinfecter à nouveau les

flacons et repositionner les capsules de protection.

Homogénéiser les flacons par 2 ou 3 retournements.

Conserver à 37°C.

Tests de tolérance au glucose :

Le patient doit être strictement à jeun pour le premier prélèvement.

Pour tous ces tests, les prélèvements peuvent se faire sur :

tube fluoré (à utiliser obligatoirement pour les prélèvements réalisés par les

préleveurs externes)

tube sec avec gel accepté si centrifugation rapide des tubes (c'est-à-dire < 2 heures

après le prélèvement)

Glycémie à jeun et post-prandiale

Réaliser le premier prélèvement

Puis réaliser un deuxième prélèvement 1h30 à 2 heures après le début d’un déjeuner

ou un petit déjeuner riche en sucre.

Hyperglycémie provoquée

Lorsque le patient est à jeun, réaliser le premier prélèvement

Le patient ingère la quantité de glucose prescrite par le médecin. En absence de

prescription donner au patient 1 g de glucose par kg de poids.

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Réaliser à nouveau un prélèvement sur tube sec ou fluoré selon la prescription et

pratiquer en parallèle une prise d’urines au même temps.

Il peut être demandé de faire en même temps un dosage d’insuline : Prélever aux

mêmes temps que précédemment un tube sec avec gel ou héparine lithium.

Dépistage diabète gestationnel (consensus gynécologique)

Réaliser le premier prélèvement

Le patient ingère 75 g de glucose.

Réaliser à nouveau un prélèvement après 60 et 120 minutes le patient étant resté au

repos dans l’intervalle de temps.

Dosage de Cortisol

Sans précision sur la prescription, un prélèvement sur tube sec (bouchon jaune) est réalisé

entre 7h et 9h.

Lorsqu’une analyse est transmise, se reporter au guide du laboratoire spécialisé pour

prendre connaissance des conditions de prélèvement, choix des tubes et conditions de

conservation des échantillons.

3. Recueils urinaires

Préconisations prélèvement pour ECBU :

Se laver les mains.

Faire une toilette intime soigneuse à l’aide de la lingette antiseptique fournie.

Recueillir la fin des urines dans le flacon

Identifier le flacon avec le nom et prénom si cela n'a pas été fait par le laboratoire et date

et heure du recueil.

Le flacon doit être acheminé au laboratoire dans les plus brefs délais

Cas particulier :

Le sac collecteur pour les enfants :

Nettoyer soigneusement la peau qui doit être propre et sèche.

Détacher et jeter la découpe centrale de la poche et retirer le revêtement qui protège

l'adhésif.

Appliquer en massant pour garantir une bonne adhérence.

Ne pas dépasser 30 min de pose du sac collecteur.

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Pour enlever la poche soulever un coin et détacher doucement. Pour assurer

l'étanchéité coller l'adhésif face contre face, renforcer éventuellement avec un

sparadrap. Éviter le transfert de l'urine dans un autre flacon dans le cas de recueil ne

pouvant être transmis immédiatement au laboratoire.

Rapporter les urines dans les plus brefs délais (< 2h)

Le sondage pour ECBU chez les patients incontinents :

Respecter les règles d'asepsie (gants et compresses stériles, champ…).

Utiliser une sonde courte à extrémité arrondie.

Recueillir l’urine en milieu de jet.

Enlever la sonde

Bien préciser sur la fiche de suivi « Sondage »

Rapporter les urines dans les plus brefs délais (< 2h)

Préconisations pour un prélèvement ADDIS :

3 heures avant le lever habituel :

-Vider la totalité de la vessie dans les toilettes

-Boire ¼ Litre d’eau

-Noter la date et l’heure sur le flacon fourni par le laboratoire

Se recoucher et rester allongé et au repos pendant 3 heures.

3 heures après (le plus exactement possible):

-Uriner dans le flacon fourni par le laboratoire pour recueillir la totalité des urines.

-Noter l’heure sur le flacon.

Identifier le flacon avec les nom et prénom si cela n'a pas été fait par le laboratoire.

Rapporter les urines dans les plus brefs délais

Préconisations pour un prélèvement d’urines sur 24h :

Au lever :

Vider la totalité de la vessie dans les toilettes

Noter sur le flacon : Nom, Prénom, date et heure de début du recueil

Pendant 24h :

Recueillir la totalité des urines émises dans le flacon jusqu’au lendemain à la même

heure du premier recueil.

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La totalité des urines de 24 heures doit être acheminée au laboratoire dans les plus brefs

délais (maximum 6 heures après la fin du recueil).

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Guide pour le recueil et le pré-traitement des urines pour ECBU

Délai de stabilité < 2h à T°C ambiante < 2h à T°C ambiante 48h à T°C ambiante

Pré-traitement

Délai de stabilité Chimie En fonction des

paramètres : Cf Manuel de prélèvement

48h à T°C ambiante 48h à T°C ambiante

Chimie En fonction des paramètres : Cf Manuel de prélèvement

48h à T°C ambiante

48h à T°C ambiante

+ Feuille de transmission avec renseignements + Heure de recueil et heure de réception

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4. Prélèvements destinés à la microbiologie et autres

Préconisations et renseignements pour un prélèvement de selles pour une parasitologie

ou une coprologie :

Préconisations :

Recueillir les selles dans un flacon stérile fourni par le laboratoire.

Identifier le flacon avec le nom et prénom et noter la date et l’heure du recueil

Renseigner la fiche de préconisation remise par le secrétariat.

Ramener dans l’heure

Renseignements à obtenir :

Raison de l'examen ?

Voyage récent ?

Traitement antibiotique en cours ?

Préconisations et renseignements pour un prélèvement pour un SCOTCH TEST :

Préconisation :

A effectuer au lever avant la toilette et les premières selles :

Décoller le scotch de son support.

Appliquer le coté adhésif sur les plis de la marge anale et le maintenir en appuyant

quelques secondes.

Retirer le scotch et l’étaler sur la lame support.

Renouveler l’opération avec le second scotch.

Replacer les 2 lames dans l’étui.

Identifier l'étui avec les nom et prénom si cela n'a pas été fait par le laboratoire.

L'étui doit être acheminé au laboratoire dans les plus brefs délais.

Renseignements :

Date et heure du recueil

Signes cliniques : démangeaisons anales, insomnies ?

Préconisations et renseignements pour un prélèvement vulvo-vaginal

Préconisations:

Éviter tout rapport sexuel 24 heures avant le test.

Aucune toilette intime, même superficielle et tout traitement la veille du test.

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Il est conseillé d'éviter le prélèvement pendant la période menstruelle car la flore est

modifiée (sauf avis contraire du prescripteur).

Le prélèvement doit être réalisé avant ou à distance de tout traitement antibiotique

(supérieur à 15 jours pour les chlamydiae, supérieur à 5 jours pour les germes banals).

Éventuellement poser une protection.

Prélèvement :

En préambule au prélèvement, le biologiste préleveur doit s’assurer des

conditions physiologiques du sujet.

Après mise en place d’un spéculum à usage unique, prélever/

1 écouvillon pour le prélèvement vaginal

+ 1 écouvillon si demande de recherche de Mycoplasme (sur milieu mousse ou sec

mais pas de gel)

+ 1 écouvillon si demande de recherche de Chlamydiae (sur milieu spécifique)

Le prélèvement, s’il a été pratiqué à l’extérieur, doit être acheminé au laboratoire dans les plus

brefs délais (2 heures au maximum)

S’il a été pratiqué sur milieu de transport, il peut être conservé à température ambiante au

maximum 24 heures.

Renseignement à fournir :

Femme enceinte ?

Traitement antibiotique ?

Stérilet ?

Préconisations et renseignements pour un prélèvement urétral

Le patient ne doit pas uriner dans les deux heures précédant le prélèvement.

Prélever avec 1 écouvillon au niveau du méat

+ 1 écouvillon si demande de recherche de Mycoplasme (sur milieu mousse ou sec

mais pas de gel)

+ 1 écouvillon si demande de recherche de Chlamydiae (sur milieu spécifique)

Pour la recherche de chlamydiae et de mycoplasme : introduire un écouvillon fin

dans l’urètre de 2 à 3 cm en effectuant 3 ou 4 rotations pour recueillir le maximum de

cellules.

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Autres prélèvements bactériologiques

Nature du

prélèvement Mode de prélèvement Matériels

Recherche de

dermatophytes :

Ongles, cheveux,

squames

Prélever de préférence à la périphérie des

lésions des squames à l’aide d’un

vaccinostyle ou d’une curette

En cas de teigne, épiler les cheveux

susceptibles d’être atteints

Pour les ongles, couper avec la pince à

ongle toute la partie de l’ongle atteinte,

gratter à la limite de la zone saine avec un

vaccinostyle ou d’une curette

En cas de lésion suintante, écouvillonner

le pus et gratter le plancher de la lésion

Pots stériles

Vaccinostyle ou

curette

Plaie, escarre,

larmes, pus profond

etc

Prendre les précautions d’asepsie pour

éviter de contaminer le prélèvement par

les bactéries se trouvant normalement sur

la peau.

Mettre des gants à usage unique

Passer les écouvillons sur toute leur

surface au niveau de la zone prélevée

Noter la prise éventuelle d’antibiotiques.

Si abcès fermé :

prélèvement à la

seringue

Si abcès ouvert :

Minimum : 2

écouvillons avec

milieu de transport

ORL :

Gorge :

amygdales

Oreille : conduit

auditif externe

Nez / Pharynx

Yeux

Prélever avant antibiothérapie :

au niveau des zones inflammatoires ou

nécrotiques

à la périphérie des fausses membranes, sur

les amygdales

Éviter de toucher la langue, la luette et la

paroi postérieure du pharynx

A distance de tout ATB

1 à 2 écouvillons

stériles avec milieu

de

1 écouvillon par

œil

Crachat, tubage et/ou

aspiration

bronchique

Faire le prélèvement avant le lever pour le

crachat et dans l’heure qui suit le lever pour le

tubage

Flacon stérile,

acheminé le plus

rapidement au

laboratoire

Recherche Dermodix Arracher plusieurs cils avec les racines

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Regarder immédiatement au microscope

Préconisations et renseignements pour un test à l’urée marqué HELI-KIT®

Préconisations:

Avoir arrêté toute antibiothérapie depuis au moins 4 semaines.

Avoir arrêté tout traitement à base d’inhibiteur de la pompe à protons (IPP) depuis au

moins 2 semaines. Médicaments concernés (liste non exhaustive) : Omeprazole ®,

Mopral ®, Inexium ®, Zoltum ® ou Esomeprazole ®.

Avoir arrêté de boire, manger ou fumer depuis au moins 6 heures.

Acheter en pharmacie un test HÉLI-KIT 75 mg ®

Prendre rendez-vous au laboratoire : le test nécessite votre présence pendant au moins

45 minutes.

Le prélèvement réalisé, le dosage est envoyé à un laboratoire spécialisé.

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Identification des prélèvements

L’absence ou l’erreur d’identification du prélèvement ou de l’échantillon constitue un

critère de non-conformité :

Celle-ci sera enregistrée comme telle sur le logiciel qualité des laboratoires

Celle-ci pourra entraîner la non-exécution des actes et apparaîtra en

commentaire sur le compte rendu de résultats.

L’identification des prélèvements passe par :

L’identification correcte des tubes

La présence des fiches de suivi (pour un prélèvement au laboratoire) ou des fiches de

prélèvements (pour les prélèvements externes) complétées avec les informations

nécessaires et obligatoires.

Ces éléments sont utilisés pour différencier les homonymes, lier le patient à ses antériorités et

attribuer les valeurs de références adaptées (homme # femme # enfant).

Le technicien réceptionnant l’échantillon au laboratoire vérifie la conformité des échantillons

prélevés par rapport à la prescription ainsi que la présence de l’ensemble des informations

nécessaires et annote la conformité du prélèvement sur la fiche de prélèvement.

A la suite de cette vérification de conformité, le technicien du laboratoire étiquette les tubes

en fonction de la demande enregistrée.

L’ensemble des données recueillies sur le patient, le prélèvement et le préleveur est reporté

dans le dossier informatique du patient.

Attention certains patients peuvent présenter les mêmes noms, prénoms et dates de

naissance, d’où la nécessité de préciser l’adresse et le lieu de naissance, pour la

validation des cartes de groupes sanguins.

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Transport

1. Conditions de transport

Le transport des échantillons doit respecter les règles fixées par la réglementation ADR

(Accord européen relatif au transport international des marchandises dangereuses par la

route) et notamment l’instruction p650.

Ainsi notre transport d’échantillon inter site respecte les règles suivantes :

Triple emballage de l’échantillon biologique

Identification de l’emballage secondaire ou tertiaire par la mention « MATIÈRE

BIOLOGIQUE CATÉGORIE B » doit être apposée à côté du logo UN 3373.

2. Délais d’acheminement

Les délais d’acheminement fixés par le laboratoire pour chaque examen sont notés dans le

« Catalogue des examens ».

3. Température d’acheminement

En aucun cas les échantillons du jour ne doivent être conservés au réfrigérateur (sauf

indication particulière) ou en plein soleil. La température à respecter est la température

ambiante définie comme comprise entre 15°C et 25°C.

Le laboratoire peut éventuellement donner des bacs réfrigérants aux préleveurs externes en

été.

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Hygiène et sécurité

1. Gestion des déchets

Déchets potentiellement contaminés

Les aiguilles à prélèvement ne doivent en aucun cas être recapuchonnées.

Il s’agit des déchets d’activité de soins à risques infectieux (ou DASRI) y compris les restes

d’échantillons analysés, des matériels piquants ou coupants (aiguilles, lames, pipettes pasteur,

seringues …), et les déchets solides des automates.

Ces déchets sont collectés dans les containers en plastique ou carton jaune disponibles en

salle(s) technique(s), les aiguilles étant au préalable collectées dans les containers spécifiques

présents dans chaque salle de prélèvement et dans les mallettes des préleveurs.

Remarque : lors des prélèvements à domicile opérés par le laboratoire, aucun déchet

potentiellement contaminé n’est laissé chez le patient. L’élimination des déchets est sous la

responsabilité du préleveur externe.

Une fois remplis, les containers sont fermés de façon définitive et stockés au laboratoire. Ils

sont ramassés une fois par semaine par une société agréée avec laquelle a été établi un contrat

conventionnel.

Déchets assimilables à des ordures ménagères ne contenant pas d’informations

confidentielles

Il s’agit des papiers ne comportant pas d’informations confidentielles. Leur élimination est

opérée par l’agent d’entretien en vue de leur élimination par les services de la ville.

Déchets assimilables à des ordures ménagères contenant des informations

confidentielles

Il s’agit principalement des fiches de suivi médical, fiches de prélèvement, … . Un broyeur

est mis à la disposition du personnel pour détruire tous les documents à caractère confidentiel.

Ils sont ensuite éliminés par le circuit décrit précédemment.

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2. Incidents de prélèvement

Incidents Causes Conduite à tenir

Hématomes

-Garrot trop serré

-Prélèvement difficile (veines invisibles, trop profondes, veines très fines, mobiles, ponctions répétées, début de sclérose).

-Comportement anormal du patient, gestes inconsidérés.

-Rassurer le patient

-Appliquer un tampon alcoolisé puis un pansement.

Malaise sans perte de

connaissance

-Angoisse

-Jeûne

-Garder son calme et retirer l’aiguille

-Faire comprimer l’endroit de la ponction avec un tampon par le patient

-L’allonger, desserrer col, cravate, ceinture, ne pas couvrir

-Rassurer le patient. Faire respirer à fond, donner éventuellement de l’eau, du sucre

-Surveiller ses constantes vitales

Perte de connaissance du

patient

-Anxiété

-Jeûne

-Causes médicales

-Garder son calme et retirer l’aiguille

-Placer le patient dans une position confortable

-Surveiller les constantes vitales

-Faire intervenir un biologiste ou un personnel titulaire de l’AFGSU. Contacter les secours si le malaise persiste.

Piqure du nerf médian

-Angle de piqûre trop grand

-Piqûre trop profonde.

-Arrêt du prélèvement,

-Appeler le médecin responsable.

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3. Conduite à tenir en cas d’Accident d’Exposition au Sang (AES)

Le préleveur est soumis à un risque de contamination par les virus des hépatites B, C ou Delta

ou par le VIH au contact de liquide biologique (sang, urines, expectoration…).

Cette contamination est possible selon deux modalités :

Soit par une effraction cutanée (piqûre d’aiguilles, blessure…)

Soit par projection sur une muqueuse (bouche, œil), ou sur une peau lésée

Conduite à tenir:

Immédiatement

En cas de piqûre, blessure ou de contact sur une peau lésée :

Ne pas faire saigner

Nettoyer immédiatement la plaie à l’eau courante et au savon

Rincer abondamment

Désinfecter pendant 5 minutes en immergeant la blessure au Dakin OU à l’eau de

javel à 2,6 % fraîchement diluée au 1/5ème

OU à l’alcool 70° OU à la Bétadine

dermique

En cas de projection sur les muqueuses (les yeux, la bouche) :

Rincer abondamment pendant 5 minutes avec de l’eau ou du sérum physiologique

Dans l’heure qui suit :

Prévenir son responsable

Consulter un service d’urgences médical qui décidera du suivi et des éventuels

traitements à réaliser

Réaliser chaque fois que possible et avec l’accord du sujet source, une prise de sang

prescrite par un médecin, afin d’en connaître le statut sérologique. En cas

d’impossibilité ou de refus, le sujet source sera considéré comme potentiellement

infecté.

Dans les 24h :

Faire une déclaration d’accident de travail. La piqûre doit faire systématiquement

l’objet d’une déclaration d’accident de service ou de travail selon les modalités légales

afin de préserver les droits de l’agent. Elle permet la prise en charge non seulement de

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la lésion produite immédiatement (piqûre, blessure…) mais aussi les complications

éventuelles et les suites ultérieures (infections…).

Analyser l’accident

Etudier les circonstances de l’accident afin d’éviter qu’il ne se reproduise.

Quelles précautions observer afin d’éviter tout accident ?

Considérer tous les tubes comme potentiellement infectés.

Ni manger, ni boire, ni fumer au laboratoire.

Ne jamais pipeter à la bouche.

Lorsqu’un liquide se répand sur une surface, la désinfecter immédiatement avec de

l’eau de javel à 10 pour cent.

Désinfecter tout objet ou tout appareil contaminé pendant une minute avant de le

nettoyer.

Se laver les mains à chaque fois que l’on quitte le lieu de la manipulation.

Conseiller le port de gants.

Rendu des résultats

Les résultats sont rendus selon 3 modalités :

au patient directement (plusieurs possibilités : exemplaire papier à récupérer au

laboratoire, exemplaire à recevoir par courrier, ou consultation) ;

aux prescripteurs (par courrier ou télétransmission)

au laboratoire demandeur de l’examen (par télétransmission sécurisée) ;

Les résultats sont rendus selon les exigences normatives et règlementaires après la validation

biologique et sont sous la responsabilité du biologiste.

Les délais de rendu des résultats sont indiqués au patient au moment du prélèvement en même temps

qu’une carte avec son n° de dossier lui est remise. Le n° de dossier ou les Nom/Prénom/date de

naissance seront demandés pour tout retrait de résultat.

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Seule la version électronique fait foi

Catalogue des examens

Liste des examens réalisés au laboratoire

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

Hématologie

NF EDTA Sang total

24h à T°C Ambiante

48h réfrigéré (tirer une lame)

(9)

T°c ambiante

Ou Réfrigéré

Tirer une lame si

échantillon transmis le

lendemain ou pour les

échantillons du samedi

J-0 à +1

PLAQ EDTA Sang total

24h à T°C Ambiante

48h réfrigéré (tirer une lame)

(9)

T°c ambiante

Ou Réfrigéré

Tirer une lame si

échantillon transmis le

lendemain ou pour les

échantillons du samedi

J-0 à +1

VS EDTA Sang total

6h à T°C ambiante

24h entre 2 et 8°C (6)

T°c ambiante

Ou Réfrigéré

J-0 à +1

Réticulocytes EDTA Sang total 24h à T°C Ambiante

T°c ambiante Ou

J-0 à +1

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

72h entre 2 et 8°C (9)

Réfrigéré

Hémostase

D-Dimères Citrate de

sodium

Plasma

citraté 24h

(3, 4, 5)

8h T°C ambiante

Sinon congeler

T° Ambiante Tube rempli >80%

Pose du garrot <1min J-0 à +1

FIB Citrate de

sodium

Plasma

citraté 24h

(3, 4, 5)

8h T°C ambiante

Sinon congeler

T° Ambiante Tube rempli >80%

Pose du garrot <1min J-0 à +1

TCA Citrate de

sodium Plasma citraté

8h

(3, 4, 5)

4h T°C ambiante

Sinon congeler

T° Ambiante

Tube rempli >80%

Pose du garrot <1min

Cas d’un suivi d’un traitement à l’héparine :

prélèvement à réaliser au laboratoire

J-0 à +1

TP Citrate de

sodium Plasma citraté

24h (3, 4, 5)

8h T°C ambiante

Sinon congeler

T° Ambiante

Ne pas réfrigérer

Tube rempli >80%

Pose du garrot <1min J-0 à +1

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

AT3 Citrate de

sodium Plasma citraté

24h (3, 4, 5)

8h T°C ambiante

Sinon congeler

T° Ambiante J-0 à +1

Biochimie

Acide urique Tube sec

gel Sérum 24h

(2,7)

3 jours entre 15 et 25°C

7 jours entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Acide urique urinaire

Flacon à urine

urine 4 jours entre 15 et 25°C 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante J+1

ASAT Tube sec

gel Sérum 24h

(2,7)

4 jours entre 15 et 25°C

7 jours entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante Exempt d'hémolyse J+1

ALAT Tube sec

gel Sérum 24h

(2,7)

3 jours entre 15 et 25°C

7 jours entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

Albumine Tube sec

gel Sérum 24h

(2,7)

7 jours entre 15 et 25°C

30 jours entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Albumine urinaire

Flacon à urine

urine 24h à température ambiante

2 jours entre 2 et 8°C 7 jours entre 2

et 8°c 7 jours entre 2

et 8°c

Amylase Tube sec

gel Sérum 24h

(2,7) 7 jours entre 2

et 25°c 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante J+1

Amylase urinaire Flacon à

urine urine

2 jours entre 15 et 25°C

10 jours entre 2 et 8 °C

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante Recueil sans conservateur J+1

APOA1 Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

24h entre 15 et 25°C

8 jours entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

APOB Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

24h entre 15 et 25°C

8 jours entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

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Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

Bilirubine Totale Tube sec

gel Sérum 8h

24h entre 15 et 25°C

7 jours entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante

Protéger les échantillons de la lumière directe

Exempt d'hémolyse

J+1

Bilirubine Directe

Tube sec gel

Sérum 8h

3 jours entre 15 et 25°C si conservée à l’abri de la

lumière

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante

Protéger les échantillons de la lumière directe.

Exempt d'hémolyse et de lipémie

J+1

Calcium Tube sec

gel Sérum

24h

(2,7)

7 jours entre 15 et 25°C

3 semaines entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Calcium urinaire Flacon à

urine Urine

Stable 2 jours entre 15 et 25°C et 4 jours entre 2 et 8°C

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Cholestérol HDL Tube sec

gel Sérum

24h

(2,7)

2 jours entre 15 et 25°C

7 jours entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante A jeun J+1

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

Cholestérol Total Tube sec

gel Sérum

24h

(2,7)

24h entre 15 et 25°C

(7)

7 jours entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante A jeun J+1

Chlore Tube sec

gel Sérum

24h

(7) 7 jours entre 2

et 25°c 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante J+1

Chlore urinaire Flacon à

urine urine 7jours entre 2 et 25°C T° Ambiante J+1

CO2 (réserve alcaline)

Tube sec gel

Sérum 24h

(7)

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante Exempt d'hémolyse

Pas de ré-analyse J+1

Créatine Kinase Tube sec

gel Sérum 24h

(2,7)

24h entre 15 et 25°C

(7)

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante Exempt d'hémolyse J+1

Créatinine Tube sec

gel Sérum

24h

(2,7) 7 jours entre 2

et 25°c 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante J+1

Créatinine urinaire

Flacon à urine

Urine 7 jours entre 2 et 8°C 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante J+1

CRP Tube sec

gel Sérum

24h

(2,7) 11 jours entre

15 et 25°C 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante J+1

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33

Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

2 mois entre 2 et 8°c

Electrophorèses des protéines

Tube sec gel

Sérum 8h

7jours entre 2 et 8°C

1 mois congelé

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Fer Tube sec

gel Sérum 24h

(7)

7 jours entre 15 et 25°C 3 semaines

entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante Exempt d'hémolyse J+1

Facteur Rhumatoïde

Tube sec gel

Sérum 8h

1 Jour entre 20 et 25°C

8 jours entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

GGT Tube sec

gel Sérum

24h

(7) 7 jours entre 2

et 25°c 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante J+1

Glucose

Tube Fluorure

Tube sec gel

Plasma

Sérum

24h sur tube fluorure

2h sur tube sec

(7)

48h entre 15 et 25°c

7 jours entre 2 et 8°C

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante A jeun J+1

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34

Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

Glucose urinaire Flacon à

urine Urine 2h entre 2 et 25°c T° Ambiante A jeun J+1

HbA1C EDTA Sang total 7 jours entre 2 et 8°C

24 heures à T°C ambiante T° Ambiante Volume minimal : 1.5ml J+1

IGA Tube sec

gel Sérum

24h

(7) 8 mois entre 2

et 25°C 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante

Eviter les échantillons à forte hémolyse

J+1

IGG Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

4 mois entre 15 et 25°C

8 mois entre 2 et 8°C

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante Eviter les échantillons à

forte hémolyse J+1

IGM Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

2 mois entre 15 et 2°C

4 mois entre 2 et 8°C

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante Eviter les échantillons à

forte hémolyse J+1

LDH Tube sec

gel Sérum 5h

7 jours entre 15 et 25°C

4 jours entre 2

T° Ambiante Eviter les échantillons à

forte hémolyse J+1

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

et 8°C

Lipase Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

7 jours entre 15 et 25°C

3 semaines entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante Eviter les échantillons à

forte hémolyse ou ictère J+1

Magnésium Tube sec

gel Sérum

24h

(7) 7 jours entre

15 et 25°C 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante

Eviter les échantillons à forte hémolyse

J+1

Magnésium urinaire

Flacon à urine

Urine 3 jours entre 2 et 8°C 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante J+1

Micro albumine Flacon à

urine Urine

24h entre 15 et 25°C

1 mois entre 2 et 8°C

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Phosphatase alcaline

Tube sec gel

Sérum 24h

(7) 7 jours entre 2

et 25°c 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante

Eviter les échantillons à forte hémolyse

J+1

Phosphore Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

24h entre 15 et 25°C

4 jours entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante Eviter les échantillons à

forte hémolyse J+1

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

Phosphore urinaire

Flacon à urine

Urine Stable 24h entre 2 et 8°c 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante J+1

Potassium Tube sec

gel Sérum 5h

6 semaines entre 2 et

25°C si séparé des cellules

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante Exempt d'hémolyse J+1

Potassium urinaire

Flacon à urine

Urine 45 jours entre 15 et 25°C

2 mois entre 2 et 8°c 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante J+1

Protéines totales Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

6 jours entre 15 et 25°C

4 semaines entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Protéines urinaires

Flacon à urine

Urine 12 à 24h à T° Ambiante

48h entre 2 et 8°C

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Sodium Tube sec

gel Sérum

24h

(7) 14 jours entre

2 et 25°C 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante Exempt d'hémoyse J+1

Sodium urinaire Flacon à

urine Urine 45 jours entre 2 et 25°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

Transferrine Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

4 mois entre 15 et 25°C

8 mois entre 2 et 8°C

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Triglycérides Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

24h entre 15 et 25°C

7 jours entre 2 et 8°c

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante A jeun J+1

Urée Tube sec

gel Sérum

24h

(7) 7 jours entre 2

et 25°C 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante

Eviter les échantillons à forte hémolyse

J+1

Urée urinaire Flacon à

urine Urine

Stable 2 jours à T°c ambiante et 7jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Immunologie / Sérologie Infectieuse / Auto-Immunité / Allergologie Attention : les tubes doivent être complètement remplis

AFP

Tube sec gel

Sérum 8h

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante J+1

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

Anticorps HBc Tube sec

gel Sérum 8h

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°c

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante J+1

Anticorps HBS Tube sec

gel Sérum 8h

8h à T°C ambiante

4 jours entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante

Si analyse >8h après le prélèvement, re

centrifuger pendant 15 min à 3000g

J+1

Antigène HBS Tube sec

gel Sérum 8h

8h à T°C ambiante

4 jours entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler Au-delà, congeler

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante

Si analyse >8h après le prélèvement, re

centrifuger pendant 15 min à 3000g

J+1

Anticorps HCV Tube sec

gel Sérum 8h

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°c

Au-delà, congeler

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante J+1

Anti- TPO Tube sec Sérum 8h 8h à T°C

ambiante 7 jours entre 2 T° Ambiante J+1

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39

Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

gel 48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

et 8°c

Anti-Tg Tube sec

gel Sérum 8h

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

BNP Tube EDTA Plasma 5h

3h à température

ambiante 8h entre 2 et

8°C >8h : à

congeler (pendant

60jours max)

T° Ambiante

ou

Réfrigéré

CA 125 Tube sec

gel Sérum

24h

(2)

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante J+1

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

CA 19-9 Tube sec

gel Sérum

24h

(2)

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante J+1

CA 15-3 II Tube sec

gel Sérum 8h

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante J+1

CEA Tube sec

gel Sérum 8h

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante J+1

Cortisol Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante Noter l'heure du

prélèvement J+1

CMV IgG Tube sec Sérum 8h 5 jours entre 2

et 8°C Sérothèque T° Ambiante J+1

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

gel congelée 1 an

CMV IgM Tube sec

gel Sérum 8h

5 jours entre 2 et 8°C

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante J+1

EBV Tube sec

gel Sérum 8h

5 jours entre 2 et 8°C

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante

Ferritine Tube sec

gel Sérum 8h

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante Eviter les échantillons à

forte hémolyse J+1

Folate III Tube sec

gel Sérum 8h

8h Réfrigéré >8h : à

congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante Eviter les échantillons à

forte hémolyse J+1

FSH Tube sec

gel Sérum 8h

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

HCG Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante J+1

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

8°C Au-delà, congeler

HEP A-IgM/ IgG Tube sec

gel Sérum 8h

7 jours entre 2 et 8°C

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante J+1

HIV Tube sec

gel Sérum 8h

24h à T°C ambiante

8 jours entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante J+1

IgE Tube sec

gel Sérum 24h

5 jours entre 2 et 8°C 2 mois

congelé

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

LH Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Myoglobine Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

β2 microglobuline

Tube sec gel

Sérum 24h

5 jours entre 2 et 8°C

1 an congelé

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante

Œstrogène Tube sec

gel Sérum

24h

8h à T°C ambiante

14 jours entre 2 et 8°C Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Pro-BNP Tube sec

gel Sérum 8h

4 jours entre 2 et 8°C 6 mois

congelé

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Progestérone Tube sec

gel Sérum 24h

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Prolactine Tube sec

gel Sérum 8h

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante

J+1

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

PSA Total Tube sec

gel Sérum

24h

3h si combiné au PSA Libre

(6)

24h entre 2 et 8°C

>24h : à congeler

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante Si combiné au PSA libre, centrifuger et réfrigérer

dans les 3h J+1

PSA Libre Tube sec

gel Sérum

3h

(6)

24h entre 2 et 8°C

>24h : à congeler

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante centrifuger et réfrigérer

dans les 3h J+1

PTH Tube sec

gel Sérum 5h

4h à T°C ambiante

8h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Rubéole IgG Tube sec

gel Sérum 8h

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante J+1

SDHA Tube sec

gel Sérum 8h

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

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45

Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

Au-delà, congeler

T3 Libre Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

T4 Libre Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Testostérone Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Thyroglobuline Tube sec

gel Sérum

24h

(2)

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

Toxoplasme IgM Tube sec

gel Sérum 8h

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante

Ou Réfrigéré J+1

Toxoplasme IgG Tube sec

gel Sérum 8h

8h à T°C ambiante

4 jours entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

Sérothèque congelée 1 an

T° Ambiante J+1

Troponine I Tube EDTA Plasma 8h 7 jours entre 2

et 8°c T° Ambiante J+1

TSH Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Vitamine D (25-OH)

Tube sec gel

Sérum 24h

(7)

72h T°C ambiante

7 jours entre 2 et 8°C

Au-delà,

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

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Ref : MU-TOUS-PT-021-04 Version : 04

Applicable le : 10-12-2015

47

Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

congeler

Vitamine B12 Tube sec

gel Sérum

24h

(7)

8h à T°C ambiante

48h entre 2 et 8°C

Au-delà, congeler

7 jours entre 2 et 8°c

T° Ambiante J+1

Immuno-hématologie

Sous-traitée à l’EFS

Groupes

sanguins /

Phénotype

2 EDTA

Plasma +

culot

globulaire

24h

T° Ambiante

Volume minimum: 1,5ml

Tubes EDTA à prélever sur

2 prélèvements différents

J+1 si réception

avant midi

RAI

1 EDTA

(si

demandé

avec

groupe

sanguin,

utiliser les

tubes pris

pour les

Plasma 24h

T° Ambiante Volume minimum: 1,5ml

J+1 si réception

avant midi

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48

Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

groupes)

Techniques manuelles

ASO/ASDO Tube sec

gel Sérum 24h

24h entre 2 et

8°C

4 semaines

congeler

2 jours à T°C

ambiante

T°c ambiante ou

Réfrigéré J-0

Helicobacter

pylori

Tube sec

gel Sérum 24h

3 jours entre 2

et 8°C

2 jours à T°C

ambiante T°c ambiante J-0

Procalcitonine Tube sec

gel Sérum 24h

Si dosage

>24h après le

prélèvement

congeler

2 jours à T°C

ambiante T°c ambiante J-0

Syphilis Tube sec

gel Sérum 24h

7 jours entre

2 et 8°C

Sinon,

congeler

2 jours à T°C

ambiante T°c ambiante

Absence d’hémolyse ou

d’échantillon lipémique

Lundi /

Mercredi

/

Vendredi

WALER-ROSE Tube sec Sérum 24h 2 jours à T°C Absence d’hémolyse ou

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Seule la version électronique fait foi

Examen Tube à

prélever Matrice utilisée

Stabilité avant centrifugation

Stabilité après centrifugation

(6)

Conservation de

l’échantillon Post

analytique

Condition et T°c transport

Préconisation particulière Délai de

rendu

gel ambiante d’échantillon lipémique

Examen Type de récipient

Matrice utilisée Stabilité avant

analyse

Conservation de l’échantillon

Post analytique

Condition et T°C de transport

Préconisation particulière

Délai de rendu

Bactériologie / Parasitologie / Mycologie / Spermiologie

Coproculture culture

Flacon à selles Selles

Dans les 4h à température

ambiante 12h entre 2 et

8°C Les cultures

sont conservées

3 jours dans le

cas d’un

développement

tardif des

germes

T° Ambiante

Demander au patient de rapporter

l’échantillon dans les plus brefs délais

(conservation réfrigérée AU

LABORATOIRE)

J+3

ECBU

Flacon stérile boraté

Flacon stérile sans borate

Urines

48h sur flacon boraté

1h sur flacon non boraté

T° Ambiante Ne pas réfrigérer J+1 à 2

Expectoration Flacon stérile crachats Dans les 2h T° Ambiante Crachats du matin

non salivaire J+3

Prélèvements vaginaux

Ecouvillons sur milieu de transport

Sécrétions vaginales

Dans les 24h T° Ambiante J+3

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Seule la version électronique fait foi

Pour les examens ne figurant pas dans la liste, contacter le laboratoire afin de connaître les modalités de prélèvement et d’acheminement.

Identification Dermathophytes

Flacon stérile ou écouvillon sur

milieu de transport

Peau/ Phanère Dans les 4h T° Ambiante J+20

Parasitologie Flacon à selles selles

Dans les plus brefs délais

(<3h) pour l’état frais

24h entre 2 et 8°C pour la

concentration

T° Ambiante

Demander au patient de rapporter

l’échantillon dans les plus brefs délais

(conservation réfrigérée AU

LABORATOIRE)

J+1

Sang dans les selles

Flacon à selles Selles

Dans les 4h à T°C ambiante 72h entre 2 et

8°c

T° Ambiante

Demander au patient de rapporter

l’échantillon dans les plus brefs délais

(conservation réfrigérée AU

LABORATOIRE)

J+1

Autre prélèvement

Ecouvillon sur milieu de transport

Dans les 24h T° Ambiante J+3

Examens envoyés à Cerba- Voir le « Catalogue des analyses » ou téléphoner au laboratoire

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Références bibliographiques :

1. HbA1c Reagent - Instruction for use, AFSSAPS 2006

2. Etude de stabilité analytes, OMS 2002

3. Collection, Transport, and Processing of Blood Specimens for Testing Plasma-Based Coagulation Assays

and Molecular Hemostasis Assays; Approved Guideline - CLSI – 2008

4. Stability of coagulation assays performed in plasma from citrated whole blood transported at ambient

temperature – Zurcher, Sulzer, Barizzi, Lämmle, Alberio – 2008

5. Stabilité pré-analytique des paramètres de la coagulation : revue des données disponibles – Annales de

biologie Clinic - Mauge, Alhenc-Gelas – 2014

6. Fiches techniques fournisseurs : STAGO, BECKMAN

7. Stability study of 81 analytes in human whole blood, in serum and in plasma Christiane Oddoze , Elise

Lombard, Henri Portugal - Clinical Biochemistry 45 (2012) 464–469

8. Note technique: Stabilité des paramètres sur tubes BD SSTTM

II - Juillet 2009

9. Spécifications de performance et caractéristiques du DxH 800 – 2013 BECKMAN COULTER

10. WHO laboratory manuel for the Examination an processing of human semen, 5th

edition – 2010 WHO