UNIVERSITE LIBANAISE

Faculté des Sciences

Master professionnel

BIODIVERSITE : GESTION ET CONSERVATION DES RESSOURCES NATURELLES

Option : Géologie et Evolution

ETUDE DES ORBITOLINES (FORAMINIFERIDA) DU LIBAN

MEMOIRE

présenté par:

Sibelle MAKSOUD

Soutenu le 05/08/2011, devant le jury :

Danielle DECROUEZ, Prof. Dr. Co-Directrice

Dany AZAR, Prof. Dr. Hab. Co-Directeur

Jean CHAROLLAIS, Prof. Dr. Rapporteur

Fanar - 2011

Je dédie ce mémoire à tous ceux que j'aime très fort:

Mon père et ma mère,

mon frère Saïd, mes soeurs Christine et Marina,

ma tante Malaké, Albert et ma grand-mère Siham,

Père Saliba El Kozeh et le groupe spirituel

ma famille de meilleurs géologues; Danielle, Jean-Claude, Isabelle et Raymond

et à une personne qui m'est très chère Dany

REMERCIEMENTS

J’adresse tout d’abord mes remerciements les plus sincères, au personnel du Muséum

d'histoire naturelle de la ville de Genève pour cette collaboration entre le Liban et Genève. Sans

eux ce travail n'aurait jamais vu le jour.

Je remercie Danielle Decrouez, Directrice du Muséum d'histoire naturelle de la ville de

Genève. A qui je me permets de dire :

Danielle, ta sollicitude au cours de cette période, m’a profondément touchée. Je te remercie

d'abord d'avoir accepté d’être le promoteur de ce projet. Ta grande connaissance dans le

domaine, ainsi que ton expérience, ont joué un rôle important dans la conception de ce travail.

Je peux simplement te dire: mille fois merci pour m’avoir fait découvrir cette passerelle car sans

toi, je ne pense pas que j’en aurais eu connaissance! J’ai également beaucoup apprécié le

soutien que tu m’as apporté quand j’avais des moments de doutes, ainsi que toute aide que tu

m’avais proposée. Je n'ai que de bons souvenirs avec toi. Crois-moi, la mémoire c'est dans le

cœur à jamais. Tu m'as vraiment entourée d'une grande tendresse maternelle que maintenant je

tiens à toi! C'est drôle peut être mais à cette idée ma gorge se serre un peu… 

Je remercie l'administrateur du Muséum Mr Pierre-Henri Heizmann, pour son

inquiétude et sa volonté d'accomplir mon stage dans les meilleures conditions.

Je suis particulièrement reconnaissante à Jean Charollais d'avoir accepté d’évaluer ce

travail de mémoire. Je le remercie pour m’avoir fait l’honneur de participer à ce jury. 

Je remercie mon directeur, mon ami, mon frère Dany Azar de m'avoir généreusement

orienté et également pour son aide si précieuse et son soutien moral. Je sais bien qu'il déteste les

remerciements mais je continue à lui dire quand même merci aux merveilleux souvenirs

inoubliables au Liban et à Paris… Il m'est bien difficile de retranscrire par écrit tout ce pour

quoi je lui suis reconnaissante.

J’associe également à ces remerciements la famille Gèze ; Raymond pour son extrême

gentillesse, ses judicieux conseils et qui grâce à son expérience intéressante m’a beaucoup aidé

à la pêche d'orbitolines. Et, sa femme Najla, Chef du département de Sciences de la Vie et de la

Terre, qui m’a bien incitée et souhaitée le bon courage.

Je remercie Pierre-Alain Proz dont suis très contente de le reconnaître ; qui n’a pas

hésité un moment de me donner toute l’aide nécessaire.

J'adresse mes remerciements à Bernard Clavel, pour ses conseils et de m'avoir tiré

l'attention sur des astuces grâce à sa grande expérience dans le domaine.

Je remercie le personnel de la bibliothèque du Muséum et en particulier Jérôme Mendy

qui m'ont permis d'avoir toutes les renseignements possibles et les références sans retard.

Un grand merci à Giancarlo Liparulo de m'accorder son aide en informatique et pour le

temps qu'il m'avait consacré sans regret.

Comment ne pas remercier le Chef Jean-Claude Paicheler, pour ses conseils si chers, sa

compagnie sur terrain, et les adorables moments que j'ai toujours en pensée avec ses proverbes

élucidant et paroles inoubliables. Surtout sa poésie commençant par : "Je m'appelle…"

Je remercie Isabelle Veltz, pour tout ce qu'elle m'a apporté sur le plan scientifique bien

sûr mais aussi et surtout sur le plan humain. Sa gentillesse et sa compréhension n’ont d’égal que

son honnêteté morale. 

Grand merci à tous mes enseignants qui, par l’éducation qu’ils m’ont donnée, ont fait de

moi une personne capable d’analyse et de critique. 

Je n'oublie pas Sally Sassine de m'avoir dressée la carte au CNRS et Jeff Gerges pour les

photos lors du lavage de mon matériel.

L’aboutissement de ce travail me donne l’occasion d’exprimer ma très véritable

reconnaissance envers mes parent ; mes très chers parents je vous dois tant… C’est grâce à vous

que ma vie ne connaît pas de grands remous.

Je remercie mon frère et mes deux sœurs, dont je suis fière, pour leurs encouragements

continus. Eux qui contribuent à mon bonheur…

Je remercie ma tante Malaké, son mari Albert et ma grand-mère Siham qui sont toujours

à mes côtés, et m’apportent un soutien inestimable notamment en me donnant la confiance en

moi.

Je remercie également mes amies Sandra et Joelle qui ont su être là quand j'en avais

besoin.

Je remercie Père Saliba et le groupe spirituel, surtout Rita Balian, Rita Chalouhi et Marc

Hajjar pour leurs patiences et leurs précieuses recommandations.

AVANT-PROPOS

Article 1: Le chef a toujours raison

Article 2 : Si le chef n'a pas raison, l'article 1 entre directement en vigueur

Jean-Claude Paicheler

Résumé

Cette étude concerne les orbitolines (Orbitolinidae) du Liban.

Deux colonnes géologiques dans la Formation de Jezzine, à niveaux très riches en orbitolines et

situées au Caza du Chouf-Liban, ont été levées et échantillonnées. L'une est à Kfar Niss ; l'autre

à Ain Dara.

En plus, des échantillons à orbitolines ont été récoltés dans différentes régions du Liban au sein

des Formations de Jezzine, Sannine et Hammana.

Le principe de détermination des espèces d'orbitolines repose essentiellement sur l'appareil

embryonnaire en section axiale. Ainsi, la technique adoptée pour la préparation du matériel à

sédiment induré (calcaires) est une lame mince. Celle pour un sédiment meuble (argiles,

calcaires marneux) est un lavage suivi d'un enrobage avec du plâtre ou avec le Crystalbond.

Aujourd'hui, les espèces d'orbitolines citées dans la littérature sur le Crétacé du Liban ne sont

plus toutes valides. Donc il a fallu reprendre une nomenclature et taxonomie mises à jour à la

lumière des connaissances actuelles.

Les espèces trouvées dans mon matériel sont : Palorbitolina cf. lenticularis, Orbitolina

(Mesorbitolina) lotzei, Orbitolina (Mesorbitolina) texana, Orbitolina (Mesorbitolina)

subconcava, Orbitolina (Conocorbitolina) conica.

Mots clés: Liban, Mont-Liban, Crétacé, foraminifères, Orbitolinidae.

Abstract

This study concerns the orbitolina (Orbitolinidae) of Lebanon.

Accordingly, two geological sections belonging to Jezzine Formation, with abundance of

orbitolina, located in the Caza Chouf (Lebanon), were represented and sampled. One of them

was realized in Kfar Niss, the other in Ain Dara.

Moreover, samples of Orbtiolina were collected from different regions of Lebanon belonging to

Jezzine, Hammana, and Sannine Formations.

The determination of the species is essentially based on the embryonic apparatus in axial section.

Hence, the adopted technique of preparation of the collected materiel is the thin section for

indurated sediment (limestone). And a covering method with plaster and resin or with

Crystalbond proceeded after a wash of the mud sediment (clay, marly limestone). 

Nowadays, orbitolina species mentioned in the literature of Lebanese Cretaceous are not all valid

anymore. It was therefore necessary to take an updated nomenclature and taxonomy in the light

of current knowledge. The species found in my material are: Palorbitolina cf. lenticularis,

Orbitolina (Mesorbitolina) lotzei, Orbitolina (Mesorbitolina) texana, Orbitolina (Mesorbitolina)

subconcava, Orbitolina (Conocorbitolina) conica.

Keywords: Lebanon, Mount-Lebanon, Cretaceous, foraminifer, Obitolinidae. 

 

i 

 

Sommaire

Préambule 1 Chapitre I : Géologie du Liban 2

1. Stratigraphie 2 2. Tectonique 5 3. Histoire géologique 7

Chapitre II : Le Crétacé du Liban – Etat des connaissances 9 1. Les Formations du Crétacé 9 2. Foraminifères cités dans la littérature 12

2.1. Formation de Salima : Berriasien – Valanginien 12 2.2. Formation du Chouf : Nécocomien 12 2.3 Formation de Abeih : Barrémien - Aptien Basal 12 2.4 Formation de Mdairej : (= Formation de Jezzine ou = Falaise de Blanche) : Aptien 13 2.5. Formation de Hammana : Albien 13 2.6. Formation de Sannine (sensu lato) : Cénomanien 14 2.7. Formation de Maameltain : Turonien 17 2.8. Formation de Chekka : Sénonien 18

3. Les orbitolines 18 Chapitre III : Les Foraminifères 21

1. Généralités 22 1.1. Le test 22 1.2. Mode de vie 22 1.3. Cycle et mode de reproduction 22 1.4. Nourriture 23 1.5. Eléments structuraux 23 1.6. Les sections chez un foraminifère 24 1.7. Intérêt scientifique des foraminifères 24 2. Classification 24 2.1. Sous-ordre Allogromiina Loeblich & Tappan, 1961 25 2.2. Sous-ordre Astrorhizina Jirovec, 1953 26 2.3. Sous-ordre Haplophragmiina Wedekind, 1937 26 2.4. Sous-ordre Trochamminina Brönnimann & Whittaker, 1988 26 2.5. Sous-ordre Textulariina Delage & Hérouard, 1896 27 2.6. Sous-ordre Fusulinina Wedekind, 1937 28

2.7. Sous-ordre Involutinina Hohenegger & Piller, 1977 28 2.8. Sous-ordre Spirillinina Hohenegger & Piller, 1975 29 2.9. Sous-ordre Carterinina Loeblich & Tappan, 1981 30 2.10. Sous-ordre Miliolina Delage & Hérouard, 1986 30 2.11. Sous-ordre Silicoloculinina Resig, Lowenstam, Echols & Weiner, 1980 31 2.12. Sous-ordre Lagenina Delage & Hérouard, 1896 31 2.13. Sous-ordre Robertinina Loeblich & Tappan, 1984 32 2.14. Sous-ordre Globigerinina Delage & Hérouard, 1896 33

ii 

 

2.15. Sous-ordre Rotaliina Delage & Hérouard, 1896 33 Chapitre IV : Famille des Orbitolinidae 35

1. Le test et la paroi 35 2. Appareil embryonnaire 35 3. Clé de détermination des différents genres d'Orbitolinidae crétacés 37

Chapitre V : Méthodes de préparation du matériel 49 1. Lavage des sédiments meubles 51 2. Confection de lames minces dans les roches indurées 52 3. Méthodes particulières pour les orbitolinidés 57

3.1. Des lames minces réalisées sur des surfaces sélectionnées 57 3.2. La méthode des "acetate peels" 57 3.3. Les orbitolinidés dégagés 59

3.3.1. Méthode avec du plâtre et de la résine 59 3.3.2. Méthode avec le Crystalbond (polymère thermoplastique) 61

Chapitre VI : Etude stratigraphique 62 1. Log d'Ain Dara ( داره عين ) 64

1.1. Coordonnées 64 1.2. Altitude 66 1.3. Description 67 1.4. Interprétation 73

2. Log de Kfar Niss (آفر نيس) 73 2.1. Coordonnées 73

2.2. Altitude 73 2.3. Description 74 2.4. Interprétation 78

3. Echantillons isolés 79 Conclusion 81 Bibliographie 82

١ 

 

Préambule

La géologie et en particulier la micropaléontologie, est une science qui m'a toujours passionnée

et intéressée. Je souhaite faire une carrière dans ce domaine. Mais pour réaliser nos intentions il

n'est pas toujours facile…

Ce mémoire que vous avez entre les mains est le fruit d'un travail qui fut extrêmement difficile.

En effet, j'ai rencontré plusieurs obstacles. A l'Université Libanaise, il n'y a malheureusement pas

de formation en micropaléontologie, ni de laboratoires équipés pour effectuer les préparations

exigées, et surtout il y a une lacune flagrante en bibliothèque spécialisée.

Je peux dire qu'en premier lieu, j'étais désespérée et perdue. La solution fut que je quitte mon

pays… Je ne cache pas que ça m'a apporté du chagrin. Mais l'amour du risque, le souci de me

perfectionner, et le désir très profond de réussir tout ce que j'entreprends m'ont aidés.

Ce travail qui n'est qu'un simple début de mes recherches, présente une étude sur des orbitolines

du Crétacé Libanais. Ce fut non seulement une initiation à l'étude systématique des orbitolines

mais aussi celle des différentes techniques de laboratoire utilisées en micropaléontologie.

٢ 

 

Chapitre I : Géologie du Liban

Situé sur la façade méditerranéenne de la péninsule Arabique (33°50'36.46'' N, 36°04'00.43'' E /

33°13'15.67'' N, 35°25'04.59'' E / 34°35'54.68'' N, 36°14'31.31''E / 33°53'22.16'' N,

35°29'29.10''E), le Liban est dominé par deux massifs calcaires, le Mont Liban à l’Ouest et

l’Anti-Liban à l’Est, séparés par la plaine de la Békaa.

L’Anti-Liban الشرقية لبنان جبال سلسلة( )  est un large bombement calcaire qui, avec une direction

approximativement SW-NE, culmine à 2814 m au Mont Hermon dans le Sud. Contrairement au

Mont-Liban auquel il n’est pas parallèle, il ne présente pas de grandes vallées transversales. 

Bordant la côte maritime, le Mont-Liban ( الغربية لبنان جبال سلسلة ) de direction SSW-NNE culmine à

3088 m au Qornet el Saouda et a l’allure d’un monolithe. Il est entaillé de gorges profondes

(jusqu’à 1000 m de profondeur dans la vallée de la Qadisha) creusées d’Est en Ouest par les

rivières et abrite de hauts plateaux karstiques.

La plaine de la Békaa, dont l'altitude est comprise entre 800 et 1200 m, se situe dans le

prolongement du fossé du Jourdain et de la mer Morte, de la mer Rouge et de la "Rift Valley"

africaine.

Le plateau continental du Liban est très étroit (au maximum 8 kilomètres de large) et le talus, qui

le relie à des profondeurs de -2000 m (Bassin Levantin, relique de la Téthys occidentale), est

entaillé par de profonds canyons (Elias et al., 2007).

1. Stratigraphie

Les travaux les plus importants sur la stratigraphie du Liban sont ceux de Douvillé (1910), de

Zumoffen (1926), Dubertret & Vautrin (1937), Dubertret (1955, 1963), Saint-Marc (1974) et

Walley (1997, 2001), ce dernier introduisant les Formations.

Sur les cartes géologiques du Liban, les unités cartographiques sont les étages, une pratique

utilisée encore actuellement dans certains pays. Or ce système est incompatible avec la rigueur

scientifique moderne. Les cartes doivent être basées sur la lithostratigraphie, le lien avec la

chronostratigraphie figurant seulement dans la légende et la notice explicative. Ainsi,

l'introduction de la notion de Formation de Walley est une initiative judicieuse.

٣ 

 

Figure 1 : Carte géologique simplifiée du Liban (D'après Walley, 1997).

٤ 

 

La carte géologique (Fig. 1) montre que le pays est essentiellement constitué de roches

sédimentaires d'âge jurassique et crétacé. Sur ce document, le Trias ne figure pas mais il a été

reconnu récemment sur le versant Nord du Jabal Moussa dans le Mont-Liban (R. Gèze,

communication personnelle, 2011).

La synthèse stratigraphique présentée dans ce travail (Tableau 1) a été établie d'après Walley

(1997) et R. Gèze (communication personnelle, 2011).

Tableau 1 : Synthèse stratigraphique (D'après Walley, 1997 & R. Gèze, communication personnelle, 2011).

Miocène moyen - Pliocène

F. de Jabal Terbol (300 m) et F. de Nahr el Kalb

F. de Zahlé, conglomérats marins, lignites, marnes lacustres

Oligocène - Miocène Lacune stratigraphique Paléocène - Eocène Calcaires à nummulites, marnes, calcaires crayeux à silex (0 - 800 m) Crétacé F. de Chekka (100 - 500 m) Craies blanches et craies marneuses avec

des niveaux de phosphates et de silex F. de Sannine (sensu lato, 500 - 2000 m)

Marnes, calcaires, dolomies, argiles

F. de Hammana (100 - 400 m)

Grès, marnes, argiles, basaltes présents localement

F. de Jezzine ou de Mdairej ou Falaise de Blanche (plus de 70 m)

Calcaires gris, silicification au sommet

F. de Abeih (80 - 170 m) Calcaires, grès, argiles F. du Chouf (< 10 - 300 m)

Grès, sables, argiles à lignites, basaltes altérés, latérites

F. de Salima (80 - 180 m) Argiles et marnes ocres surmontées de calcaires oolithiques ocres

Jurassique F. de Bikfaya (60 – 80 m) Calcaires à rognons de silex, dolomies et niveau à pisolithes de fer

F. de Bhannès (50 - 300 m) Complexe volcano-sédimentaire, calcaires, basaltes pyroclastiques, latérites

F. de Tarchich (30 m au maximum)

Calcaires ocres à faciès récifaux et niveaux terrigènes argileux

F. de Kesserouane (1000 - 1500 m) Calcaires et calcaires dolomitisés, roches siliceuses présentes localement

F. de Chouane ( ?100 m) Dolomies massives et sables dolomitiques Trias F. d'El Abré (200 - 300 m) Laminites + ou - dolomitisées et dolomies

F. = Formation, F. d'El Abré = Non reconnue par Walley, Trias selon Gèze, F. de Chouane = Jurassique indéterminé (entre le Trias et le Malm selon Gèze, Lias inférieur selon Walley), F. de Kesserouane = Oxfordien – base du Kimméridgien selon Gèze, Lias supérieur – base de l’Oxfordien selon Walley, F. de Tarchich = Non reconnue par Walley - Kimméridgien selon Gèze, F. de Bhannès = Kimméridgien selon Gèze, Oxfordien – base du Kimméridgien selon Walley, F. de Bikfaya = Kimméridgien terminal selon Gèze, Kimméridgien – Tithonien inférieur selon Walley, F. de Salima = Passage Jurassique – Crétacé selon Gèze, Tithonien supérieur selon Walley, F. de Chouf = Néocomien sans précision selon Gèze, Berriasien supérieur – Hauterivien selon Walley, F. de Abieh = Aptien inférieur selon Gèze, Barrémien - Aptien inférieur selon walley, F. de Jezzine = Aptien supérieur selon Gèze, Aptien selon Walley, F. de Hammana = Albien selon Gèze et Walley, F. de Sannine s.l. = Cénomanien – Turonien selon Gèze et Walley , F. de Chekka = Sénonien selon Walley.

٥ 

 

2. Tectonique

Le Mont-Liban et l’Anti-Liban sont deux anticlinaux séparés par le synclinal de la Békaa (Fig.

2). Des failles majeures et mineures affectent ces structures (Fig. 3).

Figure 2 : Coupe transversale E-W au Nord du Liban (D'après Walley - American University of Beirut, 2003). La localisation de la coupe est indiquée sur la figure 3.

Le Liban est traversé par la faille transformante du Levant qui s’étend sur 1200 km de la

Jordanie à la Turquie et qui permet aux plaques tectoniques arabique et africaine de coulisser

l'une contre l'autre, provoquant des séismes importants (séismes historiques de 551, 1202, 1759

et 1837 (Daëron et al., 2007). Face à un coude transpressif de 170 km de long, cet accident (Fig.

3 ; Elias et al., 2007) se divise en plusieurs branches dont la faille de Yammouneh qui traverse le

pays du Nord au Sud. A cette faille majeure, se rattachent au Nord les chevauchements de Tripoli

et d’Akkar, au Sud la faille de Roum et la faille de Rachaya, relayée vers le N-E par la faille de

Serghaya.

Des études récentes (Elias et al., 2007) ont montré que le chevauchement Tripoli – Beyrouth

(Daëron et al., 2007) était en fait un système complexe, une série de chevauchements à la base

du talus continental au large du Liban.

٦ 

 

Figure 3 : Carte des failles et chevauchements principaux du Liban (D'après Elias et al., 2007). Ar-Arqa ; Ba-Batroun; By-Byblos ; Ch-Chekka; Sa-Sarafand ; AT-Chevauchement de Akkar ; TT-Chevauchement de Tripoli ; R-AF-Faille de Rankine/Aabdeh ; RF-Faille de

Roum ; RaF-Faille de Rachaya ; SaF-Faille de Saida.

٧ 

 

3. Histoire géologique

L’histoire géologique du Liban peut être résumée en cinq épisodes (Walley, 2003).

- Episode 1 : Le rifting (Permien supérieur - Lias)

A la fin du Paléozoïque, le supercontinent Pangée se disloque et dans la zone du Gondwana sur

laquelle se trouve le futur Liban, deux phases d’extension successives ont été reconnues (Al-

Husseini, 2000). La première qui s’étend du Permien supérieur au Trias moyen met en place un

système de bassins de rift (rifting) d’orientation NE-SW. Une seconde phase d’extension du

Trias supérieur (Fig. 4) au Lias produit l’ouverture de l’ « Océan Levantin » (Homberg et al.,

2007).

Figure 4 : Le rifting (D'après Walley, 2001).

٨ 

 

- Episode 2 : Une période de stabilité avec des mers épicontinentales (Jurassique moyen à

supérieur)

Durant le Jurassique, la période est calme sur le plan tectonique. Les calcaires littoraux sont

progressivement remplacés par des calcaires plus distaux avec localement de petites

constructions coralliennes.

- Episode 3 : Soulèvement, volcanisme et deltas (fin du Jurassique - Crétacé inférieur)

Vers la limite fin du Jurassique - début du Crétacé, une nouvelle phase de rifting se produit. Le

futur Liban émerge et le paysage est constitué de marais, de rivières et de deltas. L’érosion

alimente les grès du Crétacé inférieur de la Formation du Chouf. Du volcanisme basaltique a lieu

durant le Crétacé inférieur et l’expansion océanique se poursuit à l’Ouest jusqu’au Crétacé

moyen. A la fin du Crétacé inférieur, le niveau de la mer augmente et les sables sont remplacés

par des calcaires localement récifaux.

- Episode 4 : Elévation du niveau de la mer et plissement (Crétacé supérieur - Eocène inférieur)

Les plaques eurasienne et africaine entrent en collision et ferment l’océan Téthys. La collision ne

concerne pas directement la région mais elle engendre des mouvements de compression qui

soulèvent le Mont-Liban et l’Anti-Liban.

- Episode 5 : Soulèvement et refroidissement climatique (Eocène moyen - Actuel)

Un soulèvement important provoque l'émersion et l’orientation NNE-SSW du Liban actuel. La

mer se retire progressivement de la plaine de la Bekaa et il n'y a plus que des incursions marines

le long de la côte actuelle. L'érosion des vallées fluviales débute.

À la fin du Miocène, la Méditerranée s’assèche et les vallées fluviales découpent le plateau

continental. Des soulèvements et des basculements de couches se poursuivent au cours des cinq

derniers millions d'années. 

٩ 

 

Chapitre II: Le Crétacé du Liban – Etat des connaissances

Les terrains crétacés, une puissante série de calcaires, dolomies et marnes d’une épaisseur

d’environ 2000 m sont largement exposés au Liban (Fig. 5). Douvillé (1910), Dubertret &

Vautrin (1937), Dubertret (1955, 1975) et Saint-Marc (1974) ont découpé le Crétacé en unités

biostratigraphiques alors que Walley (1997, 2001) et Noujaim Clark & Boudagher-Fadel (2001)

ont défini des unités lithostratigraphiques. Abdel El Rahman & Nader (2002) ont divisé certaines

Formations en Membres.

1. Les Formations du Crétacé

La subdivision en 8 formations, selon Walley (1997, 2001) et Noujaim Clark & Boudagher-

Fadel (2001) a été adoptée. De la plus ancienne à la plus récente, il s'agit des Formation

suivantes (Tableau 3) :

- la Formation de Salima,

- la Formation du Chouf,

- la Formation de Abeih,

- la Formation de Mdairej,

- la Formation de Hammana,

- la Formation de Sannine,

- la Formation de Maameltein,

- la Formation de Chekka.

Une révision de ces Formations serait nécessaire. Tout d'abord, il faudrait définir un stratotype

(recommandation de l’International Stratigraphic Guide, 1994) pour chacune d'elles et établir

une carte géologique des formations. Mais comme durant le Crétacé, les variations de faciès

latérales et verticales ainsi que les variations d’épaisseur sont importantes, les unités

١٠ 

 

lithostratigraphiques n’ont vraisemblablement qu’une valeur à l’échelle régionale, et il y a

vraisemblablement lieu de définir des Formations de références ou des Formations différentes

selon les régions.

Figure 5 : Carte simplifiée du Liban, montrant les affleurements des différents étages géologiques du Crétacé et récapitulant le travail de Dubertret (Carte élaborée par Sally

Sassine, inédit, 2011). Bc = Basaltes du Crétacé, C1 = Néocomien, C1-2 = Néocomien – Aptien inférieur, C2 =

Aptien, C3 = Albien, C4 = Cénomanien, C5 = Turonien, C6 = Sénonien.

١١ 

 

Tableau 2 : Synthèse des travaux de Dubertret (1955), Walley (2001) et Abdel-El-Rahman & Nader (2002)

Dubertret (1955) Walley (2001) Abdel El Rahman & Nader (2002)

Sénonien Crétacé Supérieur

Marno- crayeuse C6

Formation de Chekka

Craies blanches avec des niveaux de phosphates et de silex

Formation de Chekka, C6

Turonien Crétacé Moyen

Marno-calcaire et calcaires récifaux C5

Formation de Maameltein

Calcaires marneux et calcaires blancs à gris

Formation de Maameltein, C5

Cénomanien Marnes et calcaires (500 m) C4

Formation de Sannine

Marnes, calcaires, argiles

Formation de Sannine

Membre de Mnaitra, C4-3

Membre d'Aaqoura, C4-2

Membre d'Afqa, C3-3

Albien Marnes vertes à Knemiceras Banc à Cardium (falaise de calcaires brechoïdes, 15 m) C3

Formation de Hammana

Marnes brunes et vertes, localement des basaltes

Formation de Hammana

Membre de Knisseh, C3-1-2

Aptien supérieur

Crétacé Inférieur

Grès ou calcaires à oolithes ferrugineuses C3

Formation de Mdairej ou de Jezzine ou Falaise de Blanche

Calcaires gris Membre de Dahr el Baidar, C2b

Aptien inférieur à moyen

Muraille de Blanche calcaire récifal blanc C2b

Formation de Mdairej, C2a2

Aptien basal Barrémien

Niveaux argilo-gréseux et calcaires C2a

Formation de Abeih

Calcaires, marnes, grès

Formation de Abeih, C2a1

Néocomien Grès de base (< 300 m) C1

Formation du Chouf

Grès, basaltes altérés

Formation du Chouf, C1

١٢ 

 

2. Foraminifères cités dans la littérature

2.1. Formation de Salima : Berriasien - Valanginien

Cette Formation a été datée par Noujaim Clark & Boudagher-Fadel (2001). Les carbonates de la

partie inférieure ont été datés du Berriasien avec l’association suivante :

Everticyclammina kelleri Henson

Everticyclammina contorta Redmond

Bramkampella arabica Redmond

Trocholina alpina (Leupold, in Leupold & Bigler)

La présence de Neotrocholina valdensis et de Everticyclammina kelleri a conduit les auteurs à

attribuer un âge berriasien-valanginien aux carbonates de la partie supérieure dans laquelle ont

été identifiés :

Neotrocholina valdensis Reichel

Riyadhella regularis Redmond

Riyadhella sp.

Trocholina alpina (Leupold, in Leupold & Bigler)

Everticyclammina kelleri Henson

Nautiloculina oolithica Mohler

2.2. Formation du Chouf : Nécocomien

Cette Formation à faciès essentiellement continental n’a pas livré jusqu’à présent de

foraminifères.

2.3. Formation de Abeih : Barrémien - Aptien Basal

Les foraminifères n’ont pas été déterminés. Des orbitolines sont seulement signalées par Walley

(2001).

١٣ 

 

2.4. Formation de Mdairej : (= Formation de Jezzine ou = Falaise de

Blanche) : Aptien

Dubertret (1955) attribue un âge aptien inférieur à cette Formation avec Orbitolina lenticularis

Blumenbach et un âge aptien supérieur avec O. lenticularis et Orbitolina conoidea – discoidea

Gras.

L'Aptien supérieur, a été reconnu par Saint-Marc (1974) grâce à l’association suivante :

Orbitolina libanica Henson

Orbitolina texana parva Douglass

Pseudocyclammina hedbergi Maync

Cuneolina laurentii Sartoni & Crescenti

Nezzazata simplex Omara

2.5. Formation de Hammana : Albien

Dubertret (1955) identifie Orbitolina conica (D'Archiac) dans cette Formation qu’il attribue à

l'Albien.

Saint-Marc subdivise l'Albien en Albien inférieur/moyen et en Albien supérieur (Tableau 2).

Pour l'Albien inférieur à moyen, il reconnaît :

Pseudocyclammina hedbergi Maync

Cuneolina laurentii Sartoni & Crescenti

Nezzazata simplex Omara

Hemicyclammina sigali Maync

Simplorbitolina moulladei Saint-Marc

Trocholina altispira Henson

Charentia cuvillieri Neumann

Pseudocyclammina rugosa D'Orbigny

Cuneolina pavonia D'Orbigny

Pseudoliluonella reicheli Marie

١٤ 

 

Ce sont surtout les ammonites qui lui permettent de dater l’Albien inférieur et moyen ; les

foraminifères de l’association ont une répartition stratigraphique plus étendue.

Dans l'Albien supérieur et la base du Cénomanien, l’association suivante est reconnue:

Nezzazata simplex Omara

Hemicyclammina sigali Maync

Charentia cuvillieri Neumann

Pseudocyclammina rugosa D'Orbigny

Cuneolina pavonia D’Orbigny

Pseudoliluonella reicheli Marie

Chrysalidina gradata D'Orbigny

Dictyopsella libanica Saint-Marc

Orbtitolina minuta Douglass

Orbitolina concava Lamarck

Planomalina buxtorfi (Gandolfi)

Favusella washitensis (Carsey)

Globigerinelloides caseyi (Bolli, Loeblich & Tappan)

Trocholina arabica Henson

Hedbergella delrioensis (Carsey)

P. buxtorfi caractérise le sommet de l’Albien supérieur et l’apparition des alvéolinidés et des

orbitolines du groupe conica le Cénomanien inférieur.

2.6. Formation de Sannine (sensu lato) : Cénomanien

Dans le Cénomanien, Dubertret (1955) identifie Orbitolina concava (Lamarck). Quant à Saint-

Marc (1974) il mentionne pour le Cénomanien:

Nezzazata simplex Omara

Hemicyclammina sigali Maync

Pseudocycalmmina rugosa D'Orbigny

١٥ 

 

Cuneolina pavonia D'Orbigny

Pseudolituonella reicheli Marie

Chrysalidina gradata d'Orbigny

Orbitolina concava Lamarck

Favusella washitensis (Carsey)

Globigerinelloides caseyi (Bolli, Loeblich & Tappan)

Trocholina arabica Henson

Hedbergella delrioensis (Carsey)

Globigerinelloides bentonensis (Morrow)

Ovalveolina crassa De Castro

Hedbergella planispira (Tappan)

Hedbergella costellata Saint-Marc

Praeglobotruncana delrioensis (Plummer)

Orbitolina conica (D'Archiac)

Ovalveolina maccagnoi De Castro

Pseudedomia viallii (Colalongo)

Simplaveolina simplex (Reichel)

Biconcava bentori Hamaoui et Saint-Marc

Trochospira avnimelechi Hamaoui & Saint-Marc

Nummuloculina heimi Bonet

Hedbergella asterospinosa Hamaoui

Rotalipora cf. montsalvensis Mornod

Rotalipora gr. appenninica (Renz)

Rotalipora cf. brotzeni (Sigal)

Thomasinella punica Schlumberger

Praealveolina cretacea cretacea Reichel

١٦ 

 

Taberina bingistina Henson

Pseudedomia drorimensis Reiss, Hamaoui & Ecker

Praealveolina iberica Reichel

Nummofallotia apula Luperto Sinni

Praeglobtruncana stephani (Gandolfi)

Praealveolina cretacea tenuis Reichel

Merlingina cretacea Hamaoui & Saint-Marc

Nummoloculina regularis Philippson

Peneroplis cf. turonicus Saïd & Kenawy

Dicyclina sp.

Pseudorhapydionina laurinensis (De Castro)

Coxiles zubairensis Smout

Pseudorhapydionina dubia (De Castro)

Cyclorbiculina iranica (Henson)

Biplanata peneropliformis Hamaoui & Saint-Marc

Pseudorhipidionina casertana (De Castro)

Hedbergella cf. portsdownensis (Williams-Mitchell)

Hedbergella praehelvetica (Trujillo)

Whiteinella alpina (Porthault)

Praeglobotruncana cf. gigantea Porthault

Hedbergella brittonensis Loeblich & Tappan

Whiteinella inornata (Bolli)

Rotalipora cushmani (Morrow)

Praeglobotruncana aff. difformis (Gandolfi)

Rotalipora greenhornensis (Morrow)

Cisalveolina fallax Reichel

١٧ 

 

Whiteinella archaeocretacea Pessagno

Le Cénomanien inférieur est caractérisé par P. buxtorfi et les premières P. vialli, la base du

Cénomanien supérieur par P. laurinensis.

2.7. Formation de Maameltain : Turonien

Dans le Turonien, Saint-Marc (1974) identifie l’association suivante :

Cuneolina pavonia D'Orbigny

Pseudoliluonella reicheli Marie

Chrysalidina gradata D'Orbigny

Hedbergella delrioensis (Carsey)

Praeglobtruncana stephani (Gandolfi)

Peneroplis cf. turonicus Saïd & Kenawy

Dicyclina sp.

Pseudorhapydionina dubia (De Castro)

Cyclorbiculina iranica (Henson)

Biplanata peneropliformis Hamaoui & Saint-Marc

Pseudorhipidionina casertana (De Castro)

Hedbergella brittonensis Loeblich & Tappan

Whiteinella inornata (Bolli)

Rotalipora cushmani (Morrow)

Praeglobotruncana aff. difformis (Gandolfi)

Rotalipora greenhornensis (Morrow)

Cisalveolina fallax Reichel

Whiteinella archaeocretacea Pessagno

Montcharmontia sp.

Hedbergella cf. murphyi Marianos & Zingula

Marginotruncana pseudolinneiana Pessagno

١٨ 

 

Marginotruncana sigali (Reichel)

Archaeoglobigerina cretacea (D'Orbigny)

La présence de C. fallax et les formainifères planctoniques datent le Turonien.

2.8. Formation de Chekka : Sénonien

L’association de foraminifères planctoniques suivante (Saint-Marc, 1974) date le Sénonien :

Marginotruncana pseudolinneiana Pessagno

Marginotruncana sigali (Reichel)

Archaeoglobigerina cretacea (D'Orbigny)

Marginotruncana cf. tarfayaensis (Lehmann)

Marginotruncana anguslicarinata Pessagno

Marginotruncana coronata (Bolli)

Marginotruncana marginata (Reuss)

Marginotruncana fornicata (Plummer)

Marginotruncana concavata (Brotzen)

3. Les orbitolines

Le tableau 3 résume l’état des connaissances sur les orbitolines identifiés dans le Crétacé du

Mont-Liban et la position que j’ai adoptée sur le plan de la nomenclature et de la taxonomie à la

lumière des connaissances actuelles.

Ainsi, je reconnais comme valides les espèces suivantes (Tableau 4) :

- Simplorbitolina moulladei Saint-Marc, 1974

- Orbitolina (Mesorbitolina) texana (Roemer, 1849)

- Orbitolina (Mesorbitolina) parva (Douglass, 1960)

- Palorbitolina lenticularis (Blumenbach, 1805)

- Orbitolina (Orbitolina) concava (Lamarck, 1816)

- Orbitolina (Conicorbitoina) conica (D’Archiac, 1837).

١٩ 

 

Tableau 3 : Répartition stratigraphique de l'Albien au Turonien des principaux foraminifères au Liban (Saint-Marc, 1974).

٢٠ 

 

Tableau 4 : Les Orbitolines du Liban.  

Orbitolines  Reconnuepar

Formation  Figurée Répartition au Liban 

Répartition reconnue actuellement 

Commentaires

Orbitolina (Orbitolina) conica.  

Saint‐Marc (1974) 

Sannine  oui Cénomanien inferieur à moyen 

Albien supérieur ‐ Cénomanien inférieur (Cherchi & Schroeder, 2004) 

Aujourd’hui, cette espèce est toujours dans le genre Orbitolina mais placée dans le sous‐genre Conicorbitolina (Schroeder, 1973). 

Orbitolina conica (D'Archiac, 1837) 

Dubertret (1955) 

Hammana non Albien

Orbitolina concava (Lamarck, 1816) 

Saint‐Marc (1974) 

Hammana et Sannine 

non Albien supérieur et Cénomanien 

Albien supérieur ‐ Cénomanien inférieur (Cherchi & Schroeder, 2004) 

Aujourdh'ui, cette espèce est toujours dans le genre Orbitolina mais placée dans le sous‐genre Orbitolina (Schroeder, 1962)  

Dubertret (1955) 

Sannine  non Cénomanien

Orbitolina(M.) minuta Douglass, 1960 

Saint‐Marc (1974) 

Hammana  oui Albien supérieur 

Cette espèce est mise en synonymie avec O. (M.) texana (Schroeder & Neumann, 1985) 

Simplorbitolina moulladei Saint‐Marc, 1974 

Saint‐Marc (1974) 

Hammana  oui Albien moyen Albien moyen (Saint‐Marc, 1974)  

Pas de changement de nomenclature 

Orbitolina texana parva Douglass 

Saint‐Marc (1974) 

Mdairej  Non Aptien supérieur 

Aptien supérieur (Schroeder, 1975) 

Séparation en deux espèces différentes (Schroeder 1975) : O. (M.) parva Douglass, 1960 

Aptien supérieur‐Albien supérieur (Castro et al., 2001) 

et O. (M.) texana(Roemer, 1849) 

Orbitolina libanica Henson, 1948 

Saint‐Marc (1974) 

Mdairej  Non Aptien supérieur‐Albien supérieur 

Mise en synonymie en 1975 avec O. (M.) texana (Schroeder & Neumann, 1985) 

Orbitolina conoidea ‐ discoidea Gras, 1852 

Dubertret (1955) 

Mdairej  Non Aptien inférieur‐Albien supérieur 

Mise en synonymie avec Palorbitolina lenticularis (Schroeder & Neumann, 1985) 

Orbitolina lenticularis Blumenbach, 1805 

Dubertret (1955) 

Mdairej  Non Aptien inférieur‐Albien supérieur 

Barrémien supérieur– base Albien inférieur (Schroeder, 1963 ; Schroeder, 1975 et Schroeder et al., 2002) 

Aujourdh'ui, cette espèce est placée dans le genre Palorbitolina (Schroeder, 1963) 

٢١ 

 

Chapitre III : Les Foraminifères

Les foraminifères sont des protozoaires (organismes unicellulaires) du monde animal vivant dans

les mers, les lagunes et les océans.

Le mot foraminifère, dérive du latin : foramen qui signifie trou et ferre porter. Le cytoplasme de

la cellule de ces protozoaires est enfermé dans une coquille ou test. Celui-ci comporte une ou

plusieurs loges présentant (une ou) plusieurs ouvertures (les foramens) faisant communiquer les

loges entre elles et avec l'extérieur. Le cytoplasme sort par cet ou ces orifices et émet des

pseudopodes qui permettent la fixation sur un substrat, le déplacement ou la capture de proies.

Connus depuis l'Antiquité, les foraminifères ont été mentionnés par Hérodote (vers 484-425 av.

J.-C.), Strabon (63 av. J.-C. - 20 apr. J.-C.) et Pline l'Ancien (23-79 apr. J.-C.). Ces auteurs

mentionnent une accumulation d'objets en forme de lentilles dans les calcaires des pyramides

d'Égypte ; ainsi ils avaient remarqué les nummulites. La classe des Foraminifera a été créée par

Alcide D’Orbigny (1802-1857), dans son ouvrage intitulé “Tableau méthodique de la classe des

Céphalopodes” (1826). Celui-ci est le fondateur de la micropaléontologie, il décrivit plus de

1000 espèces et fut le premier à étudier le mode de vie et l'écologie de ces petits organismes qu'il

classait avec les ammonites. Et c’est en 1835 que Félix Dujardin (1801-1860) reconnaît qu’il

s’agit d’organismes unicellulaires.

Au 20ème siècle, l’utilisation des foraminifères comme outils biostratigraphiques sera développée.

Parmi les grands noms, il faut citer Cushman, Loeblich, Tappan aux Etats-Unis, Bolli,

Brönnimann, Reichel, Schaub en Suisse, Cuvillier, Sigal en France, etc.

Apparus au Cambrien il y a 540 millions d'années; les foraminifères forment un Ordre (Ordre des

Foraminiferida) appartenant au Règne des Protistes (Protista), Sous-règne des Protozoaires

(Protozoa), Phylum des Sarcomastigophores (Sarcomastigophora), Sous-phylum des Sarcodines

(Sarcodina), Super-classe des Rhizopodes (Rhizopoda), Classe des Granuloreticulosés

(Granuloreticulosa) (Bellier et al., 2010).

٢٢ 

 

Aujourd'hui ils sont placés dans un ensemble plus vaste, les Cercozaires qui regroupent plusieurs

taxa unicellulaires sur la base de caractères moléculaires mais sans caractère morphologique

évident (Pawlowski et al., 2003).

1. Généralités

1.1. Le test

Il est classique de distinguer les "petits foraminifères" et les "grands foraminifères". Les premiers

se distinguent des seconds par des tests dont les dimensions sont de l’ordre du demi-millimètre et

par des loges sans des structures internes. Ainsi, ils peuvent être identifiés uniquement par leurs

caractères externes. La détermination des “grands” exige des préparations (lames minces

orientées) car il faut étudier leur structure interne. Les orbitolines font partie des "grands

foraminifères".

S’il existe des foraminifères à test organique, la plupart ont un test minéralisé, le plus souvent

calcitique. Quatre types ont été distingués : agglutiné, microgranulaire, porcelané et hyalin.

Le test est uniloculaire ou multiloculaire. Dans ce cas, il peut être rectiligne (uni-, bi- tri- multi-

sérié), enroulé (planispiralé, trochospiralé, annulaire) ou pelotonné. De nombreux tests

présentent plusieurs types d’arrangement.

Les ouvertures simples ou multiples montrent une très grande variabilité dans leur forme et leur

disposition et sont utilisées pour la classification.

1.2. Mode de vie

Les foraminifères sont en majorité marins. Ils peuvent être benthiques (les épibiontes qui vivent

sur le fond ou les endobiontes qui sont enfoncés dans le sédiment) ou planctoniques (entraînés

par les courants).

1.3. Cycle et mode de reproduction

Le cycle de reproduction des foraminifères est caractérisé par l’alternance d'une génération

haploïde et d'une génération diploïde. Les formes haploïdes ou gamontes donnent, par division

du noyau, des gamètes (cellules sexuelles indifférenciées). La fusion de deux gamètes donne un

individu diploïde, le schizonte, qui se reproduit par mitose. Après méiose et division du

cytoplasme autour de chaque noyau, les schizontes donnent de nouveaux gamontes.

٢٣ 

 

Ces deux modes de reproduction conduisent à un dimorphisme: les gamontes ou formes mégalo-

ou macrosphériques ont une grande loge initiale et les schizontes ou formes microsphériques une

petite loge initiale.

La schizogamie, la phase asexuée du cycle, est la plus constante.

La longévité des foraminifères est comprise entre 15 jours et 16 mois.

1.4. Nourriture

Certains sont carnivores (autres foraminifères et arthropodes), d'autres sont suspensivores,

herbivores, détritivores, bactérivores ou d'opportunistes omnivores. La nourriture est assurée par

les pseudopodes (Neumann, 1967) (Debenay et al., 1996) (Bellier et al., 2010).

1.4. Eléments structuraux

a) La loge embryonnaire, la première loge dite proloculus. Il existe parfois, plusieurs loges

embryonnaires et l'ensemble est appelé nucléoconque.

b) Les cloisons, des éléments qui sectionnent la cavité interne des foraminifères

pluriloculaires en loges. A l'extérieur des tests la trace des cloisons est visible c'est la suture.

c) Les stolons, des tubulures permettant la communication entre les loges.

d) Ouverture, voie de communication entre intérieur et extérieur. Elle peut être simple

comme elle peut être multiple (Arnaud-Vanneau, 1980).

1.5 . Les sections chez un foraminifère

La figure 6 résume les sections qu'il faut avoir pour faire une identification fiable.

A- Section axiale, passant par l'axe de symétrie du test.

B- Section équatoriale, traversant le test perpendiculairement à l'axe de symétrie

C- Section tangentielle, parallèle à la précédente mais ne passant pas par le centre de

l'animal.

D- Section oblique, indifférente (Arnaud-Vanneau, 1980).

٢٤ 

 

Figure 6 : Illustration des positions des différentes sections.

1.6. Intérêt scientifique des foraminifères

- Intérêt biostratigraphique

Les foraminifères caractérisent une « tranche » de temps bien déterminée et permettent de dater,

de comparer, de corréler, même à distance, les terrains géologiques qui les contiennent.

- Indicateurs de milieux pour des reconstructions de paléoenvironnement

Ils ne diffèrent pas seulement par la morphologie du test, pilier de la systématique des

foraminifères, mais chaque foraminifère est adapté à des facteurs abiotiques qui lui sont

spécifiques (le pH, la présence de sels nutritifs, la teneur en carbonate de calcium, la turbidité, la

nature du fond) (Neumann, 1967).

Les coquilles de foraminifères sont les enregistreurs des variations isotopiques de l'océan en 13C

et 18O (Safari et al., 2009).

- Bioindicateurs de pollution

2. Classification

La classification présentée est d'après Debenay, J.-P. et al. (1996), Bellier, J.-P. (2010) et

Loeblich & Tappan (1988).

Ordre des Foraminiferida Eichwald 1830, Cambrien – Holocène

٢٥ 

 

2.1. Sous-ordre Allogromiina Loeblich & Tappan, 1961, Cambrien supérieur

– Holocène (Fig. 7)

Test : forme variable, uniloculaire ou multiloculaire.

Paroi : membraneuse ou organique, avec parfois des incrustations ferrugineuses ou quelques

éléments agglutinés.

Ouverture : simple ou multiple.

Figure 7 : Chitinosaccus zuluensis Smitter, vue montrant les pseudopodes x 60 (Dessin d’après Sibelle Maksoud).

2.2. Sous-ordre Astrorhizina Jirovec, 1953, Cambrien inférieur – Holocène (Fig. 8)

Test : typiquement uniloculaire, globulaire, stellaire ou tubulaire.

Paroi: agglutinée montre les éléments exogènes dans une matrice organique. Elle est flexible à

ferme, non canaliculée et non alvéolaire.

Ouverture : simple ou multiples localisées à l'extrémité des branches rayonnantes.

٢٦ 

 

Figure 8 : Rhabdammina abyssorum M. Sars, vue externe x 9 (Dessin d’après Sibelle Maksoud).

2.3. Sous-ordre Haplophragmiina Wedekind, 1937, Cambrien inférieur –

Holocène (Fig. 9)

Test : agglutiné multiloculaire, bien cimenté.

Paroi : simple ou alvéolaire.

Ouverture : simple ou multiple.

Figure 9 : Cyclammina cancellata Brady, à gauche vue ombilicale et à droite vue de profil x 14 (D’après Loeblich & Tappan, 1988).

2.4. Sous-ordre Trochamminina Brönnimann & Whittaker, 1988, Cambrien

– Holocène (Fig. 10)

Test : multiloculaire.

٢٧ 

 

Spécificité: pas de perforations ni de pseudopodes alvéolaires.

Paroi : agglutinée avec des phases organiques.

Ouverture : simple, intériomarignale.

Figure 10 : Tiphotrocha comprimata (Cushman & Brönnimann) vue ombilicale montrant les ouvertures, vue de profil et vue spirale x 71

2.5. Sous-ordre Textulariina Delage & Hérouard, 1896, Cambrien inférieur –

Holocène (Fig. 11-12)

Test : multiloculaire.

Paroi : agglutinée, peut être solide ou canaliculée.

Ouverture : simple ou multiple.

Figure 11 : Textularia sp. , vue latérale et vue aperturale (Moulage agrandi 50 fois, d’après The American Museum of Natural History, Collection Muséum de Genève).

٢٨ 

 

Figure 12 : Orbitolina concava (Lamarck), vue de la face supérieur x 5 (D’après Loeblich & Tappan, 1988).

2.6. Sous-ordre Fusulinina Wedekind, 1937, Silurien inférieur – Djoulfien (Fig. 13)

Test : formé par une lame calcaire enroulée autour d'un axe et fermée aux extrémités de l'axe

pour donner une forme fusiforme. La lame s'infléchie pour former des loges séparées par des

cloisons ondulées.

Paroi: différenciée en deux ou plusieurs couches.

Ouverture : sans ouverture ou avec ouverutre simple ou multiple.

Figure 13 : Taitzehoella taitzehoensis J. C. Sheng, section axiale x 25 (D’après Loeblich & Tappan, 1988).

2.7. Sous-ordre Involutinina Hohenegger & Piller, 1977, Permien inférieur –

Cénomanien (Fig. 14)

Test : proloculus suivi d'un enroulement tubulaire de la seconde chambre.

٢٩ 

 

Paroi : calcaire, rayonnée, perforée, probablement d'origine aragonitique, mais peut être

recristallisée et devenir à structure microgranulaire, homogène, épaisse ou avec une structure en

piliers dans la région ombilicale de l'un ou des deux côtés.

Ouverture : simple, à l'extrémité de la chambre tubulaire.

Figure 14 : Lamelliconus biconvexa (Oberhauser), 1- vue de la face inférieure 2- vue de la face supérieure 3- vue latérale 4- section axiale, x 40 (D’après Loeblich & Tappan, 1988).

2.8. Sous-ordre Spirillinina Hohenegger & Piller, 1975, Trias supérieur –

Holocène (Fig. 15)

Test : le proloculus est suivi d'un tube enroulé (planispiralé à trochospiralé). Les loges sont

différenciées, situées directement après le proloculus et présentant des subdivisions internes.

Paroi : calcitique hyaline, parfois des perforations de taille variable et remplies de matière

organique.

Ouverture: simple, située à l'extrémité de la dernière loge ou de la loge tubulaire.

Figure 15 : Spirillina vivipara Ehrenberg, vues des deux faces opposées et vue de profil, x 257 (D’après Loeblich & Tappan, 1988).

٣٠ 

 

2.9. Sous-ordre Carterinina Loeblich & Tappan, 1981, Eocène – Holocène (Fig. 16)

Test : loges initiales semi-circulaires, prennent ensuite une forme de croissant et devenant

irrégulières au stade adulte. Arrangement trochospiralé.

Paroi : constituée interne organique et couche externe avec des cristaux de calcite en forme de

spicules.

Ouverture : ombilicale et simple, devient multiple au stade adulte.

Figure 16 : Carterina spiculotesta (Carter), vue latérale, spécimen montrant les chambres et les cloisons x 21 (D’après Loeblich & Tappan, 1988).

2.10. Sous-ordre Miliolina Delage & Hérouard, 1986, Carbonifère – Holocène (Fig. 17)

Test : uniloculaire à pluriloculaire, parfois discoïde, le plus souvent globuleux. Arrangement des

loges dans des plans différents chez certaines formes.

Paroi : porcelanée en calcite magnésienne, en général imperforée et présente parfois des

pseudopores.

Ouverture : terminale simple ou large.

Figure 17 : Quineloculina sp., face aperturale, (Moulage agrandi 90 fois d’après The American Museum of Natural History. Collection Muséum de Genève).

٣١ 

 

2.11. Sous-ordre Silicoloculinina Resig, Lowenstam, Echols & Weiner, 1980,

Miocène supérieur – Holocène (Fig. 18)

Test : petit avec enroulement de type miliole.

Paroi : imperforée.

Ouverture : terminale, se présente sous forme d’une fente arquée à cause de la dent qui n’est que

la projection de l’un des bords.

Figure 18 : Miliammellus legis Saidova & Burmistrova, 1- face aperturale x 158, 2- vue de profil x 179, 3- vue latérale x 154, 4- vue de profil x 132 (Loeblich & Tappan, 1988).

2.12. Sous-ordre Lagenina Delage & Hérouard, 1896, Silurien supérieur –

Holocène (Fig. 19-20)

Test : allongé, unisérié.

Paroi : calcitique monolamellaire.

Ouverture : simple.

٣٢ 

 

Figure 19 : Vaginulina sp. A gauche vue latérale, à droite vue aperturale, (Moulage agrandi 15 fois, d’après The American Museum of Natural History. Collection Muséum de

Genève).

Figure 20 : Lagena sp., à gauche vue latérale, à droite vue aperturale, (Moulage agrandi 80 fois, d’après The American Museum of Natural History. Collection Muséum de Genève)

2.13. Sous-ordre Robertinina Loeblich & Tappan, 1984, Trias moyen –

Holocène (Fig. 21)

Test : planispiralé à trochospiralé.

Paroi : aragonitique hyaline, radiaire et perforée.

Ouverture : interiomarginale à équatoriale. Il existe des subdivisions dans les loges près de

l’ouverture.

٣٣ 

 

Figure 21 : Robertina arctica D'Orbigny, 1 et 2- vue latérale 3- vue aperturale x 112

(D’après Loeblich & Tappan, 1988).

2.14. Sous-ordre Globigerinina Delage & Hérouard, 1896, Bathonien –

Holocène (Fig. 22)

Test : multiloculaire, trochospiralé.

Paroi : calcitique hyaline, parfois fibroradiée.

Ouverture : simple, interiomarginale, à la base de la chambre terminale ou multiple

Figure 22 : Globigerina sp., à gauche face spirale, à droite face ombilocale (Moulage agrandi 50 fois, d’après The American Museum of Natural History. Collection au muséum,

Genève).

2.15. Sous-ordre Rotaliina Delage & Hérouard, 1896, Jurassique - Holocène (Fig. 23-24)

Test : pluriloculaire, enroulé, parfois devenant bisérié, voire même unisérié, ou alors encroûtant

avec des loges qui prolifèrent.

٣٤ 

 

Paroi : calcitique hyaline, à structure fibroradiée ou granulaire, lamellaire, perforée et formée par

la calcification de part et d’autre d’une fine couche organique.

La surface présente des aspects variés : lisse, costulée, striée, etc.

Ouverture : simple ou avec une plaque interne.

Figure 23 : Uvigerina sp., à gauche vue latérale, à droite vue aperturale (Moulage agrandi 45 fois, d’après The American Museum of Natural History. Collection Muséum de

Genève).

Figure 24 : Eponides sp. , à gauche vue spirale et à droite vue aperturale (Moulage agrandi 40 fois, d’après The American Museum of Natural History. Collection Muséum de

Genève).

٣٥ 

 

Chapitre IV : Famille des Orbitolinidae

La classification adoptée est celle de Loeblich & Tappan (1988).

Ordre Foraminiferida Eichwald, 1830, Cambrien supérieur-Holocène

Sous-ordre Textulariina Delage & Hérouard, 1896, Cambrien-Holocène

Superfamille Orbitolinacea Martin, 1890, Jurassique-Oligocène

Famille Orbitolinidae Martin, 1980, Jurassique-Oligocène

1. Le test et la paroi

Cette famille regroupe des foraminifères coniques unisériés à test agglutiné, débutant par un

appareil embryonnaire plus ou moins complexe, apical ou excentré, et dont les loges discoïdales

qui augmentent régulièrement de taille sont partagées en une zone marginale imperforée et une

zone centrale traversée par les pores aperturaux. La zone marginale peut être subdivisée par un

cloisonnement sous-épidermique, tandis que la zone centrale est cloisonnée par diverses

structures: cloisons, piliers, pilaroides, cupules.

Les Orbitolinidae ont une forme de cône plus ou moins ouvert à base convexe, plane ou concave.

Leur angle apical peut être soit très aigu et donne alors des tests cylindroconiques, soit au

contraire obtus auquel cas ils ont une forme lenticulaire ou en "chapeau chinois". Entre ces deux

formes extrêmes il existe toutes les formes intermédiaires. La valeur de l'angle apical permet de

définir la forme générale du test.

La paroi de chaque loge comprend deux couches; une externe hyaline et une interne, sombre

avec du calcaire microgranulaire qui peut agglutiner divers débris dans la zone centrale du test.

A noter que la couche hyaline n'est observée qu'exceptionnellement sur des spécimens bien

conservés (Arnaud-Vanneau, 1980).

٣٦ 

 

2. Appareil embryonnaire

L'appareil embryonnaire diffère suivant les formes macro- ou microsphériques.

Pour les formes microsphériques, il s'agit d'un proloculus simple situé à l'extrémité d'une petite

spire ou trochospire. Quant aux formes macrosphériques, deux cas sont possibles; un appareil

embryonnaire simple ou complexe.

Dans le premier cas : Le proloculus est suivi d'un deuteroloculus, communiquant par un large

pore. Ces deux premières loges sont généralement à l'origine d'une spire ou trochospire, plus ou

moins involute et plus et moins excentrée. Exemple: Orbitolinopsis.

Dans le deuxième cas : l'embryon occupe une position apicale. Après le proloculus, le

deuteroloculus peut être divisé par un réseau de cloisonnettes. L'ensemble peut être entouré plus

ou moins complètement des loges embryonnaires. Exemple: Palorbitolina (Arnaud-Vanneau,

1980).

3. Clé de détermination des différents genres d'Orbitolinidae crétacé

La hiérarchie suivie par Arnaud-Vanneau, 1980 vise à grouper les Orbitolinidae suivant :

- l'alternance, d'une loge à l'autre, des structures divisant les loges;

- la division ou l'indivision de la partie périphérique des loges,

- la nature des divisions de la zone centrale et son aspect dans les loges adultes,

- la forme de l'appareil embryonnaire. (Tableau 5)

Les cloisons de la zone marginale n'alternent pas d'une loge à l'autre

- L'appareil embryonnaire est simple

Genre Paracoskinolina Moullade, 1965:

Appareil embryonnaire : simple au sommet d'une trochospire subapicale ou légèrement

excentrée.

Zone marginale : divisée par des cloisonnettes verticales et horizontales.

٣٧ 

 

Zone centrale : divisée par des piliers qui n'alternent pas d'une loge à l'autre et qui se réunissent

entre eux à la base et au sommet de la loge. Et est perforée par des pores aperturaux verticaux

(ou subverticaux) qui s'alignent sur des droites issues de l'apex.

- L'appareil embryonnaire est complexe

Genre Dictyorbitolina Cherchi & Schroeder, 1975

Appareil embryonnaire : apical constitué d'un proloculus et d'un deutéroloculus cloisonné a sa

partie supérieure.

Zone marginale : divisée par des cloisonnettes verticales et horizontales.

Zone centrale : divisée par des piliers qui alternent d'une loge à l'autre et est perforée par des

pores aperturaux verticaux (ou subverticaux).

Les cloisons de la zone marginale alternent d'une loge à l'autre ainsi que les

subdivisions de la zone centrale

- La partie périphérique de la zone marginale est indivise

La zone centrale est divisée par des piliers

Genre Urgonina Foury & Moullade, 1966

Appareil embryonnaire : simple au sommet d'une grosse trochospire évolute excentrée.

Zone marginale : divisée par des cloisons, issues d'une invagination du plancher, et apparaissant

à une certaine distance du bord de la loge.

Zone centrale : divisée par des piliers et perforée par des pores aperturaux subverticaux.

La zone centrale est divisée par des cloisons

Genre Falsurgonina Arnaud-Vanneau & Argot 1973

Appareil embryonnaire : simple au sommet d'une trochospire évolute excentrée.

Zone marginale : divisée par des cloisons quelquefois incomplètes vers le haut de la loge et

perforée par des pores aperturaux obliques ou subverticaux.

- La partie périphérique de la zone marginale est divisée

La zone centrale est indivise ou presqu'indivise

٣٨ 

 

La zone centrale est totalement indivise

Genre Coskinolinoides Keijzer 1942

Appareil embryonnaire : simple au sommet d'une trochospire apicale.

Zone marginale : divisée par des cloisonnettes verticales.

Zone centrale : indivise, perforée par des pores aperturaux verticaux.

La zone centrale est en partie divisée par les cloisons de la zone marginale qui se

poursuivent, parfois, dans la zone centrale

Genre Heterocoskinolina Saint-Marc 1978

Appareil embryonnaire : simple au début d'une trochospire excentrée.

Zone marginale : divisée par des cloisonnettes verticales

Zone centrale : indivise sauf dans sa partie périphérique où quelques cloisonnettes de la zone

marginale se poursuivent quelquefois sur une courte distance. Cette zone est perforée par des

pores aperturaux verticaux.

La zone centrale est entièrement divisée

La zone centrale est divisée par des cupules

Genre Orbitolinopsis Silvestri 1932

Appareil embryonnaire : simple au sommet d'une petite trochospire excentrée.

Zone marginale: divisée par des cupules qui se poursuivent dans la zone centrale et, parfois, par

des cloisonnettes verticales.

Zone centrale: divisée en une partie radiale avec des cupules allongées et une partie centrale avec

des cupules hémisphérique. Ces diverses cupules communiquent exceptionnellement entre elles.

Cette zone est perforée par des pores aperturaux obliques, sortant dans les dépressions

intercupulaires, et disposés sur des droites diagonales.

La zone centrale est divisée par des piliers

L'appareil embryonnaire est simple

Genre Dictyoconus Blanckenhorn 1900 (? = Fallotella Mangin 1954)

٣٩ 

 

Appareil embryonnaire : simple au début d'une trochospire ou d'une planispire involute.

Zone marginale : divisée par des cloisonnettes verticales et parfois horizontales.

Zone centrale : divisée par des piliers régulièrement disposés en anneaux concentriques et

perforée par des pores aperturaux verticaux en marche d'escalier.

L'appareil embryonnaire est complexe

Genre Rectodictyoconus Schroeder 1964

Appareil embryonnaire : apical dont le deutéroloculus est cloisonné à sa partie supérieure.

Zone marginale : divisée par des cloisonnettes verticales et horizontales

Zone centrale : divisée par des piliers qui se réunissent entre eux au sommet de la loge et

perforée par des pores aperturaux verticaux (ou subverticaux) disposés en marche d'escalier.

La zone centrale est divisée par des polaroïdes et des cloisons piliers

L'appareil embryonnaire simple est au sommet d'une trochospire ou d'une planispire

Genre Paleodictyoconus Moullade 1965

Appareil embryonnaire : simple au début d'une trochospire ou d'une planispire involute.

Zone marginale : divisée par des cloisonnettes verticales et horizontales.

Zone centrale : divisée par des pilaroides ou des cloisons piliers et perforées par des pores

aperturaux obliques disposés sur des lignes diagonales.

La zone centrale est divisée par des cloisons qui ne sont pas méandriformes

Genre Cribellopsis Arneaud-Vanneau, 1980

Appareil embryonnaire simple au sommet d'une petite trochospire subapicale ou légèrement

excentrée.

Zone marginale : divisée par des cloisons verticales.

Zone centrale : divisée par des cloisons grossièrement rayonnantes qui forment plus ou moins un

reticulum central et perforée par des pores aperturaux obliques et verticaux.

L'appareil embryonnaire apical est complexe

Genre Abrardia Neumann & Damotte 1960

٤٠ 

 

Appareil embryonnaire : apical ou subapical mal connu en raison de l'imprécision de la

figuration originale.

Zone marginale : divisée par des cloisonnettes verticales et horizontales.

Zone centrale : divisée par des cloisons rayonnantes se réunissant au centre et dont le partie

inférieure peut se résoudre en piliers. Cette zone est perforée par des pores aperturaux

subverticaux et obliques.

La zone centrale est divisée par des cloisons méandriformes qui, au centre, donnent assez

souvent une partie centrale réticulée. Les loges annulaires sont peu nombreuses

La partie centrale n'est pas réticulée ou montre un réticulum réduit

Genre Simplorbitolina Ciry & Rat 1952

Appareil embryonnaire : simple au début d'une petite trochospire.

Zone marginale : divisée par des cloisons méandriformes qui se réunissent au centre en donnant

parfois une structure réticulée réduite. Cette zone est perforée par des pores aperturaux obliques

disposés le long de ligne diagonales et s'ouvrant aux flancs des sillons.

La partie centrale est réticulée

Genre Valserina Schroeder & Conrad 1967

Appareil embryonnaire simple au début d'une petite spire réduite.

Zone marginale : divisée par des cloisonnettes verticales et horizontales.

Zone centrale : divisée en une partie radiale avec des cloisons radiales méandriformes et une

partie centrale réticulée. Cette zone est perforée par des pores aperturaux obliques disposés sur

des lignes diagonales.

L'appareil embryonnaire complexe est apical ou subapical

L'appareil embryonnaire est constitué d'un proloculus et d'un deutéroloculus cloisonné

Genre Neorbitolinopsis Schroeder 1965

Appareil embryonnaire : apical constitué d'un proloculus globuleux surmonté d'un

deutéroloculus dont la partie superficielle est cloisonnée. Il n'y a pas d'annexes embryonnaires.

Zone marginale : divisée par des cloisonnettes horizontales et verticales.

٤١ 

 

Zone centrale : divisée en partie radiale avec des cloisons radiales méandriformes et une partie

centrale réticulée. Cette zone est perforée par des pores aperturaux obliques disposés sur des

lignes diagonales.

L'appareil embryonnaire est constitué d'un proloculus, d'un deutéroloculus cloisonne et

d'une zone périembryonnaire

Genre Neoiraqia Danilova 1963

Appareil embryonnaire : constitué d'un proloculus surmonté d'un deutéroloculus cloisonné et

entouré d'une zone périembryonnaire simple.

Zone marginale : très limitée, divisée par des cloisons qui gardent une épaisseur égale du haut en

bas de la loge et forment un réticulum. La partie radiale est inexistante. Cette zone est perforée

par des pores aperturaux obliques.

L'appareil embryonnaire est constitué d'un proloculus, d'un deutéroloculus cloisonné et

d'une zone périembryonnaire entourant l'ensemble du proloculus et du deutéroloculus

jusqu’à la surface du test

Genre Alpillina Foury 1968

Appareil embryonnaire : apical constitue d'un proloculus globuleux surmonté d'un

deutéroloculus dont la partie superficielle est cloisonnée. Proloculus et deutéroloculus sont

entourée par une zone périembryonnaire jusqu’à la surface du test.

Zone marginale : divisée par des cloisonnettes horizontales et verticales.

Zone centrale : divisée en une partie radiale et une partie centrale confuse. Cette zone est

perforée par des pores aperturaux obliques disposés sur des lignes diagonales.

La zone embryonnaire est divisée par des cloisons méandriformes. Les nombreuses loges

annulaires ne possèdent pas de partie centrale réticulée

Les Orbitolinidae rangés dans cette catégorie appartiennent aux obitolines sensu stricto.

Test : conique aplati, lenticulaire ou en chapeau chinois terminé par des loges annulaires qui sont

généralement assez nombreuses.

Zone marginale : divisée par des cloisonnettes verticales et horizontales.

٤٢ 

 

Zone centrale : constituée d'une partie radiale et d'une partie centrale. Dans les loges annulaires,

seules la partie radiale est conservée. La partie centrale des loges entières est occultée par du

matériel détritique.

Pores aperturaux : obliques, alignés sur des lignes diagonales.

Les différences entre les genres et sous - genres portent essentiellement sur l'appareil

embryonnaire. (Tableau 6)

L'appareil embryonnaire, apical ou légèrement excentré, est constitué d'un proloculus,

d'un deutéroloculus dont la partie supérieure est cloisonnée et d'une zone

périembryonnaire.

Genre Palorbitolina Schroeder 1963

L'appareil embryonnaire est apical et la zone périembryonnaire entoure sur les côtés l'ensemble

du proloculus et du deutéroloculus.

Sous-genre Palorbitolina Schroeder 1963

L'appareil embryonnaire est légèrement excentré et la zone périembryonnaire n'entoure pas

entièrement sur les côtés le proloculus et le deutéroloculus.

Sous-genre Eopalorbitolina Schroeder & Conrad 1968.

L'appareil embryonnaire apical ou légèrement excentré est constitué d'un proloculus, d'un

deutéroloculus parfois très cloisonné et d'une zone sous-embryonnaire

L'appareil embryonnaire, légèrement excentré, est constitué d'un proloculus, d'un

deuteroloculus assez simple et d'une zone subembryonnaire peu divisée

Genre Praeorbitolina Schroeder 1964

L'appareil embryonnaire apical est formé d'un proloculus, d'un deutéroloculus cloisonné et

d'une zone subembryonnaire divisée

Genre Orbitolina D'Orbigny 1850

Les alvéoles du deutéroloculus ne débouchent pas directement sur le proloculus.

Les parois du deutéroloculus s'infléchissent vers le haut au niveau du proloculus (critère inédits –

Schroeder 1980)

٤٣ 

 

Sous-genre Mesorbitolina Schroeder 1962

Sous-genre Conicorbitolina Schroeder, 1973

Sous- genre Orbitolina D'Orbigny 1850.

٤٤ 

 

Tableau 5 : Tableau récapitulatif des différents genres Orbilolinidae crétacés selon Arnaud-Vanneau (1980).

٤٥ 

 

Tableau 6 : Zones embryonnaires.

٤٦ 

 

٤٦ 

 

٤٧ 

 

٤٨ 

 

Espèce   Diamètre (mm)  Références Simplorbitolina manasei Ciry & Rat, 1953  P. = 0.5‐0.6 

D. = 0.8‐0.9 Schroeder & Neumann, 1985  

Simplorbitolina conulus Schroeder, 1965  P = 0.7 D = 0.9 

Schroeder & Neumann, 1985  

Eopalorbitolina pertenuis (Foury, 1968)  E.= 0.2  Schroeder et al., 2010  

Eopalorbitolina Charollaisei Schroeder & Conard, 1968 

E.= 0.2 

Eopalorbitolina transiens (Cherchi & Schroeder, 1999) 

E. = 0.3 Z. per.= 0.1 

Palorbitolina lenticularis Blumenbach, 1805  P. = 0.09 P. + Z. per. = 0.17 

Palorbitolina ultima Schroeder, 2010  Z. = 0.14 P.+Z. per.= 0.24 

Palorbitolinides cf. orbitculata Zhang, 1986  E. = 0.35 Praeorbitolina cormyi Schroeder, 1964  E. = 0.08‐0.09  Schroeder, 1979 Praeorbitolina wienandsi Schroeder, 1964  Idem  Schroeder, 1979 Orbitolina (Mesorbitolina) lotzei Schroeder, 1984 

E. = 0.1‐0.12  Schroeder, 1979 

Orbitolina (Mesorbitolina) parva Douglass, 1960 

E. = 0.15  Schroeder, 1979 

Orbitolina (Mesorbitolina) texana (Roemer, 1849) 

P. = 0.10‐0.11 D. = 0.22‐0.24 

Schroeder, 1979 

Orbitolina (Mesorbitolina) subconcava Leymerie, 1878 

P. = 0.16‐0.18 D. = 0.4‐0.5 

Schroeder, 1979 

Orbitolina (Mesorbitolina) aperta (Erman, 1854) 

E.= 0.1‐0.6 P. = 0.4‐0.6 

Schroeder, 1979 

Orbitolina sefini Henson, 1948  E. = 0.5‐0.7 P.=  0.2‐0.25 

Schroeder Neumann, 1985 

Orbitolina (Conicorbitolina) concava D'Orbigny, 1850 

E. = 0.7‐0.9 P. = 0.3‐0.4 

Schroeder & Neumann, 1985 

Orbitolina (Conicorbitolina) corbarica Schroeder, 1985 

E. = 0.3‐0.5 P.=. 0.12‐0.16 

Schroeder & Neumann, 1985 

Orbitolina (Conicorbitolina) conica D'Archiac, 1837 

E.  = 0.7‐0.8 P. = 0.2‐0.3 

Schroeder & Neumann, 1985 

Orbitolina (Orbitolina) duranddelgai  Schroeder, 1972 

E. = 0.5 – 0.7 P. = 0.25‐0.3 

Schroeder & Neumann, 1985 

E. = Embryon, P = Protoconque, D. = Deuteroconque, Z. per.= Zone périembryonnaire Les mesures concernent seulement les formes mégalosphériques 

٤٩ 

 

Chapitre V : Méthodes de préparation du matériel

Le matériel récolté sur le terrain comporte des sédiments meubles (argiles et calcaires marneux)

et des sédiments indurés (calcaires). Les premiers ont été lavés afin de dégager les

microorganismes ; des lames minces ont été effectuées dans les seconds.

Ce chapitre présente les méthodes employées.

1. Lavage des sédiments meubles

Ce procédé comporte plusieurs étapes :

- dissoudre le sédiment meuble avec de l'eau du robinet et de l'eau de javel dans un seau, en

agitant l'ensemble jusqu’à l'obtention d'un mélange homogène (Fig. 25) ;

- passer l'ensemble sur une série de trois tamis montés en colonne et dont la taille de leurs

mailles décroît de haut en bas. Les éléments de taille supérieure à 1 mm restent dans le tamis

supérieur, ceux dont la taille varie entre 1 mm et 0,5 mm dans le tamis médian et ceux dont la

taille varie entre 0,5 mm et 0,315 mm dans le tamis inférieur ;

- effectuer le lavage de chaque tamis en ajoutant un peu de lessive ; cette étape se termine

lorsque l'eau traversant le tamis est aussi claire qu'à la sortie du robinet ;

- récupérer le matériel de chaque tamis (Fig.26 et 27) ;

- le sécher dans une étuve ;

- trier le matériel, c’est-à-dire séparer les microorganismes des débris minéraux et les placer dans

des cellules par catégorie ; cette opération est appelée « picking » par les géologues.

Le picking se fait soit à l’œil nu (éléments supérieurs à 1 mm comme par exemple les

orbitolinidés, Fig. 28), soit à la loupe binoculaire avec une aiguille passée régulièrement dans de

la pâte à modeler ou avec une pince très fine légèrement humidifiée. Cela permet de saisir le

microorganisme pour le déposer délicatement dans la cellule.

٥٠ 

 

Figure 25 : Dissolution et mélange dans de l'eau du robinet et de l'eau de javel (D’après Jeff Gerges).

Figure 26 : Récupération du matériel dans le troisième tamis avec des mailles de 0,315 mm (D’après Sibelle Maksoud).

٥١ 

 

Figure 27 : Récupération du matériel dans le deuxième tamis avec des mailles de 0,5 mm (D’après Sibelle Maksoud).

Figure 28 : Orbitolines récoltées dans le tamis avec des mailles de 1 mm (D’après Sibelle

Maksoud).

2. Confection de lames minces dans les roches indurées

Les étapes sont les suivantes.

- Sciage (Fig.29)

A l’aide d’une scie à disque diamanté (Dureté = 10 dans l'échelle de Mohs), on découpe un petit

morceau de roche appelé talon (dimensions 26 mm x 46 mm, épaisseur 10 mm) sous un courant

d’eau continu.

٥٢ 

 

Figure 29 : Sciage (D’après Pierre-Alain Proz).

- Dressage /Rodage

Sous un courant d'eau, l'échantillon est dressé manuellement sur un lapidaire pourvu d'un

mouvement circulaire pour obtenir une surface absolument plane ; une lumière rasante à cette

surface permet de vérifier si celle-ci est parfaitement plane.

La finesse du travail est obtenue grâce à des disques de granulométries différentes de plus en

plus fines (Fig. 30). La valeur précise le nombre de mailles par pouce de surface du tamis qui a

été utilisé pour calibrer les grains de l'abrasif. Le grain dit 60 sera donc plus gros que le 180.

Ne pas oublier de numéroter des échantillons (Fig. 31) et de les ranger soigneusement (Fig. 32).

Grain 40

٥٣ 

 

Grain 1200 Grain 70

Figure 30 : Rodage et disques de rodage de plus en plus fins (D’après Pierre-Alain Proz et

Sibelle Maksoud).

Figure 31 : Numérotation des échantillons (D’après Sibelle Maksoud).

Figure 32 : Facilitation du travail avec des échantillons bien ordonnés (D’après Sibelle Maksoud).

٥٤ 

 

- Collage

Le talon est collé à chaud sur une lame mince de verre calibrée, le porte-objet. Le tout est mis

sous presse (Fig. 33).

Selon la qualité, la dureté et la porosité de la roche, différentes colles sont utilisées.

Par exemple la cyanoacrylate ne convient pas pour les roches poreuses mais pour des roches très

dures.

- Arasement

L’arasement consiste à réduire l’épaisseur du talon à environ 1 mm. Cette opération est réalisée

par sciage.

- Rectification

A l’aide d’une rectifieuse diamantée avec liant métal (le diamètre des grains de diamant = 75

micromètre), l’épaisseur du talon est amenée à 0,050 mm.

- Finition ou mise en épaisseur de la lame mince

Pour arriver à l’épaisseur finale du talon, c’est-à-dire 0,030 mm (30 microns), un rodage manuel

est effectué. L’échantillon est frotté délicatement sur une plaque de verre enduite de poudre

abrasive très fine (carbure de silicium), en vérifiant constamment l’épaisseur à l’aide d’un

micromètre de précision (Fig. 34). Ou bien à la discoplan avec une moule dont le diamètre des

grains de diamants est de 30 micromètre (dans ce cas le liant est le verre).

Figure 33 : Mise sous presse des lames (D’après Sibelle Maksoud).

٥٥ 

 

Figure 34 : Micromètre de précision (D’après Sibelle Maksoud).

- Collage du couvre-objet

L’étape finale consiste à recouvrir la mince pellicule de roche collée sur le porte-objet d’une très

mince lamelle de verre (0,150 mm d’épaisseur). Le collage se fait avec une résine, le baume de

Canada.

Le baume en surplus sera dissous avec de l'éthanol.

C'est à partir de ce moment que la préparation est nommée lame mince (Fig. 35). La référence de

l’échantillon est notée et la lame mince est prête à l’étude, c’est-à-dire à l’observation au

microscope polarisant.

٥٦ 

 

Figure 35 : Schéma résumant les étapes de la préparation des lames minces.

٥٧ 

 

3. Méthodes particulières pour les orbitolinidés

3.1. Des lames minces réalisées sur des surfaces sélectionnées

La détermination des orbitolinidés étant basée sur l’appareil embryonnaire en section axiale, il a

fallu trouver des astuces pour augmenter la probabilité d’obtenir des coupes axiales sans réaliser

un nombre élevé de lames minces.

Ainsi les échantillons indurés ont été coupés en tranches pour observer le maximum de surfaces.

Celles-ci ont été uniquement polies et les sections axiales identifiées à la loupe binoculaire (Fig.

36).

Les lames minces ont été faites dans les secteurs où de bonnes sections ont été repérées.

Il faut préciser que la recristallisation des calcaires n’a pas rendu l’observation aisée.

Figure 36 : A droite : échantillons coupés en tranches ; à gauche : sélection des tranches avec de bonnes sections d’orbitolines (D’après Sibelle Maksoud).

3.2. La méthode des "acetate peels"

Cette méthode est plus rapide que celle des lames minces :

- polir la roche ;

٥٨ 

 

- attaquer la surface polie avec de l'acide chlorhydrique à 10% (Fig. 37). Ce dernier va dissoudre

de manière hétérogène le calcaire ;

Cette opération est délicate, c’est une question d’expérience car le temps de trempage dépend de

la dureté de l'échantillon, de sa composition et de sa minéralogie.

Figure 37 : Attaque de la surface polie avec de l'HCl à 10 % (D’après Sibelle Maksoud).

- laisser sécher la préparation ;

- poser l'échantillon (face attaquée à l'HCl vers le haut) dans un bac à sable (Fig. 38) pour le

maintenir stable et horizontal ;

Figure 38 : Echantillon dans le bac à sable (D’après Sibelle Maksoud).

٥٩ 

 

- bien mouiller la surface avec de l'acétone et appliquer immédiatement le film d'acétate de

cellulose, sans faire de bulles d'air ;

- laisser sécher et puis décoller le film (Fig. 39) ;

- une fois décollé, le papier acétate doit être rapidement mis entre deux plaques de verre. Ce qui

permet d'obtenir une surface plus ou moins plane et faciliter l'observation à la binoculaire.

Cette méthode permet d'obtenir une image exacte de l'échantillon mais comme il s’agit d’une

empreinte, il n’est pas possible de l’observer en lumière polarisée.

Figure 39 : Décollage de l'acétate (D’après Sibelle Maksoud).

3.3. Les orbitolinidés dégagés

3.3.1. Méthode avec du plâtre et de la résine

Les microfossiles ont été inclus dans un plâtre spécial ou un ciment ; et des lames minces

orientées ont été confectionnées afin d’obtenir des sections axiales. Les étapes de la préparation

sont les suivantes :

- fixer l'orbitoline perpendiculairement sur de la plastiline ;

- poser dans un moule ;

- préparer le plâtre en suivant les recommandations indiquées sur le sac ;

- verser le plâtre d'abord autour de l'orbitoline puis remplir le moule ;

- mettre quelques secondes sur une plaque vibrante pour chasser les bulles d'air ;

- laisser sécher ;

٦٠ 

 

- nettoyer la plastiline (d'abord avec une pince, ensuite avec la fraise) ;

- préparer la résine (epoxy) tout en suivant les doses spécifiées ;

- verser la résine pour remplir les perforations en tenant bien l'orbitoline ;

- observer sous la loupe la position et l'orientation de l'orbitoline afin d’orienter la coupe ;

- couper avec une scie très fine ;

- sur un disque fixe de rodage (granulométrie 1000 puis passer à 1200), user manuellement

l'ensemble pour atteindre l'embryon ;

- vérifier de temps en temps sous la loupe pour ne pas rater l'embryon!

- au moment où l'embryon est atteint, une lame mince peut être exécutée.

Cette technique permet d'observer les embryons mais possède un inconvénient concernant le

facteur temps (temps de séchage du plâtre et de la résine).

3.3.2. Méthode avec le Crystalbond (polymère thermoplastique)

Figure 40 : Bâton de Crystalbond et orbitolines (D’après Sibelle Maksoud).

- poser un morceau de Crystalbond (Fig. 40) sur une lame et placer celle-ci sur une plaque

chauffante ;

- quand le Crystalbond est mou, retirer la lame de la plaque et poser rapidement l’orbitoline sur

la tranche préalablement usée ;

٦١ 

 

- quand le Crystalbond est à nouveau dur, user manuellement avec un abrasif (papier

granulométrie 1200 ou poudre) jusqu’à l'embryon (Fig. 41) ;

Figure 41 : Usure manuelle sur un papier abrasif (D’après Sibelle Maksoud).

- chauffer à nouveau l'ensemble et retourner l’orbitoline ;

- user à nouveau jusqu’à l’obtention d’une lame mince ou d'une épaisseur permettant de

l'observer en lumière transmise.

 

٦٢ 

 

Chapitre VI : Etude stratigraphique

Deux logs ont été levées dans le Mont-Liban au SE de Beyrouth dans la Formation de Jezzine

d'âge aptien (Dubertret, 1950, 1951 ; Walley, 2001). Une trentaine d’échantillons isolés a été

prélevée dans différents niveaux du Crétacé (Fig. 42).

Le log d'Ain Dara (Aley), traversée par la route des bétonniers, surmonte la Falaise de Blanche et

comprend 11 niveaux à orbitolines. Ces terrains ont été attribués à l'Aptien supérieur par

Dubertret (Feuille de Beyrouth 1/50000, 1950).

Le log de Kfar Niss (Chouf) surmonte la Falaise de Blanche et comporte 6 niveaux à orbitolines.

Ces terrains ont été datés de l'Aptien supérieur par Dubertret (Feuille de Djezzine 1/50000, 1951)

(Fig. 43).

٦٣ 

 

  

Figure 42 : Localisation des sites à orbitolines indiqués sur la carte élaborée par Sally Sassine (inédit, 2011).

 

٦٤ 

 

Figure 43: Carte de situation des 2 logs (étoile bleu : log d’Ain Dara ; étoile rose : log de Kfar Niss). C1= Néocomien, C2a= Aptien inférieur, C2b= Aptien supérieur, C3= Albien, C4=

Cénomanien, J6= Kimméridgien (d’après les cartes géologiques 1/50'000, Beyrouth et Jezzine).

1. Log d'Ain Dara ( داره عين )

1.1. Coordonnées

‐ Base du log : 33˚ 46' 44.90'' N - 35˚ 42' 27.57'' E

‐ Sommet du log : 33˚ 46' 43.68'' N - 35˚ 42' 29.21'' E (Fig. 44)

1.2. Altitude

‐ Base du log : 1204 m

‐ Sommet du log : 1230 m

Les figures 44 et 45 montrent la localisation du log réalisé.

٦٥ 

 

Figure 44 : Localisation du log par rapport au village d'Ain Dara (D’après Google Earth).

Figure 45 : Situation du log d'Ain Dara (D’après Google Earth).

٦٦ 

 

1.3. Description (Fig.46)

‐ Banc calcaire de 60 cm (Falaise de Blanche)

Echantillon D Blanche

Microfaciès (Pl. I, Fig. 1) : Biomicrite/wackestone

Bioclastes : miliolidés, foraminifères agglutinés, ostracodes, dasycladales, débris de test de

mollusques

‐ Trois niveaux marneux de 50, 50 et 75 cm

‐ Niveau argileux de 120 cm

‐ Banc calcaire de 120 cm

Echantillon D 1

Microfaciès (Pl. I, fig. 2) : biomicrite / mudstone (bioturbation)

Bioclastes : miliolidés, débris de gastéropodes et débris de tests indéterminés, piquants

d'oursin, Choffatella cf. decipiens Schlumberger, 1904

‐ Banc calcaire de 20 cm

Echantillon D2

Microfaciès (Pl. I, Fig. 3) : biomicrite / packestone

Bioclastes : Choffatella sp., débris de gastéropodes, piquants d'oursins

‐ Niveau argileux de 70 cm

‐ Banc calcaire de 30 cm

‐ Niveau argileux de 110 cm

‐ Banc calcaire de 20 cm

‐ Banc calcaire de 30 cm avec à la base et au sommet une pellicule argileuse très riche en

orbitolines. Des gastéropodes ont été observés à la surface de ce niveau. Phénomène de

taphonomie avec remplissage de coquillages (Fig. 47).

٦٧ 

 

Figure 46 : Log d'Ain Dara.

٦٨ 

 

Figure 47 : Gastéropode rempli avec des orbitolines (D’après Sibelle Makoud).

Echantillon D3

Microfaciès (Pl. I, Fig. 4) : biomicrite (zones recristallisées en microsparite) / packestone

Bioclastes : orbitolines très abimées

Echantillon D4

Microfaciès (Pl. II, Fig. 1) : biomicrite (zones recristallisées en microsparite) / packestone

Bioclastes : orbitolines très abimées, Choffatella sp. 

‐ Banc calcaire de 20 cm

Echantillon D5

Microfaciès (Pl. II, Fig. 2) : biomicrite / wakestone (recristallisation)

Bioclastes : orbitolines cassées et très abimées, miliolidés, foraminifères agglutinés, piquants

d'oursins, dasycladales

‐ Lacune d'observation (route)

‐ Niveau argileux de 10 cm avec des débris d'huîtres

Echantillon D6

‐ Niveau calcaire marneux ocre de 50 cm, riche en huîtres

٦٩ 

 

Echantillon D7

Microfaciès (Pl. II, Fig. 3) : biomicrite / packestone

Bioclastes : débris de tests de gastéropodes

‐ Niveau de grès gris et de brèches violettes 3 à 4 m

‐ Niveau marneux de 1 m, très riche en orbitolines (Fig. 48)

Echantillon D8

Orbitolina (Mesorbitolina) lotzei Schroeder, 1964 (Planche VI, Fig.1)

Figure 48 : Niveau marneux riche en orbitolines (D’après Sibelle Maksoud).

‐ Niveau calcaire marneux ocre de 50 cm

Echantillon D9 prélevé à la base du niveau riche en orbitolines (Fig. 49)

Microfaciès (Pl. II, Fig. 4) : biomicrite / wakestone, avec des oxydes de fer

Bioclastes : orbitolines cassées et abimées, ostracodes, débris de tests (serpules)

Echantillon D10 prélevé au sommet du niveau riche en huîtres (Fig. 50)

Microfaciès (Planche III, Fig. 1) : Intraoobiomicrite / grainestone, avec des oxydes de fer

٧٠ 

 

Bioclastes : Orbitolina (Mesorbitolina) subconcava, Leymerie, 1878 (Planche VI Fig. 2),

Mesorbitolina ? sp. (Planche VI, Fig. 3), Orbitolina (Mesorbitolina) sp. (Planche VI Fig. 4),

débris de tests divers (dont des mollusques, serpules)

Figure 49 : Base du niveau calcaire marneux (D’après Sibelle Maksoud).

Figure 50 : Sommet du niveau calcaire marneux (D’après Sibelle Maksoud).

‐ Niveau marneux de 35 cm avec des orbitolines (Fig. 51)

٧١ 

 

Figure 51 : Niveau marneux (D’après Sibelle Maksoud).

‐ Banc calcaire de 35 cm (Fig. 52)

Echantillon D11

Microfaciès (Pl. III, Fig. 2): biomicrite / mudstone, présence de fer

Bioclastes : orbitolines cassées, miliolidés, lituolidés, débris de tests de bivalves

Figure 52 : Banc calcaire (D’après Sibelle Maksoud).

٧٢ 

 

‐ Niveau argileux 30 cm, riche en orbitolines

Echantillon D12

‐ Banc calcaire de 30 cm

‐ Niveau marneux entre 2 bancs calcaires, grèseux riche en orbitolines (Fig. 53). Présence

d’ichnites à la base (Fig.54).

Figure 53 : Calcaire gréseux riche en orbitolines (D’après Dany Azar).

Figure 54 : Ichnites à la base du niveau (D’après Sibelle Maksoud).

٧٣ 

 

1.4. Interprétation

Chofatella decipiens Schlumberger, 1905 est connue de la base du Valanginien à l'Aptien, avec

un maximum à l'Aptien (Neumann, 1967).

Orbitolina (Mesorbitolina) subconcava est une espèce connue dans Aptien supérieur-Albien

supérieur (Schroeder & Neumann, 1985).

Orbitolina (Mesorbitolina) lotzei est une espèce connue dans l'Aptien inférieur (Schroeder,

1975).

Dubertret attribue les terrains de la région d'Ain Dara sur la Feuille de Beyrouth (1950) à

l'Aptien supérieur.

2. Log de Kfar Niss (آفر نيس)

2.1. Coordonnées

‐ Base du log : 33˚ 44' 33.98'' N – 35˚ 40'41.01'' E

‐ Sommet du log : 33˚ 46' 35.63'' N – 35˚ 40' 40.16'' E (Fig. 55-59)

2.2. Altitude

- Base du log : 1087 m

- Sommet du log : 1089 m

Figure 55 : Situation du log de Kfar Niss (D’après Google Earth).

٧٤ 

 

2.3. Description (Fig.56)

- Banc calcaire de 60 cm d'épaisseur (Falaise de Blanche)

- Banc calcaire de 90 cm

- Niveau de marne brèchique, plus ou moins ocre de 80 cm

- Banc calcaire de 60 cm

- Banc calcaire de 60 cm

- Niveau de marne brèchique, de 135 cm

- Banc calcaire de 40 cm

- Banc calcaire de 30 cm

Echantillon K1

Microfaciès (Pl. III, Fig. 3) : biomicrite / wakestone avec bioturbation

Bioclastes : ostracodes, miliolidés, débris de tests de mollusques (dont des gastéropodes)

Banc calcaire, plus ou moins ocre, de 40 cm et très riche en orbitolines

Echantillon K2

Microfaciès (Pl. III, Fig. 4) : biomicrite à biomicrosparite / packstone

Bioclastes : orbitolines cassées et abîmées, débris de tests divers

- Banc calcaire de 40 cm et très riche en orbitolines

Echantillon K3

Microfaciès (Pl. IV, Fig. 1) : biosparite/packestone, présence d’oxydes de fer

Bioclastes : miliolidés, orbitolines cassées et abîmées, Orbitolina (Mesorbitolina) lotzei

Schroeder, 1964 (Planche VI, Fig. 5)

- Banc calcaire d’1 m

- Banc calcaire gris. de 20 cm

- Banc calcaire de 30 cm

Echantillon K4

Microfaciès (Pl. IV, Fig. 2) : biomicrite / mudstone

٧٥ 

 

Bioclastes : Chofatella sp., autres foraminifères indéterminés, ostracodes, miliolidés, débris de

test divers (mollusques)

- Banc calcaire gris de 30 cm

Echantillon K5

Microfaciès (Pl. IV, Fig. 3) : biomicrite / packstone

Bioclastes : orbitolines cassées et abîmées, débris de tests divers (dont des gastéropodes)

- Banc calcaire gris de 50 cm riche en orbitolines

Amas d'orbitolines à la surface irrégulière du banc carbonaté (Fig.57-58), aspect de

paléorelief.

٧٦ 

 

Figure 56 : Log de Kfar Niss.

٧٧ 

 

Figure 57 : Surface irrégulière du banc (D’après Sibelle Maksoud).

Figure 58 : Amas d'orbitolines à la surface du banc (D’après Sibelle Maksoud).

Echantillon K6

Microfaciès (Pl. IV, Fig. 4) : biomicrite recristallisée / grainstone, présence d’oxydes de fer

Bioclastes : orbitolines cassées et abîmées

- Banc calcaire gris de 30 cm riche en orbitolines

٧٨ 

 

- Banc calcaire gris de 30 cm riche en orbitolines

Echantillon K8 (Planche V, Fig. 1)

Microfaciès : biomicrite recristallisée / packestone.

Bioclastes : orbitolines cassées et abîmées, gastéropodes, échinodermes

Figure 59 : Vue de l'ensemble du log (D’après Sibelle Maksoud)

2.4. Interprétation

O. (M.) lotzei déterminée dans l'échantillon K3 est une espèce connue dans l'Aptien inférieur

(Schroeder, 1975).

Dubertret attribue les terrains de la région de Kfar Niss sur la Feuille de Djezzine (1951) à

l'Aptien supérieur.

٧٩ 

 

3. Echantillons isolés

Pour la trentaine d'échantillons isolés, seuls quelques-uns ont livré des embryons :

- Qehmez, Kesserouane (Formation de Jezzine)

Echantillon SM7 Orbitolina (Mesorbitolina) sp. (Planche VI, Fig.6).

Le sous-genre Mesorbiotolina est connu de l’Aptien supérieur au Cénomanien.

Selon Dubertret, Qehmez appartient à l’Aptien inférieur.

- Mdeirej, Aley (Formation de Jezzine)

Echantillon SM12 Orbitolina (Mesorbitolina) lotzei ? Schroeder, 1964 (Planche VI, Fig.7).

Répartition stratigraphique : Aptien inférieur (Schroeder, 1975).

Dubertret date Mdeirej sur la feuille de Qartaba (1945) d’âge aptien supérieur.

- Laklouk, Jbeil (Formation de Hammana)

Echantillon LJ 7 Palorbitolina cf. lenticularis Blumenbach, 1805 (Planche VI, Fig.8).

Répartition stratigraphique : du Barrémien supérieur à la base de l'Albien inférieur

(Schroeder, 1963).

Dubertret date Laklouk sur la feuille de Qartaba (1945) d’âge aptien supérieur.

- Laklouk, Jbeil (Formation de Hammana)

Echantillon LJ7 Orbitoline indéterminée (Planche VIII, Fig.1).

Dubertret date Laklouk sur la feuille de Qartaba (1945) comme Aptien supérieur

- Torzaya, Jbeil (Formation de Hammana),

Echantillon SM2 Orbitolina (Mesorbitolina)? Sp. (Planche VIII, Fig.2).

Le sous-genre Mesorbiotolina est connu de l’Aptien supérieur au Cénomanien.

Dubertret date Torzaya sur la feuille de Jbail (1960) d’âge aptien inférieur.

- Chabrouh, Kesserouane (Formation de Sannine)

٨٠ 

 

Echantillon Chab K12 Orbitolina (Conicorbitolina) conica (D'Archiac, 1837) (Planche VII,

Fig. 3).

Répartition stratigraphique : Albien supérieur-Cénomanien moyen (Schroeder, 1975).

Selon Dubertret, Chabrouh appartient au Cénomanien.

- Mayfouk, Jbeil (Formation de Sannine)

Echantillon May10 Orbitolina (Conicorbitolina) conica (D'Archiac, 1837)

(Planche VII, Fig.4-6).

Répartition stratigraphique : Albien supérieur-Cénomanien moyen (Schroeder, 1975).

Dubertret date Mayfouk sur la feuille de Jbail (1960) d’âge Cénomanien.

٨١ 

 

Conclusion

Les espèces retrouvées dans mon matériel sont : Palorbitolina cf. lenticularis, Orbitolina

(Mesorbitolina) lotzei, Orbitolina (Mesorbitolina) texana, Orbitolina (Mesorbitolina)

subconcava, Orbitolina (Conocorbitolina) conica.

Ces espèces sont connues du Liban de l’Aptien inferieur au Cénomanien inférieur. Hormis

l'espèce Orbitolina (Mesorbitolina) lotzei et Orbitolina (Mesorbitolina) subconcava ; elles ont

toutes été reconnues au Liban par Dubertret (1955) et Saint-Marc (1974).

En ce qui concerne l’espèce lotzei : deux hypothèses sont valables.

Soit la répartition de cette espèce est à étaler de l’Aptien inferieur à l’Aptien supérieur. Soit il

faut reprendre la datation de la falaise de Blanche qui frome la limite Aptien inférieur-Aptien

supérieur.

Les données ont été insuffisantes et une campagne d’échantillonnage plus complet est nécessaire.

Donc, ce travail préliminaire doit être complété non seulement par une étude des orbitolines mais

également par celle des autres microfaunes (autres foraminifères, dasycladales) et de la

macrofaune (ostracodes, échinodermes entre autre) afin de bien comprendre le

paléoenvironement.

٨٢ 

 

Chapitre VII : Bibliographie

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Planche I

Figure 1 : microfaciès de l'échantillon DBlanche

Ain Dara, Aley

Figure 2 : microfaciès de l'échantillon D1

Ain Dara, Aley

Figure 3 : microfaciès de l'échantillon D2

Ain Dara, Aley

Figure 4 : microfaciès de l'échantillon D3

Ain Dara, Aley

1

2

Planche I

3

4

Planche II

Figure 1 : microfaciès de l'échantillon D4

Ain Dara, Aley

Figure 2 : microfaciès de l'échantillon D5

Ain Dara, Aley

Figure 3 : microfaciès de l'échantillon D7

Ain Dara, Aley

Figure 4 : microfaciès de l'échantillon D9'

Ain Dara, Aley

Planche II

1

2

3

4

Planche III

Figure 1 : microfaciès de l'échantillon D10

Ain Dara, Aley

Figure 2 : microfaciès de l'échantillon D11

Ain Dara, Aley

Figure 3 : microfaciès de l'échantillon K1

Kfar Niss, Chouf

Figure 4 : microfaciès de l'échantillon K2

Kfar Niss, Chouf

1

2

Planche III

3

4

Planche IV

Figure 1 : microfaciès de l'échantillon K3

Kfar Niss, Chouf

Figure 2 : microfaciès de l'échantillon K4

Kfar Niss, Chouf

Figure 3 : microfaciès de l'échantillon K5

Kfar Niss, Chouf

Figure 4 : microfaciès de l'échantillon K6

Kfar Niss, Chouf

1

2

Planche IV

3

4

Planche V

Figure 1: microfaciès de l'échantillon K8

Kfar Niss, Chouf

Planche V

Planche VI

Figure 1 : Orbitolina (Mesorbitolina) lotzei

Ain Dara, Aley (Formation de Jezzine), échantillon D8

Figure 2 : Orbitolina (Mesorbitolina) subconcava

Ain Dara, Aley (Formation de Jezzine), échantillon D9

Figure 3: Praeorbitolina ? sp.

Ain Dara, Aley (Formation de Jessine), échantillon D9

Figure 4 : Orbitolina (Mesorbitolina) sp.

Ain Dara, Aley (Formation de Jessine), échantillon D9

Figure 5 : Orbitolina (Mesorbitolina) lotzei

Kfar Niss, Chouf (Fornation de Jezzine), échantillon K3

Figure 6 : O. (Mesorbitolina) sp.

Qehmez, Kesserouane (Formation de Jezzine),

Figure 7 : Orbitolina (Mesorbitolina) lotzei

Mdeirej, Aley (Formation de Jezzine), échantillon SM12

Figure 8 : Palorbitolina cf. lenticularis

Laklouk, Jbeil (Formation de Hammana), échantillon LJ 7

Planche VI

1

2

3

4

5

6

7

8

Planche VII

Figure 1 : Orbitoline indéterminée

Laklouk, Jbeil (Formation de Hammana), échantillon LJ7

Figure 2 : Orbitolina (Mesorbitolina)? Sp

Torzaya, Jbeil (Formation de Hammana), échantillon SM:2

Figure 3 : Orbitolina (Conicorbitolina) conica

Chabrouh, Kesserouane (Formation de Sannine) échantillon

Chab K12

Figure 4-6 : Orbitolina (Conicorbitolina) conica

Mayfouk, Jbeil (Formation de Sannine), échantillon May10

1

2

3

Planche VII

4

5

6