ATELIER CICATRISATIONET RÉPARATION CUTANÉE...1 Atelier Cicatrisation et réparation cutanée –1er juillet Contexte La cicatrisation et la régénération tissulaire des plaies

ATELIERCICATRISATION ET RÉPARATION CUTANÉE1er juillet 2014 - Science Po Lyon

1

Atelier Cicatrisation et réparation cutanée – 1er juillet

Contexte La cicatrisation et la régénération tissulaire des plaies font intervenir un grand nombre de mécanismes moléculaires et cellulaires. Ces mécanismes de réparation dépendent de l’état général du patient et peuvent être freinés par la contamination bactérienne des plaies. Les problèmes de retard de cicatrisation peuvent entrainer des complications graves pour les patients et représentent de véritables problèmes de santé publique. De nouvelles solutions de soin sont utilisées par les équipes médicales pour favoriser la cicatrisation des plaies aigues ou chroniques avec l’utilisation de pansements, gels, biomatériaux, molécules bioactives, dispositifs médicaux et/ou outils d’ingénierie tissulaire. Cependant, les besoins médicaux dans ce domaine restent très importants et nécessiteront le développement de nouvelles stratégies innovantes de prise en charge de ces plaies. Parmi les nombreuses raisons pouvant expliquer le déficit en solutions efficaces à ce jour, le manque de modèles précliniques in vivo, in vitro et in silico pertinents et prédictifs de plaies complexes (aigues ou chroniques) ainsi que la méconnaissance des limites des modèles existants sont souvent invoqués. Objectif de l’atelier Dans ce contexte, nous mettons en place un atelier, le mardi 1er juillet, à Lyon, sur le thème de la cicatrisation et réparation cutanée. Cet atelier rassemble les industriels (PME et grands groupes), cliniciens, académiques présents dans la région Rhône-Alpes et engagés dans ce domaine. L’objectif de cet atelier est de faciliter l’émergence de nouvelles collaborations afin de développer des solutions innovantes pour lutter plus efficacement contre ce problème de santé publique. Lors de cette journée, les connaissances scientifiques actuelles sur les plaies et les processus de cicatrisation, les besoins médicaux des plaies aigues et chroniques et les principales solutions thérapeutiques innovantes en développement seront abordées en séance plénière. De nombreux modèles de plaies développés par des acteurs académiques ou industriels en Rhône-Alpes seront également mis en avant durant la matinée. L’après-midi sera organisée sous la forme de tables rondes de brainstorming pour inciter les partenariats sur deux axes prioritaires : les modèles prédictifs de plaies et les approches thérapeutiques innovantes.

2


Programme

9h30 - 10h : Accueil des participants Hall du bâtiment 10h - 13h : Séance plénière Amphithéâtre 10h Introduction

• Contexte de la construction de l’atelier et objectif Claudia Chagneau, Lyonbiopôle

10h05 Connaissances scientifiques des plaies et des mécanismes de cicatrisation

• Principales avancées scientifiques dans le domaine des plaies et de la cicatrisation cutanée Patricia Rousselle, Directeur de recherche, IBCP

10h30 Besoins médicaux

• Plaies aigues : point de vue d’un clinicien sur la prise en charge des plaies aigues et les problématiques médicales associées aux retards de cicatrisation Pr. Fabienne Braye, Chirurgie plastique et esthétique, séquelles des brûlures, HCL

• Plaies chroniques : point de vue d’un clinicien sur la prise en charge des plaies chroniques et les

problématiques médicales associées aux retards de cicatrisation Dr. Brigitte Faivre, Service de dermatologie, CHU de Besançon

11h30 Modèles de plaies

• 10 présentations flash de modèles existants dans la région Rhône-Alpes au niveau académique et industriel

Le détail des modèles est présenté pages 3 à 14 12h45 - 14h : Buffet Salle 202 14h - 16h30 : Tables rondes

Tables rondes de brainstorming pour poursuivre les échanges sur la base des présentations du matin afin de faire émerger de nouveaux projets innovants et nouveaux partenariats. La méthodologie des Tables rondes est présentée pages 15 et 16

• Table ronde N°1 : Modèles prédictifs de plaies (Salle 211) Bilan des modèles existants présentés, discussion sur les outils de caractérisation et de classification des modèles et sur de nouveaux modèles à développer.

• Table ronde N°2 : Nouvelles approches thérapeutiques innovantes (Salle 213)

Table ronde de brainstorming sur de nouvelles voies thérapeutiques à développer, combinaison des approches, quelle place pour les axes de médecine régénérative ?

16h30 -17h : Clôture Salle 202

3


Sommaire des modèles présentés

AYAWANE ................................................................................................................................... 4

Banque de Tissus et Cellules des Hospices Civils de Lyon .......................................................... 5

Institut de Génomique Fonctionnelle de Lyon (IGFL) ................................................................ 6

Laboratoire Biologie Tissulaire et Ingénierie Thérapeutique (LBTI) ........................................... 7

Laboratoire Hypoxie PhysioPathologie (HP2) ............................................................................ 8

Laboratoire Ingénierie des Matériaux Polymères (IMP) ............................................................ 9

NAMSA ...................................................................................................................................... 10

NVH Medicinal .......................................................................................................................... 11

VetAgro Sup .............................................................................................................................. 12

VOXCAN .................................................................................................................................... 13

4


AYAWANE

60 avenue Rockefeller 69008 Lyon PME Contact Latifa Dahri Correia Présidente [email protected] Tel : 06. 71. 65. 18. 01 Catégorie du modèle Modèle cellulaire Description du modèle AYAWANE est une jeune entreprise innovante qui développe des biomatériaux pour la réparation tissulaire.

Notre portefeuille « produits » est constitué d’une famille de biopolymères à base d’acide hyaluronique fonctionnalisé et de matrices type hydrogel, élaborées à partir de nos biopolymères.

Ces matrices peuvent être utilisées seules ou combinées à des cellules (souches).

Nous disposons de modèles cellulaires pour les évaluations biologiques de nos biopolymères.

Nous travaillons essentiellement avec des fibroblastes de derme humain (normaux ou autres) avec nos témoins internes (négatif et positif) pour les études de :

o Prolifération o Migration o Contraction de lattices de collagène.

mailto:[email protected]

5


Banque de Tissus et Cellules des Hospices Civils de Lyon (BTC / HCL)

Pavillon I Hôpital Edouard Herriot 69437 Lyon Cedex 03 Laboratoire académique Contact Odile Damour Responsable de la BTC/HCL [email protected] Tel : 04. 72. 11. 06. 18 Catégorie du modèle Peau reconstruite tridimensionnelle Description du modèle Modèles tridimensionnels de peau reconstruite : évolutions O. Damour1,2, A.Thépot1, M. Dos Santos1, F.M. Braye3, C.Auxenfans1,2

1 Laboratoire des substituts Cutanés, Hôpital E. Herriot 69437 Lyon, Rhône, France 2. IBCP, UMR 5305, Lyon 69367 3 Centre de traitement des brûlés, Hospices civils de Lyon, Hôpital E. Herriot, 69437 Lyon, Rhône, France Ce modèle évolutif permet de suivre la cicatrisation. En effet si l’éponge est considérée comme une plaie, la cinétique de développement de la Peau Reconstruite (PR) mime les phénomènes de la cicatrisation. Peuvent être suivies : • Au niveau du derme, la colonisation de l’éponge par les fibroblastes, leur prolifération, l’apparition des

différentes molécules de la matrice extracellulaire (MEC) du derme humain néosynthétisées par les fibroblastes, leur organisation ultrastructurale.

• Au niveau de la membrane basale, l’apparition de ses composants et leur organisation ultra structurale proche de celle de la peau humaine normale.

• Au niveau de l’épiderme, sa stratification et sa différenciation complète son épaisseur de l’épithélium très âge dépendant qui permettent des comparaisons selon l’âge des donneurs de cellules ?

Ces modèles cutanés permettent d’étudier la physiologie et la pathologie de la peau par l’utilisation de cellules normales ou pathologiques comme le processus lent et complexe de l'élastogénèse, la maturation de fibres élastiques n’y est possible qu’en interaction avec les kératinocytes. Sa durée de vie longue jusqu’à plus de 100 jours a tout son intérêt pour démontrer l’efficacité d’actifs et de produits finis notamment cicatrisants.

Ce modèle se décline en PR pigmentée, PR endothélialisée, pour tester l’activité des produits angiogéniques ou angiostatiques, les PR immunocompétentes contenant des cellules de Langerhans (CD1a+, langerine+/CD207+, et HLA-DR) dans l’épiderme et des dendrocytes (DC-SIGN+/CD209+ et HLA-DR+) dans le derme pour tester le risque sensibilisant/allergisant de nouvelles molécules. La PR adipeuse et les différents modèles d’hypoderme reconstruits ont pour but de tester à terme des actifs inhibants l’adipogénèse pour le traitement de l’obésité ou en la stimulant dans le traitement de la cachexie ou de lipodystrophies.


6


Institut de Génomique Fonctionnelle de Lyon (IGFL) ENS Lyon, UMR CNRS 5242

ENS de Lyon, 46 Allée d’Italie 69364 Lyon cedex 07 Laboratoire académique Contact Florence Ruggiero DR2 CNRS [email protected] Tel : 04. 26. 73. 13. 58 Catégorie du modèle Modèle animal Description du modèle Notre équipe s’intéresse aux fonctions des matrices extracellulaires, de leur organisation dans les tissus, à leur rôle au cours du développement et au cours du processus de réparation tissulaire. Pour répondre à ces questions, nous avons réalisé un criblage fonctionnel utilisant le modèle du poisson zèbre pour élucider la fonction de certains collagènes dits non-conventionnels dont certains sont exprimés dans la peau. Plus récemment, nous avons introduit deux nouveaux modèles de cicatrisation/régénération utilisant le poisson zèbre : un modèle de régénération qui utilise la capacité régénératrice de la nageoire caudale du poisson et un modèle de cicatrisation cutané permettant de suivre in vivo et sur animaux vivants la dynamique de ces 2 processus. Ce petit vertébré présente de nombreux avantages parmi lesquels (i) la quasi transparence des embryons qui permet leur observation directe en microscopie photonique; (ii) leur développement externe et rapide (3 jours) et leur petite taille permettant de les élever jusqu’au stade de larve dans des plaques multi-puits et de réaliser un criblage d’actifs et médicaments pendant le processus de cicatrisation, (iii) la facilité avec laquelle on peut moduler l’expression d’un gène donné (morpholino-knockdown, transgénèse). Nos poissons sont élevés sur la plateforme PRECI de l’UMS Biosciences-Gerland, accessible à tous, mais les tous nouveaux tests de cicatrisation/régénération sont pour l’instant réalisés à l’échelle de notre laboratoire.


7


Laboratoire Biologie Tissulaire et Ingénierie Thérapeutique (LBTI) UMR 5305 CNRS

7 passage du Vercors 69007 Lyon Laboratoire académique Contact Dominique Sigaudo-Roussel DR2 CNRS [email protected] Tel : 04. 37. 65. 29. 34 Catégorie du modèle Modèle animal Description du modèle L’étude a pour objet d’évaluer la cicatrisation d’une plaie chronique de type escarre obtenue par un processus d’ischémie/reperfusion. L’ischémie/reperfusion cutanée est réalisée selon un mode opératoire inspiré de la méthode décrite par Saito et al. (J Invest Dermatol, 2008,128 : 1838-51). Celui-ci consiste à bloquer la circulation cutanée de la souris par pincement entre deux aimants pendant un temps que l’on a fixé. Différents cycles de durée de compression/durée de reperfusion peuvent être appliqués pour induire une nécrose cutanée de différente sévérité.

Cette technique est réalisable dans l’équipe et permet de comprendre les mécanismes de cicatrisation spécifiquement mis en place lors d’une lésion de pression et de pouvoir tester des produits thérapeutiques ou dispositifs médicaux pour aider à la cicatrisation.

Nous réalisons aussi la technique d’excision cutanée pour l’induction d’une plaie aiguë et de la même façon que précédemment, nous faisons le suivi de cicatrisation.


8


Laboratoire Hypoxie PhysioPathologie (HP2) INSERM, Université Grenoble Alpes

INSERM U1042, Faculté de Médecine et de Pharmacie - BP170 38042 Grenoble Cedex Laboratoire académique Contact Sylvain KOTZKI Doctorant, Interne des Hôpitaux [email protected] Tel : 06. 51. 33. 83. 54 Catégorie du modèle Modèle animal Description du modèle Nous avons développé un modèle de suivi de cicatrisation de lésions sur peau fibreuse de souris pour évaluer le passage transdermique et l’effet pharmacologique de molécules administrées par voie iontophorétique. En pratique, nous induisons une fibrose cutanée sur le dos d’une souris Balb/c en injectant quotidiennement du HOCl en intradermique pendant 5 semaines (Batteux, Kavian, & Servettaz, 2011). Nous réalisons ensuite un punch de 4 à 6 mm de diamètre sur la zone fibreuse en prenant soin de prélever toutes les couches cutanées. Une capsule d’iontophorèse est sertie manuellement d’un anneau de caoutchouc de même épaisseur. Cet anneau est utilisé pour fixer la capsule à la peau par des points de suture autour de la plaie, mais également pour limiter le phénomène de cicatrisation par contraction mécanique (spécifique aux rongeurs). Pour rendre le dispositif étanche, nous comblons les interstices entre l’anneau et la peau par de la résine dentaire. Le suivi de cicatrisation est effectué par analyse de la surface de plaie à partir de photographies réalisées quotidiennement jusqu’à ré-épidermisation complète. Les photos sont directement prises à travers la surface transparente de la capsule d’iontophorèse. Pour évaluer une molécule la capsule iontophorétique est remplie de la solution à tester, et le montage est connecté à un générateur (le circuit électrique est fermé en clippant une électrode de charge opposée à la queue). Le dispositif reste fixe et étanche pendant une semaine ce qui permet de tester différentes séquences de traitement.


9


Laboratoire Ingénierie des Matériaux Polymères (IMP) UMR 5223 IMP@Lyon1 15 bd Latarjet 69220 Villeurbanne Cedex Laboratoire académique Contact Laurent DAVID PR1 [email protected] Tel : 04. 72. 43. 16. 05 Catégorie du modèle Modèle animal et autre Description du modèle Les brûlures constituent un important problème de santé publique : on dénombre 150 000 cas annuels en France, dont 7 500 graves nécessitant une hospitalisation. 60% des brûlures sont d’origines domestiques et affectent dans une très grande proportion les enfants en bas âge.

Le modèle développé ici est un modèle de cicatrisation après brulure du 3ème degré. Il permet l'évaluation de dispositifs médicaux cicatrisants sur le porc, implantées dans la zone de résection, et a permis de mettre en évidence (i) les mécanismes de cicatrisation et de colonisation cellulaire d'implants hydrogels permettant de moduler le processus de cicatrisation et (ii) évaluer la qualité des tissus reconstruits après 1 an de remodelage cutané.

En particulier, nous avons développé un distracteur cutané permettant de comparer les caractéristiques du tissu sain, cicatrisé en présence de tulle gras et cicatrisé en présence de biomatériaux hydrogels et ainsi quantifier l'impact de différentes conditions de régénération tissulaire. Ce dispositif a également été validé pour la caractérisation de la peau pour le modèle canin, et est actuellement confronté à des évaluations du comportement mécanique vrai et couplé à diverses techniques de caractérisations (ex: Raman, Diffusion des RX) pour évaluer la contribution mécanique des différentes couches cutanées.

Ce travail a été financé par la DGA (Projet d’Etudes Amont N° 01 08 03; Thèse de F. Dupasquier) et réalisé par un consortium regroupant ICE (Vetagrosup), le CRSSA (Grenoble) et IMP@Lyon 1. Certains développements sur le modèle du chien résultent d'une collaboration ultérieure entre IMP-ICE, l'Institut Jean Lamour (Equipe Physique et Plasticité) et l'Institut français des sciences et technologies des transports.


10


NAMSA 115 chemin de l’Islon 38670 Chasse sur Rhône PME Contact Catherine Tremolieres Principal Scientist [email protected] Tel : 04. 78. 07. 92. 34 Catégorie du modèle Modèle animal Description du modèle Le challenge actuel des modèles précliniques est qu’il n’existe pas de modèles animaux permettant de reproduire idéalement un processus de cicatrisation retardée tel que celui observé au niveau de plaies chroniques et/ou ulcératives chez les patients humains. De nombreux modèles de plaies chez différentes espèces animales sont disponibles et permettent d’évaluer la sécurité et la performance des produits appliqués au contact des plaies. Au-delà du temps nécessaire pour que la plaie cicatrise, les analyses macroscopiques et microscopiques des plaies permettent d’observer et de quantifier les acteurs de la cicatrisation tels que le collagène I, le collagène III, les néovaisseaux… Le but de cette rapide présentation est d’explorer les méthodes d’investigation permettant d’évaluer la qualité du tissu cicatriciel de plaies réalisées sur des modèles animaux et ainsi d’augmenter la prédictivité de ces modèles en termes de sécurité et performance des produits destinés à l’homme.


11


NVH Medicinal

57, rue Vannerie 21000 Dijon PME Contact Arnaud Lacombe Responsable partenariats [email protected] Tel : 07. 81. 41. 27. 88 Catégorie du modèle Modèle animal Description du modèle D’après une étude comparative, les souris db/db représentent le meilleur modèle (comparé aux souris Akita et celles traitées à la streptozotocine) pour étudier les effets de nouveaux traitements et formulations sur la cicatrisation chez le diabétique car :

• Elles sont génétiquement modifiées donc elles sont toutes diabétiques, • Leur diabète se produit naturellement avec un taux de glucose constant et reproductible entre

animaux de même âge, • Elles reproduisent un diabète de type II qui représente 90 % des patients diabétiques, • Leur temps de cicatrisation est long (25 jours) permettant d’évaluer de façon plus fine les effets et

mécanismes d’action de nouveaux traitements et formulations sur les différentes phases de la cicatrisation telles que la formation du tissu de granulation, la prolifération cellulaire et la néovascularisation.

Dans ce modèle d’excision, le derme et l’épiderme sont éliminés à l’aide d’un punch 6 mm sans traverser la couche graisseuse sous-jacente sur le dos de la souris (1 à 2 plaies/souris) reproduisant ainsi une plaie externe aigue. On obtient des plaies de taille reproductible.

Chez la souris, la cicatrisation se fait par contraction de la plaie alors que chez l’homme, elle se fait par ré-épithélialisation et formation du tissu de granulation. Ce modèle d’excision a donc été amélioré en mettant une « attelle » en silicone autour de la plaie. Ainsi, ce modèle est très proche de celui de l’homme et permet une extrapolation plus fiable des résultats.


12


VetAgro Sup Campus Vétérinaire de Lyon 1, Avenue Bourgelat 69280 Marcy l’Etoile Laboratoire académique Contact Thierry Roger Directeur adjoint à la Valorisation [email protected] Tel : 04. 78. 87. 25. 33 Catégorie du modèle Modèle animal Description du modèle Modèles de plaies cutanées aiguës pouvant être superficielles, réalisées au dermatome et d’une profondeur permettant d’exclure l’intervention des follicules pileux dans l’épidermisation, ou profondes, réalisées chirurgicalement.

Modèles de plaies chroniques, superficielles ou profondes, chez le porc ou le rat diabétique.

Des modèles spontanés, chez le chien, sous la forme de plaies chroniques infectées, et le cheval, espèce prédisposée au développement de plaies chroniques exubérantes, peuvent utilisés dans le cadre du Centre Hospitalier et d’Enseignement Vétérinaire de VetAgro Sup.

Dans tous les cas, l’intérêt du porc est la similarité de sa peau avec celle de l’homme. De plus, les plaies peuvent être de grande taille et nombreuses.

L’évolution des plaies peut être suivie par l’examen clinique, avec prise de photos ou réalisation de calques à partir desquels est déterminée la surface épidermisée, l’examen histopathologique de biopsies cutanées itératives, avec possibilité d’immunohistochimie, l’imagerie non invasive (échographie, imagerie OCT [en projet]), la qualité de la cicatrisation pouvant, quant à elle, être évaluée par distraction cyclique ou la mesure de la perte insensible en eau, du pH, du taux d’hydratation, de son élasticité et de sa souplesse.

Ces modèles permettent de tester des biomatériaux (plaies profondes) ou des substances favorisant la cicatrisation, formation du tissu de granulation et épidermisation.

Le lieu d’expérimentation est l’Institut Claude Bourgelat, de VetAgro Sup.

Certains de ces modèles sont développés grâce à un projet ayant reçu un financement ANR, en association avec le Dr Patricia Rousselle, de l’IBCP et en collaboration avec des partenaires privés.


13


VOXCAN

1, avenue Bourgelat 69280 Marcy l'Etoile PME Contact Marc Vandamme Directeur d’Etude [email protected] [email protected] Tel : 04. 78. 19. 50. 58 Catégorie du modèle Modèle animal Description du modèle Les solutions d’imagerie in vivo que Voxcan propose peuvent être utilisées et s’adapter avec les modèles de plaies existants (aigues ou chroniques) et permettent de suivre l’évolution de la cicatrisation ou de la réparation cutanée au cours du temps, sans influer sur les modèles et sans actes invasifs (biopsies), tout en réduisant le nombre d’animaux nécessaire à l’obtention de résultats. 1. Etude d’infections pouvant survenir au niveau de la plaie • Imagerie optique et bactéries bioluminescentes : Suivi de l’infection au niveau des plaies par inoculation de bactéries bioluminescentes permettant ainsi d’évaluer la réponse à de nouvelles molécules à visée antibactériennes.

2. Suivi de processus impliqués dans les mécanismes de cicatrisation • Imagerie optique et souris transgéniques bioluminescentes : Suivi de la mise en place de l’angiogenèse et de l’inflammation par imagerie de bioluminescence en utilisant des souris transgéniques (VEGF-R2-luc ou NF-κB-luc respectivement). Ces souris, dont l’ensemble des cellules a été modifié pour exprimer la luciférase sous la dépendance du gène considéré, permettent de suivre in vivo des mécanismes impliqués dans la cicatrisation cutanée. • Imagerie optique et sondes fluorescentes spécifiques : La phase inflammatoire fait intervenir un recrutement massif de neutrophiles au niveau de la lésion. L’utilisation de sondes spécifiques permet de suivre par imagerie de bioluminescence/fluorescence l’évolution de cette phase de manière non invasive. Le suivi de l’angiogenèse par imagerie in vivo peut être également réalisé en utilisant des sondes fluorescentes commerciales.

3. Suivi de la cicatrisation sur un plan structurel • Imagerie OCT (Optical Coherence Tomography system) : Ce type d’imagerie très utilisé en dermatologie humaine permet de visualiser les différents constituants et couches de la peau avec des informations structurelles (de l’ordre de la dizaine de microns) mais également fonctionnelles (vascularisation). Son principe repose sur la réflexion d’ondes lumineuses cohérentes (laser) permettant ainsi de visualiser au cours du temps les différentes phases de la cicatrisation jusqu’à sa résolution.



14


Feuille de notes

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

15


Tables rondes (14h à 16h30) Tables rondes de brainstorming pour poursuivre les échanges sur la base des présentations du matin afin de faire émerger de nouveaux projets innovants et nouveaux partenariats permettant de répondre à ces problématiques technologiques, scientifiques et aux besoins médicaux.

• Table ronde N°1 : Modèles prédictifs de plaies (Salle 211) Bilan des modèles existants présentés, discussion sur les outils de caractérisation et de classification des modèles et sur de nouveaux modèles à développer.

• Table ronde N°2 : Nouvelles approches thérapeutiques innovantes (Salle 213)

Table ronde de brainstorming sur de nouvelles voies thérapeutiques à développer, combinaison des approches, quelle place pour les axes de médecine régénérative ?

Méthodologie des tables rondes

Composition des Tables rondes

• 15 à 20 participants (grands groupes, PME, start-up, académiques et cliniciens) Participent aux échanges et à l’identification des enjeux prioritaires, proposent des projets pour répondre aux enjeux et caractérisent le potentiel de chaque action identifiée.

• 1 ou 2 animateur(s) Facilite la compréhension des objectifs, du déroulement et des règles du jeu des tables rondes et s’assure du respect des principes clés de l’exercice.

Anime le groupe, gère les temps de parole, synthétise/reformule les propositions, challenge les participants sur les actions et leur positionnement sur la matrice.

• 1 secrétaire de séance (à désigner en début de séance) Assiste l’animateur, prend des notes synthétiques des débats (convergences/divergences, conflits

de fond, facteurs critiques évoqués, autres points particuliers).

16


Déroulement des Tables rondes • 14h : Introduction Tour de table de présentation des participants, de leurs activités et expertises.

• 14h15 : Définition des enjeux prioritaires Retour sur les présentations du matin : questions/échanges/amendement par le groupe sur le

thème de la table ronde. Synthèse des enjeux prioritaires à traiter dans le domaine.

• 15h15 : Brainstorming : identification d’actions potentielles Réflexion individuelle sur des actions potentielles à mettre en place pour répondre aux enjeux

prioritaires. Chaque participant dispose de quelques post-its pour formuler par écrit ses propositions d’actions (1 idée d’action par post-it).

Collage des réponses au tableau par chaque participant qui explicite ses réponses. Regroupement des actions similaires par grappe et reformulation des idées.

• 16h : Qualification et positionnement des actions sur la matrice selon les 2 critères suivants : Critère 1 : potentiel de chaque action (au niveau scientifique, technologique, médical,

industriel, …) • Potentiel faible : action ayant un impact limité mais qui peut constituer une étape

nécessaire pour la réalisation d’un projet plus ambitieux. • Potentiel élevé : impact stratégique pour les partenaires, permet d’avoir un leadership

dans le domaine et des retombées majeures. Critère 2 : durée de mise en œuvre

• Court terme : compétences et ressources identifiées et mobilisables rapidement. • Long terme : expertises, technologies, ressources non disponibles ou à structurer.

• 16h20 : Bilan des points clés discutés et conclusion

17


Feuille de notes

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

18


Liste des participants

ATZENI Gianluigi CTI BIOTECH

BELIN Chantal SYMATESE

BERTHET Morgane IBCP-LBTI

BLAISE Sophie CHU DE GRENOBLE

BOISGARD Anne-Sophie IBCP

BOTTIGIOLI David ASSRCI

BOUSCHBACHER Marielle LABORATOIRES URGO

BRAYE Fabienne HCL

BROSSE Jean-Charles AYAWANE

BUFFIER Marie 3D MATRIX EUROPE

CAMPREDON Aimée

CHAGNEAU Claudia LYONBIOPOLE

CHUZEL Thomas VOXCAN

CRACOWSKI Jean-Luc CIC DE GRENOBLE - INSERM

CUBIZOLLES Myriam CEA-LETI

DAHRI-CORREIA Latifa AYAWANE

DAMOUR Odile BANQUE TISSUS ET CELLULES - HCL

DAVID Laurent UCB LYON 1 / IMP

DELALANDE Charlotte LCAA DERMATECH

DELAVAL Jean-Michel NEWTONE TECHNOLOGIES

DUMONT Laure NVH MEDICINAL

DUPASQUIER Florence CYTOSIAL BIOMEDIC

FAIVRE Brigitte CHU BESANÇON

FIDALGO Luis Miguel CEA-LETI

GOUJON Catherine IMMUNOLOGIE CLINIQUE - HCL

GOUTALIER Jacques PHATOPHY

GRAMATIKOFF Marie-Hélène LACTIPS

GUDIN Simon LYONBIOPOLE

HARTMANN Daniel NOVOTEC

HULMES David CNRS

KEMMERICH Florian OLYMPUS BIOTECH

KOTZKI Sylvain CHU GRENOBLE

LACOMBE Arnaud NVH MEDICINAL

LAGRANGE Vincent CICAPLUS

LAMBERT Elise IGFL - UMR CNRS 5242

LARGUIER Jean Sylvain RCTS

LE GOFF Sandrine LBTI/IBCP

MADDENS Stéphane VETBIOBANK

MAGNETTO Sandrine DRRT RHONE-ALPES

METRAL Elodie LAB. SUBSTITUTS CUTANES - HCL

MOALI Catherine CNRS

PACARD Elodie RESCOLL

PAGNON Aurélie SOCIETE NOVOTEC

PIN Didier VETAGRO SUP

ROGER Thierry VETAGRO SUP

ROUSSELLE Patricia IBCP

ROUSTIT Matthieu CIC DE GRENOBLE

ROUX Laetitia LST

RUGGIERO Florence IGFL - UMR CNRS 5242

SAINT GIRONS

Pierre NEOMEDLIGHT

SEROUL Pierre NEWTONE TECHNOLOGIES

SIGAUDO-ROUSSEL

Dominique UMR5305

TAYOT Jean-Louis KHORIONYX

TEOLI Mathilde LYONBIOPOLE

TREMOLIERES Catherine NAMSA

VANDAMME Marc VOXCAN

VEYSSEYRE Hugo LYONBIOPOLE

VINCENT Estelle LYONBIOPOLE

ZERIS Jean-Philippe

MEDECIN

ZEROUALI Rachid NAMSA

www.lyonbiopole.com

LYONBIOPOLEBâtiment Domilyon – 321, avenue Jean Jaurès, F – 69007 LyonT : +33 (0)4 72 76 53 30 – F : +33 (0)9 55 91 30 [email protected]

FOUNDERS AND BOARD MEMBERS

REPRESENTING PUBLIC RESEARCH REPRESENTING PRIVATE COMPANIES

BOARD MEMBERS

STATE AND LOCAL GOVERNMENTS SUPPORTS

Documents

ATELIER CICATRISATIONET RÉPARATION CUTANÉE...1 Atelier Cicatrisation et réparation cutanée –1er juillet Contexte La cicatrisation et la régénération tissulaire des plaies