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MÉTHODES ANALYTIQUES POUR ÉTUDES
TOXICOLOGIQUES
Marlène Lacroix 26/01/2012
Source d’exposition
ANALYTIQUE DANS LES ETUDES TOXICOLOGIQUES
2
AbsorptionDistributionMétabolismeElimination
Effets biologiques
Evaluation de la contamination :
Matrices environnementales (sols, air, eaux, aliments…)
Etude du contaminant et des ses métabolites dans
l’organisme : Matrices biologiques (sang, tissus,
urines, fèces…)
Etude de biomarqueurs :Endogènes (Hormones, Acides
aminés, Lipides…) ou exogènes dans matrices biologiques
3
LES TECHNIQUES ANALYTIQUES PRINCIPALES
Immunochimique(Elisa, RIA,
Chemiluminescence)
Chromatographique
(HPLC, GC, CE)
4
DOSAGE IMMUNOCHIMIQUE : PRINCIPE
Principe basé sur la reconnaissance spécifique antigène – anticorps
Traceur Dosage avec compétition
Dosage sans compétition
Radiomarqué Radioimmunoassay
(RIA) Immunoradiometric
assay (IRMA)
Enzyme Enzymoimmunoassay
(EIA)
Enzyme-labeled immunosorbent assay
(ELISA)
Fluorescent Fluoroimmunoassay
(FIA) Immunofluorometric
assay (IFMA)
Luminescent Luminoimmunoassay
(LIA) Immunoluminometric
assay (ILMA)
2 méthodes de dosage : Réactifs en excès (dosage sans compétition) Réactifs limitant (dosage avec compétition)
Classification des méthodes de dosage :
5
Reconnaissance spécifique antigène – anticorps
Plaque 96 Puits
1. Introduction des anticorps
2. Introduction de l’échantillon
3. Liaison de la molécule d’intérêt avec l’anticorps
Anticorps
Molécules à doser
Autres Molécules
DOSAGE IMMUNOCHIMIQUE SANS COMPÉTITION
6
Reconnaissance spécifique antigène – anticorps
Plaque 96 Puits
Anticorps
Molécules à doser
Autres Molécules
1. Introduction des anticorps
2. Introduction de l’échantillon
3. Liaison de la molécule d’intérêt avec l’anticorps4. Lavage, retrait des molécules non liées
DOSAGE IMMUNOCHIMIQUE SANS COMPÉTITION
7
Plaque 96 Puits
1. Introduction des anticorps
2. Introduction de l’échantillon
3. Liaison de la molécule d’intérêt avec l’anticorps4. Lavage, retrait des molécules non liées
5. Ajout d’un 2ème anticorpsAnticorps
Molécules à doser
Anticorps de détection
DOSAGE IMMUNOCHIMIQUE SANS COMPÉTITION
DOSAGE IMMUNOCHIMIQUE SANS COMPÉTITION
8
Plaque 96 Puits
1. Introduction des anticorps
2. Introduction de l’échantillon
3. Liaison de la molécule d’intérêt avec l’anticorps4. Lavage, retrait des molécules non liées
Anticorps
Molécules à doser
Anticorps de détection
5. Ajout d’un 2ème anticorps
6. Lavage et retrait des anticorps en excès
L’anticorps de détection peut être radiomarqué ou fluorescent
9
1. Un anticorps secondaire lié à une enzyme, se lie à l’anticorps de détection
Anticorps
Molécules à doser
Anticorps de détection
Anticorps secondairelié à une enzyme
DOSAGE IMMUNOCHIMIQUE SANS COMPÉTITION
Cas des dosages ELISA : Enzyme-Labeled ImmunoSorbent Assay
10
1. Un anticorps secondaire lié à une enzyme, se lie à l’anticorps de détection
PRINCIPE ELISA
2. Un substrat de l’enzyme est ajouté et l’enzyme le converti en une forme détectable (colorée ou fluorescente)
Anticorps
Molécules à doser
Anticorps de détection
Anticorps secondairelié à une enzyme
Substrat
11
1. Un anticorps secondaire lié à une enzyme, se lie à l’anticorps de détection
PRINCIPE ELISA
2. Un substrat de l’enzyme est ajouté et l’enzyme le converti en une forme détectable (colorée ou fluorescente)
Anticorps
Molécules à doser
Anticorps de détection
Anticorps secondairelié à une enzyme
Substrat
Substrat converti
12
Réponse
du s
ignal
Concentration
DOSAGE IMMUNOCHIMIQUE SANS COMPÉTITION
Interprétation des résultats :
Réponse du signal quantifiée par spectrométrie (UV, Fluorescence…) ou par compteur de radioactivité : compteur β (H3…) , compteur γ ( I125…)
Domaine quantifiable
Dosage sans compétition :
Intensité du signal proportionnelle à la concentration de la substance à doser
13
DOSAGE IMMUNOCHIMIQUE AVEC COMPÉTITION
Anticorps (limitant)
Antigènes à doserAntigènes marqués (en excès)
14
DOSAGE IMMUNOCHIMIQUE AVEC COMPÉTITION
Anticorps (limitant)
Antigènes à doserAntigènes marqués (en excès)
14
Réponse
du s
ignal
Concentration
Réponse du signal quantifiée par spectrométrie (UV, Fluorescence…) ou par compteur de radioactivité : compteur β (H3…) , compteur γ ( I125…)
Domaine quantifiable
Dosage avec compétition :
Intensité du signal inversement proportionnelle à la concentration de la substance à doser
MÉTHODES CHROMATOGRAPHIQUES :PRINCIPE
15
Pompes
A B
Colonne Détecteur
Injecteur
Bille de silice greffée
High Performance Liquid Chromatography (HPLC)
UNE HISTOIRE D’AFFINITÉ …
Phase stationnaire
Analytes
Phase mobile
Détecteur
Chromatogramme
temps
Inte
nsit
é16
Polaires
PolaireApolaire Phase directe
UNE HISTOIRE D’AFFINITÉ …
Phase stationnaire
Analytes
Phase mobile
Détecteur
Chromatogramme
temps
Inte
nsit
é17
Polaires
PolaireApolaire Phase directe
UNE HISTOIRE D’AFFINITÉ …
Phase stationnaire
Analytes
Phase mobile
Détecteur
Chromatogramme
temps
Inte
nsit
é18
Apolaires
ApolairePolaire Phase inverse
DÉTECTEURS
Caractérisés selon leur sélectivité et leur sensibilitéLes plus répandus pour analyse de biomolécules: UV et Fluo
Faisceau lumineux à λ dans ultraviolets
Excitation de la
molécule
Détection UV
Limite de quantification de
l’ordre µg/mL
Émission de la lumière
Détection Fluorescence
Limite de quantification de
l’ordre ng/mLSensibilité x1000
19
Spectromètre de masse
Ionisation des molécules Formation des charges
Séparation des ions m/z produits
Ex: Electrospray
Comptage des ions Amplification du signal
Traitement informatique
Ex: Trappe d’ion
Ex : Quadripôle
Source Analyseur Détecteur
20
Source electrospray (ESI)
Sonde electrospray
Cône
Sortie de colonne
Ionisation des molécules en sortie de colonne
21
VERS L’ANALYSEUR…
O-
O
O CH3
O
OHO
O CH3
O
+ H+
Mesure le rapport m/z d’une molécule m = masse monoisotopiquez = charge
Exemple 1 : Aspirine (acide acétylsalicylique)
9 atomes de Carbone (mC = 12)8 atomes d’Hydrogène (mH = 1)4 atomes d’Oxygène (mO = 16)
maspirine = 9 x12 +8 x1 + 4x16 = 180
Milieu basique
chargée <0
Rapport m/z = 179/1 = 179
m/z
Abondance relative %
179
massif isotopique
z = 1
22
R
H+
Exemple 2 :Mesure le rapport m/z d’une molécule
Dérivé de vancomycine
Formule : C80H87Cl3F3N11O24
Masse monoisotopique = 1750Plusieurs sites basiques
Spectre de masse :
Chargé 1xm/z = 1750+1 =1751
Chargé 2xm/z = (1750+2)/2 = 876
Chargé 3xm/z = (1750+3)/3 = 584
H+
23
Exemple : Analyseur quadripolaire
quadripôle
24
Avec un triple quadripôle
Cellule de collision
« MS » simple
« SIM » sélection d’ion
« MS/MS » fragmentation
« MRM » mode pour la quantification
Mode d’analyse
Q1 Q2 Q3Source Détecteur
25
Appareil de référence pour études quantitatives
Mode d’analyse
ס « MS » simple
« SIM » sélection d’ion
« MS/MS » fragmentation
« MRM » mode pour la quantification
Q1 Q2 Q3
ions
+ Spécifique
- Spécifique
Les quadripôles laissent passer tous les ions
Applications en bioanalyse :
Études de pureté
Quantification (concentration de l’ordre du µg/mL) 26
Mode d’analyse
« MS » simple
« SIM » sélection d’ion
« MS/MS » fragmentation
« MRM » mode pour la quantification
Q1 Q2 Q3
ions
+ Spécifique
- Spécifique
Le premier quadripôle sélectionne un ion à un m/z défini
Applications en bioanalyse :
Quantification
Screening de molécules Concentrations µg/mL 27
Mode d’analyse
« MS » simple
« SIM » sélection d’ion
« MS/MS » fragmentation
« MRM » mode pour la quantification
Q1 Q2 Q3
Ions
+ Spécifique
- Spécifique
Le premier quadripôle sélectionne un ion à un m/z défini
Énergie de collision : gaz inerte (argon)
Fragmentation dans le deuxième quadripôlePassage des ions fils dans le troisième quadripôle
Ion « père »
Ions « fils »
Applications en bioanalyse :
Études structurales(métabolomique, protéomique…)
Quantification (+ sensible que MS ou SIM)
« MS/MS » fragmentation
28
Mode d’analyse
« MS » simple
« SIM » sélection d’ion
« MS/MS » fragmentation
« MRM » mode pour la quantification
Q1 Q2 Q3
Ions
+ Spécifique
- Spécifique
Le premier quadripôle sélectionne un ion à un m/z défini
Énergie de collision : gaz inerte (argon)
Fragmentation dans le deuxième quadripôleSélection d’un ion fils dans le troisième quadripôle
Ion « père »
Ions « fils »
Applications en bioanalyse :
Quantification
Screening de molécules Concentrations ng/mL
29
Couplage LC/MS
Spectromètre de masse utilisé comme détecteur
Chromatogramme
Temps
Inte
nsit
é
ΣSpectres de masse
Ab
on
dan
ce r
ela
tive %
Rapport m/z
30
31
AVANTAGES – INCONVÉNIENTS
Immunochimie Chromatographie
Méthodes rapides Méthodes sensibles Forte capacité
d’échantillon Utilisation facile
Méthodes sensibles LC/MS spécifique Dosages de plusieurs
molécules en une analyse
Pas toujours sélectives Dosage 1 molécule à la
fois Elaboration difficile
Purification échantillon nécessaire
Durée analyse Coût appareillage élevé
32
APPLICATION : ÉTUDES TOXICOCINÉTIQUE/TOXICODYNAMIE
Administration
Réponse biologiqueProfils de
concentration
Toxicodynamie
Dose
Toxicocinétique
Quantification du contaminant (et
métabolites)
Etudes de biomarqueur
0
1
10
100
1000
10000
0 50 100 150 200 250 300
Time (h)
Co
nce
ntr
atio
n (
ng
/mL
)
1
10
100
1000
10000
0 6 12
0
1
10
100
1000
10000
0 50 100 150 200 250 300
Time (h)
Co
nce
ntr
atio
n (
ng
/mL
)
1
10
100
1000
10000
0 6 12
0
2
4
6
44 46 48 50 52 54 56 58
1
10
100
1000
Collecte Analyse Toxicocinétique Toxicodynamie
33
ADMINISTRATION Produit chimique, produit naturel isolé, etc.
Choix d’un solvant d’aministration Documenter la stabilité du produit Attention aux substances peu solubles Verifier les doses administrées (analytique)
Produit de formulation Essai pilote
Doses commerciales (produits pharmaceutiques) Peu être inexacte Impuretés (± 5%) Se référer à la directive pour les produits pharmaceutiques
Good Manufacturing Practice (GMP) Vérifier les doses administrées (analytique)
Mode d’administration Perfusion, Bolus…. Doses simples, multiples Voie d’administion (IV reference, orale….)
A définir dans le protocole expérimental
34
STRATÉGIE DE PRÉLÈVEMENT
Un bon prélèvement Ponction ou cathéter (prélèvement sanguin) Site de prélèvement (veine, artère…) Temps de prélèvement (durée, cycle circadien, …)
Un bon traitement ou préparation des spécimens Sang total, plasma, serum… Tubes de collecte (anticoagulant, type de tube…) Conditions de centrifugation Filtration (urines)
Une bonne conservation pour s’assurer de la stabilité des substances et de leurs métabolites Température de conservation (-20°C, -80°C…) Durée de conservation avant analyse
Pour chaque spécimen collecté il faut garantir :
A définir dans le protocole expérimental
ANALYSE ET VALIDATION DE MÉTHODES
35
Valeurs des concentrations les plus fiables possibles
Sélectivité/spécificité Linéarité Exactitude Précision (répétabilité/reproductibilité) Sensibilité Stabilité
PARAMÈTRES FONDAMENTAUX
0
1
10
100
1000
10000
0 50 100 150 200 250 300
Time (h)
Co
nce
ntr
atio
n (
ng
/mL
)
1
10
100
1000
10000
0 6 12
0
1
10
100
1000
10000
0 50 100 150 200 250 300
Time (h)
Co
nce
ntr
atio
n (
ng
/mL
)
1
10
100
1000
10000
0 6 12
Certifie que la méthode est appropriée pour une utilisation routinière
Guidance for Industry Bioanalytical Method Validation, U.S. Department of Health and Human Services, Food and Drug Administration, Center for Drug Evaluation and Research (CDER), Center for Veterinary Medicine (CVM), May 2001
http://www.labcompliance.com/info/links/methods/guidelines.aspx.
Texte de Référence :
SÉLECTIVITÉ/SPÉCIFICITÉ
T (min)
Rép
onse
Aire interférence < 5% LOQ
Aire à LOQ
Définitions :
Sélectivité : Capacité à différencier et quantifier un analyte en présence d’autres substances dans la matrice
Spécificité : Propriété de la méthode analytique de convenir exclusivement à l’analyte avec la garantie que le résultat ne provient que de l’analyte. (absence interférence)
Exemple :
36
Linéarité : courbe de calibration
Définition : Rapport entre les concentrations connues et les réponses analytiques expérimentales (observées).
Objectif : Déterminer les concentrations des échantillons
SI
Analyte
Chromatogramme :
Utiliser un standard interne et utiliser le
ratio :
37
Origine de l’erreur : Précision et exactitude
o Erreur systématique (non aléatoire) Biais Impossible de le corriger C’est l’exactitude (accuracy)
o Erreur aléatoire On peut l’évaluer avec des statistiques
C’est la précision
Illustration avec des cibles
Méthode précise et exacte
Méthode peu précise et exacte
Méthode précise et biaisée
Méthode peu précise et biaisée
38
Mesure de l’exactitude
o Comparaison entre moyenne des concentrations calculées et valeur théoriqueExactitude (%) = 100 x
Moy Cpréd - Cnom
Cnom+100
Critères d’acceptabilité :85 % < Exactitude <115 %
X
Points QC « Quality Controle » 5 QC à 3 niveaux de
concentrations:(Bas (3*LOQ), Milieux, Haut)
o L’exactitude d’une méthode analytique est l’étroitesse de l’accord entre la moyenne d’une série de concentration obtenue par le modèle et la concentration réelle de l’analyte.
39
Mesure de la précision
o Pour une précision intra-jour et/ou inter-jour sur plusieurs concentrations : Analyse de variance (ANOVA)
Critères d’acceptabilité :CV < 15 %
Points QC « Quality Controle » 5 QC à 3 niveaux de
concentrations Précision intra-jour (répétabilité) Précision inter-jour
(reproductibilité) Evaluation sur 3 jours Calculée avec le coefficient de
variation (CV%)
o La précision d’une méthode analytique mesure l’écart de chaque mesure individuelle par rapport à la moyenne des mesures d’un volume d’échantillon unique et homogène
X1 X2
CV % = Écart typeMoyenne
X 100
40
Sensibilité : LOD et LOQDéfinition : o la limite de détection (LOD) est la plus petite concentration de
l’analyte pouvant être détectée et différencier du bruit de fond. En général, elle est évaluée à 3 x le bruit de fond du signal.
o la limite de quantification (LOQ) est la plus petite concentration de l’analyte pouvant être quantifiée avec une exactitude et une précision appropriée.
LOD
Domaine d’analyse :
LOD LOQ
Non détectable
Domaine détectable
Domaine quantifiable
Mesure de la LOD :
Injection de six blancs matrices et mesure de la réponse
Calcul de la concentration en retour moyenne x 3 = LOD
Mesure de la LOQ :
Injection de 5 points de LOQ et calcul des concentrations
Critère d’acceptabilité : CV < 20 % et exactitude entre 80 et 120 %
41
Stabilité
Critère d’acceptabilité :
Il n’y a pas de valeurs réglementaires
Stabilité des solutions mères et filles
Stabilité à cours terme
Stabilité à long terme
Cycle de congélation-décongélation
Stabilité post – extraction
On s’autorise une variation de 15%
On s’autorise une variation de 5%
La stabilité de l’échantillon doit être évaluée à toutes les étapes précédent l’analyse.
42
Dosage en routine
Chaque jour de dosage :
1 gamme + 2 séries de QC à trois niveaux de concentrations par jour.
1 série valide la gamme du jour et une série en fin de dosage valide les échantillons
Critère d’acceptation :
75% des points de la gamme doivent avoir une variation ± 15% par rapport à leur valeur nominale (sauf à la LOQ ± 20%)
2 QC sur 6 QC peuvent être au-delà de ±15% de variation (mais pas au même niveau de concentration)
43
EXEMPLE : ETUDE TOXICOLOGIQUE DU FIPRONIL
44
Cl Cl
NN
NH2
S
O
F F
F
NF
F
F
Fipronil : Insecticide à usage phytosanitaire ou vétérinaire
Interdit en France en 2004
Métabolite principal : Fipronil sulfone (-SO2CF3)
Potentiel perturbateur endocrinien : Effet sur hormones thyroïdiennes
Substance vétérinaire la plus commercialisés au
monde
Risque pour la santé humaine lié à l’exposition au fipronil?
EXEMPLE : ETUDE TOXICOLOGIQUE DU FIPRONIL
45
Réponse biologiqueProfils de
concentration
Toxicodynamie
Dose
Toxicocinétique
Evaluer les effets du fipronil et de son métabolite sur les hormones thyroïdiennes
Objectif :
Administration IV ou VO Fipronil
Fipronil sulfoneSolvant
Rats THX + T3 (SC)Cathétérisés
Protocole :
Dosage Fipronil et métabolite
par LC/MS
IV : Paramètres TK (t1/2, CL…)VO : Biodisponibilité
Plasma 6 jours (IV)9 jours (VO)
10 pts/cinétique
Administration IP
Thyroxine (T4) à chaque groupe
Dosage T4 et métabolites par
LC/MS
Dosage T4 par
RIAPlasma 24H
8 pts/cinétique
Gavage 14 jours
Fipronil Fipronil sulfone
Solvant
Réponse biologique : Clairance et métabolisme
T4
46
EXEMPLE : ETUDE TOXICOLOGIQUE DU FIPRONIL
A: voie intraveineuse B: voie orale
Fipronil sulfone
Fipronil Fipronil
Fipronil sulfone
Résultats TK :
Fabs ≈ 1 quelque soit la molécule
A: T4 totale
B: T4 libre
*
*
**
**
47
EXEMPLE : ETUDE TOXICOLOGIQUE DU FIPRONIL
* P < 0.05** P < 0.01
* P < 0.05** P < 0.01
Résultats TD (dosage RIA) :
48
EXEMPLE : ETUDE TOXICOLOGIQUE DU FIPRONILRésultats TD (dosage LC/MS) :
Permet de doser la T4 et ses métabolites
Temps (Hr)Temps (Hr)
Temps (Hr)
Co
nc
en
tra
tio
ns
pla
sm
atiq
ues
(n
g/m
L)
Co
nc
en
tra
tio
ns
pla
sm
atiq
ues
(n
g/m
L)
Co
nc
en
tra
tio
ns
pla
sm
atiq
ues
(n
g/m
L)
T4
T2
T3 Dernière SC T3
Modification du profil de la T4 et de ses métabolites en présence
de Fipronil ou de Fipronil Sulfone
Importance d’évaluer les molécules mères mais aussi les métabolites
formés