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Programme et Horaire de la journée de l’Axe · 13h55 Analyse calorimétrique différentielle (DSC) et Analyse thermogravimétrique (TGA), Mahmoud Omar 14h05 Services offerts par

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Programme et Horaire de la journée de l’Axe

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Membres du comité organisateur

Comité étudiant

Pascale Desjardins, M.Sc

Candice Diaz, B.Sc

Anne-Sophie Gary, M.Sc

Alexe Grenier, M.Sc

Marie-Christine Lambert, M.Sc

Gaëtan Le-Bel, M.Sc

Aurélie Louit, M.Sc

Natalia Milaniak, M.Sc

Geneviève Rioux, M.Sc

Thiéry de Serres-Bérard, B.Sc

Kim Santerre, M.Sc

Alexane Thibodeau, B.Sc

Professeurs

Marc-André Fortin, Ing., Ph.D.

Lucie Germain, Ph.D.

Solange Landreville, Ph.D.

Comité de direction de l’Axe Médecine Régénératrice

Directrice: Véronique Moulin, Ph.D.

Co-direction : Marc-André Fortin, Ing., Ph.D.

Co-direction: Patrick Rochette, Ph.D.

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Programme de la Journée

9h10

9h15

Mot d’ouverture par la Directrice de l’axe, Pr. Véronique Moulin

Mot du Pr. Serge Rivest, Directeur du Centre de Recherche du CHU de

Québec

9h40 Plateforme iPSC Québec : Reprogrammation cellulaire, Laurie Martineau

9h50 Imagerie par résonance magnétique, Myriam Laprise-Pelletier

10h Imagerie de rayons-X par tomographie axiale computationnelle CT, Théophraste Lescot

10h10 Tomographie par émission de positons (PET), Mariia Kiseleva (en anglais)

10h20 Bioluminescent, Chemiluminescent and Fluorescent Imaging using the IVIS Lumina II, Vilber Lourmat Fusion Fx7 and GE Typhoon Trio+ instruments, Todd Galbraith

10h30 Pause-café

10h45 Conférencière invitée: Dr. Talagas, PhD

Caractérisations des zones de contact entre kératinocytes épidermiques et neurones sensoriels

12h Repas

13h15 Plateforme de caractérisation mécanique et micromecanique, Pr. Diego Mantovani.

13h25 Spectroscopie des photoélectron-X (XPS), Pr. Marc-André Fortin ou Pascale Chevallier

13h35 Microscopie électronique à balayage (MEB), Jean-François Sauvageau ou Pr. Marc-André Fortin

13h45 Microscopie de force atomique (AFM), Pr. Marc-André Fortin ou Pascale Chevallier

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13h55 Analyse calorimétrique différentielle (DSC) et Analyse thermogravimétrique (TGA), Mahmoud Omar

14h05 Services offerts par la plateforme de génie tissulaire, Carolyne Simard-Bisson.

14h15 Plateforme d’évaluation des propriétés mécaniques des organes reconstruits en laboratoire, Alex Larose

14h25 Station SciTive/HypoxyCool : Imitation de conditions de culture physiologiques, Julie Bérubé

14h35 Pause-Café

14h50 Plateforme d'imagerie confocale CMDGT: présentation de l'imagerie confocale sur tissus épais et technique de clarification des tissus, Dominique Mayrand

15h Utilisation du confocal pour de l’imagerie 3D, Mathieu Thériault

15h10 Cytométrie en flux, Sébastien Larochelle

15h20 Plateforme du CUO-Recherche consacrée à l’étude du profilage de l’expression génique, Gaëtan Le-Bel

15h30 «Network Analyst» et «Ingenuity Pathway Analysis» pour l’analyse de vos données de profilage génique, Sergio Cortez Ghio

15h40 Discussions avec les présentateurs de techniques / plateformes

16h-19h 4@7 à la Voie Maltée

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Conférencière invitée

10h45 – 11h45

Dr. Matthieu Talagas, MD, PhD

Université de Bretagne Occidentale,

CHRU de Brest, France

Caractérisations des zones de contact entre kératinocytes

épidermiques et neurones sensoriels

La douleur, la température et le prurit sont, selon la conception classique, exclusivement

perçus par les terminaisons nerveuses intra-épidermiques. Alors que des études récentes

ont montré que les kératinocytes contribuent également à la perception sensorielle, les

mécanismes sous-tendant la communication entre kératinocytes et ternimaisons

nerveuses intra-épidermiques restent inconnus. Notre travail, basé sur une triple

approche morphologique, moléculaire et fonctionnelle à partir de cocultures de

kératinocytes et de neurones sensoriels, ainsi que de biopsies cutanées, nous a permis

de montrer que les kératinocytes dialoguent avec les neurones sensoriels par

l’intermédiaires de synapses. Ces structures, qui possèdent les caractéristiques

morphologiques et moléculaires des synapses chimiques, transmettent des informations

des kératinocytes aux neurones sensoriels. Le renouvellement permanent de l’épiderme

implique l’existence de structures spécifiques, douées d’une haute plasticité. Ceci a

probablement participé à retarder leur identification, contribuant au maintien du concept

selon lequel les terminaisons nerveuses passent librement entre les kératinoctes. En

assurant une communication sélective entre les kératinocytes et les neurones sensoriels,

les synapses constituent le pivot de récepteurs sensoriels à deux sites, l’un neuronal et

l’autre kératinocytaire.

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Programme par thématique

Thématique : iPSC Plateforme iPSC Québec : Reprogrammation cellulaire, Laurie Martineau

Résumé : Grâce à l’expression forcée de 4 facteurs de transcriptions embryonnaires (OCT4,

SOX2, KFL4 et c-MYC), une cellule somatique peut retourner à l’état pluripotente, c’est-à-dire,

être capable de s’auto-renouveler et se différencier en toutes les cellules des 3 feuillets

embryonnaires (endoderme, mésoderme et ectoderme). Ceci permet, entre autre, la modélisation

de maladies dont les cellules ciblées sont difficilement, voir même impossible à obtenir via une

biopsie. Ces cellules induites à la pluripotence (iPSC) peuvent aussi servir au développement et

au criblage des drogues ainsi qu’à la médecine personnalisée.

La plateforme iPSC Québec se spécialise dans l’isolation et la reprogrammation de cellules

somatiques en iPSC à partir de différentes sources (peau, sang, urine, etc.). Elle offre aussi la

possibilité d’une formation pour l’utilisation de ces cellules.

Son objectif est d'automatiser la production d'iPSCs afin d'en réduire les coûts et d'augmenter la

production, deux facteurs qui limitent leur utilisation.

La plateforme vise également à l'élaboration de procédures standardisées pour la culture 3D de

neurones, cellules musculaires et cardiaques.

9h40

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Thématique : Imagerie du petit animal pour ingénieur biomédical et analyse des capacités motrices et sensitives Panorama des techniques d’imagerie du petit animal pouvant être transférées du petit animal à l’humain pour les techniques IRM, CT, TEP, et ultrasons.

IRM - L’imagerie par résonance magnétique, Myriam Laprise-Pelletier Résumé: L’imagerie par résonance magnétique (IRM) est l’une tes principales techniques d’imagerie moderne, permettant la visualisation du corps entier. La technique est basée sur l’excitation des protons d’hydrogène par résonance nucléaire au moyen de radiofréquences (émissions non-ionisantes). La technique permet principalement de procéder à de l’imagerie anatomique, mais aussi fonctionnelle. Les effets de contraste dans les tissus gras, mous (cerveau, fois), et bien vascularisés (en utilisant du produit de contraste), sont particulièrement intéressants Imagerie de rayons-X par tomographie axiale computationnelle CT, Théophraste Lescot Résumé: La tomographie axiale computationnelle (CT) est basée sur l’utilisation d’un faisceau de rayons-X transmis à travers un sujet. Une caméra, ou un détecteur, détecte le signal transmis, réflétant ainsi la teneur en éléments de numéros atomiques croissants (ex. : le calcium des os atténue les rayons-X plus que le carbone et l’oxygène). Ainsi, le CT est utilisé en recherche biomédicale afin de révéler des contrastes de densité de tissus (calcification, structure squelettique, densité osseuse). Tomographie par émission de positons (PET), Mariia Kiseleva (in English) Résumé: La tomographie par émission de positons (TEP) est la technique d’imagerie permettant d’atteindre les plus hautes sensibilités de détection moléculaire. La technique est basée sur le marquage de molécules au moyen de radioisotopes émetteurs de positons. Les molécules sont injectées dans le corps, et lors de la décroissance radioactive, deux photons colinéaires sont émis (180o de trajectoire l’un de l’autre), ce qui permet à un dispositif de caméra de retracer l’origine de l’émission de ces photons. La technique est notamment utilisée pour visualiser le métabolisme du glucose, des acides aminés, l’apoptose des cellules (annexine-V), et effectuer des études de biodistribution et de pharmacocinétique de molécules et de nanoparticules.

Bioluminescent, Chemiluminescent and Fluorescent Imaging using the IVIS Lumina II, Vilber Lourmat Fusion Fx7 and GE Typhoon Trio+ instruments, Todd Galbraith Resume: An overview presentation of the capabilities, strengths and weaknesses of the optical imaging instruments available at the HEJ site CMDGT/LOEX including which instrument is best to use for different analyses techniques.

9h50

10h

10h10

10h20

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Thématique : Microscopie et caractérisation physico-chimique pour ingénieur biomédical Plateforme de caractérisation mécanique et micromecanique, Pr. Diego Mantovani. Résumé: Tout tissus, régénère ou pas, possède certaines propriétés qui lui confèrent ces fonctions physiologiques et anatomiques. Ces propriétés sont la manifestation macroscopique de sa structure et de sa microstructure. La hiérarchie des composantes est la clef de la dualité structure/propriétés. Dans cette présentation, sans rentrer dans les mécanismes, nous allons essayer de démystifier pourquoi et comment les propriétés mécaniques et micro mécaniques des tissus sains, malades ou régénérés. XPS - La spectroscopie des photoélectrons-X (XPS), Pr. Marc-André Fortin ou Pascale Chevallier Résumé: La spectroscopie des photoélectron-X (XPS) est l’une des techniques de catactérisation physico-chimiques les plus complètes. Des rayons-X d’une énergie bien précise sont utilisés pour générer des photoélectrons dont l’énergie cinétique peut être mesurée. Cette énergie est caractéristique de chaque élément chimique. La technique permet de mesurer très précisément et de façon quantitative les rapports d’éléments chimiques à 5-10 nm en surface, ainsi que de réfléter l’environnement chimique des atomes (déplacement chimiques). MEB - La microscopie électronique à balayage (MEB), Jean-François Sauvageau ou Pr. Marc-André Fortin Résumé: La microscopie électronique à balayage (MEB) est l’une des techniques de microscopie les plus répandues en sciences de matériaux et en biologie. Un faisceau d’électrons est utilisé pour balayer une surface, et l’impact de ce faisceau sur les échantillons permet de générer des électrons secondaires et des électrons rétrodiffusés. L’énergie des électrons (1 – 30 keV) est asocié è une longueur d’onde permettant de scruter des informations beaucoup plus fines que ne le permet la microscopie optique en lumière visible. Le mode environnemental permet de visualiser des échantillons qui contiennent encore une fraction d’eau ou de molécules non désorbées. AFM - Microscopie de force atomique (AFM), Pr. Marc-André Fortin ou Pascale Chevallier Résumé: La technique d’AFM permet entre-autres de mesurer la topographie de surfaces à échelle nanométrique. Elle est basée sur l’utilisation d’une pointe entrant en interaction avec un échantillon, soit par contact direct, soit en imposant une oscillation sur celle-ci. En biomatériaux, la technique peut être utilisée pour les mesures de rugosité et de dureté des surfaces.

13h15

13h25

13h35

13h45

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DSC/TGA - L’analyse calorimétrique différentielle (DSC) et l’analyse thermogravimétrique (TGA), Mahmoud Omar Résumé: L’analyse calorimétrique différentielle (DSC) et l’analyse thermogravimétrique (TGA) permettent de révéler les phénomènes de transition survenant dans les matériaux lors de changements de température. En DSC, le flux thermique différentiel d’un échantillon, permet de caractériser si un changement de matériau consomme ou émet de la chaleur (exhothermique ou endothermique). En TGA, la montée en température permet de désorber l’eau, et progressivement de dégrader toutes les composantes organiques; cette technique permet d’indiquer le type de polymère en présence, et le rapport entre produit organique et produit inorganique.

13h55

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Thématique : Génie tissulaire et culture tissulaire

Services offerts par la plateforme de génie tissulaire, Carolyne Simard-Bisson Résumé: La plateforme de génie tissulaire a été mise en place en 2016. Elle offre, entre autres, du milieu de culture (DME et DME-Ham), des additifs, des formations en culture cellulaire et un service d’histologie (inclusion, coupe et coloration de tissus). Plateforme d’évaluation des propriétés mécaniques des organes reconstruits en laboratoire, Alex Larose Résumé: Aperçu des techniques et appareils utilisés au LOEX sur le site de l'HEJ pour l'analyse des propriétés mécaniques des biomatériaux (e.g. avec l'ElectroPuls E1000 d’Instron, etc.).

Station SCI-tive/HypoxyCOOL: Imitation de conditions de culture physiologiques, Julie Bérubé Résumé: La double station SCI-tive de Baker Ruskinn permet de travailler dans deux chambres indépendantes ayant des atmosphères contrôlées différentes. Il est possible de faire varier les niveaux d’oxygène et de dioxyde de carbone ainsi que le taux d’humidité des chambres. L’intérieur est suffisamment spacieux pour y contenir les cellules (incubateur) mais également des appareils d’analyses (ex. microscope). L’antichambre a son propre contrôle de température et d’oxygène, qui permet la communication entre les deux chambres ainsi que l’entrée à atmosphère contrôlée du matériel. L’HypoxyCOOL de Baker Ruskinn accélère le conditionnement des milieux pour la culture cellulaire tout en maintenant la stérilité de ceux-ci. Lorsqu’utilisés ensemble, la SCI-tive est l’HypoxyCOOL forment un système fermé et complètement régulé en oxygène (Plateforme FCI de la Pre Solange Landreville).

14h05

14h15

14h25

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Thématique : Microscopie

Plateforme d'imagerie confocale CMDGT: présentation de l'imagerie confocale sur

tissus épais et technique de clarification des tissus, Dominique Mayrand

Résumé : De par leur complexité grandissante, les substituts produits par génie tissulaire

nécessitent de nouvelles approches afin de visualiser l’organisation structurale et

cellulaire de ces tissus. La clarification optique est une technique simple d’exécution et

peu dispendieuse. Lorsque combinée à la microscopie confocale, elle permet de

caractériser les tissus épais comme la peau et le tissu adipeux (Mayrand and Fradette

(2018) Methods in Molecular Biology, https://doi.org/10.1007/978-1-4939-7799-4_8). Peu

utilisée dans le domaine du génie tissulaire, cette technique est pourtant d’une aide

précieuse en analyse quantitative et elle est irremplaçable pour obtenir des images

tridimensionnelles des structures ciblées. Durant cet atelier, nous discuterons des

concepts de clarification, d’acquisition d’images et de quantification en s’appuyant sur des

exemples obtenus à l’aide du microscope LSM700 de Zeiss (Plateforme FCI de la Pre

Julie Fradette).

Utilisation du confocal pour de l’imagerie 3D, Mathieu Thériault

Résumé : La microscopie confocale est une technologie permettant de réaliser des

images d’immunofluorescence sur un plan focal défini. Ce faisant, à partir d’une série

d’images d’un même secteur, mais à des profondeurs distinctes, il devient possible de

générer des images 3D. Le microscope confocal LSM800 du CUO possède le module

complémentaire « 3dxl » développé spécifiquement pour la réalisation d’images 3D. Dans

cette présentation, nous ferons un survol des applications et des résultats que l’on peut

obtenir avec cette technologie (Plateforme FCI de la Pre Stéphanie Proulx).

14h50

15h

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Thématique : Outils de biologie cellulaire et moléculaire Cytométrie en flux, Sébastien Larochelle Résumé: Les caractéristiques techniques des différents instruments de cytométrie en flux disponibles au CMDGT seront détaillées au cours de la présentation. De plus, nous aborderons les options disponibles aux chercheurs désirant utiliser ces instruments

Plateforme du CUO-Recherche consacrée à l’étude du profilage de l’expression génique, Gaëtan Le-Bel

Résumé: La plateforme permet de caractériser et quantifier les ARN messagers (le transcriptome) de manière à révéler, dans un tissu, dans un état et à un moment donné du développement, le niveau d'expression des gènes dont ils sont issus. Cela se traduit concrètement par extraire les ARNm, déterminer la qualité et la concentration des ARNm à l’aide d’un bioanalyzer, réaliser les biopuces à ADN, scanner les lames, extraire les données via Feature Extraction pour ensuite les analyser grâce au logiciel Arraystar. Les données peuvent être illustrées sous forme de nuages de point, de cartes thermiques et de diagramme de Venn.

«Network Analyst» et «Ingenuity Pathway Analysis» pour l’analyse de vos données

de profilage génique, Sergio Cortez Ghio

Résumé: Je vous présente deux outils bio-informatiques intéressants pour faire une

analyse complète de vos données de profilage génique. «Network Analyst» est une

plateforme web qui permet de facilement déterminer quels gènes sont statistiquement

significativement différentiellement exprimés dans une condition expérimentale

donnée. «Ingenuity Pathway Analysis» est un logiciel qui permet de générer des

interactomes fonctionnels en plus d'offrir d’autres fonctions excitantes pour une analyse

ontologique avancée.

15h10

15h20

15h30

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Le comité étudiant vous remercie pour votre participation et remercie tous les

présentateurs de la journée ! Nous souhaiterions recevoir les bons coups des membres de l’Axe (gagnants de bourses de recherche et de voyage, récents articles publiés, gagnants de différents concours et présentations) afin de les publiciser sur les réseaux sociaux. Vous pouvez envoyer vos bons coups, idéalement avec photos, aux différents responsables des réseaux sociaux pour le comité étudiant qui sont répartis dans les différents sites. À HSS : [email protected] et [email protected] À HEJ : [email protected] et [email protected] À HSFA : [email protected]

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