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Structure et morphologie de l’amylose synthétisée in vitro par l’amylosaccharase
Gabrielle Potocki-Veronese, Cécile Albenne, Pierre Monsan, Magali Remaud-SimeonINSA Toulouse –Ingénierie Enzymatique Moléculaire
U.M.R. CNRS 5504, U.M.R. INRA 792
Jean-Luc Putaux, Danielle Dupeyre
CERMAV Grenoble, Structure et Propriétés des Glycomatériaux
Alain Buleon
INRA Nantes, Unité de Physicochimie des Macromolécules
Amylose
Amidon amylose
amylopectine
Métabolisme de l’amidon : biosynthèse de l’amylose
GBSSI
Amidon phosphorylase
ADP-Glc + α-1,4-Glcn ADP + α-1,4-Glcn+1
Glc-1-P + α-1,4-Glcn Pi + α-1,4-Glcn+1
OH
H
H
O
CH2OH
HO OHH
OH
H
H
O
CH2OH
HO OHH
OH
H
H
O
CH2OH
HO OHH
OH
H
H
α(1-4)
Mw ~10 6 -107OH
H
H
O
CH2OH
HO OHH
OH
H
H
O
CH2OH
HO OHH
OH
H
H
O
CH2OH
HO OHH
OH
H
H
α(1-4)
Mw ~10 6 -107
OH
H
H
OHO OHH
OH
H
H
O
CH2OH
HO OHH
OH
H
H
O
CH2OH
HO OHH
OH
H
H
CH 2
H
2CHOH
HH
H
H
HO
OH
O
Ø
cluster
D ~1 6P 5 ( nm)
α(1-6)
α(1-4)
Mw ~10 -10
OH
H
H
OHO OHH
OH
H
H
O
CH2OHCH2OH
HO OHH
OH
H
H
O
CH2OHCH2OH
HO OHH
OH
H
H
CH 2
H
2CHOH
HH
H
H
HO
OH
OH
2CHOHCHOH
HH
H
H
HOHO
OHOH
O
Ø
cluster
D ~1 6P 5 ( nm)D ~1 6P 5 ( nm)P 5 ( nm)
α(1-6)
α(1-4)
Mw ~107 -108
Structure de l’amylose
(Imberty et al., Starch/Staerke, 1991)
- Amylose et amylodextrines recristallisent sous forme d’agrégats ou de gelsen fonction du DP et de la concentration- Le type cristallin résultant (A ou B comme dans l’amidon natif) dépend de la température, du précipitant et du DP - Refroidissement de solutions aqueuses d’amylose ou amylodextrines : type B
(Imberty et al., J. Mol. Biol., 1988)
0 5 10 15 20 25 30
I
Angle de diffraction
Type B
Type A
Diffraction des rayons X
Modèles 3-D
Amylosaccharase : du saccharose à l’amylose
Saccharose
Amylosaccharase
fraction insoluble amylose
fraction soluble
L’amylosaccharase pour la synthèse d’amylose in vitro
Amylosaccharase
Saccharose : agro-ressource abondante et peu coûteuse
Expression recombinante chez E.coli800 mg/litre de culture
Synthèse d’amylose sans amorce
Enzyme pure (chromato. affinité TAG)
GBSSI, Amidon phophorylase
GBSSI : ADP-Glc Amidon phosphorylase : Glc-1-P
GBSSI recombinante inactive
GBSSI : amylopectine du grainAmidon phosphorylase : α-glucanes
L’amylosaccharase pour la synthèse in vitro d’amylose
Objectifs
- Synthèse d’ α-glucanes de structure et propriétés contrôlées
- Systèmes bio-mimétiques de la biosynthèse de l’amidon
contrôle de la synthèse d’amylose
- Éléments structuraux impliqués dans la spécificité pour le saccharose
et la transglucosylation
- Mécanisme catalytique de polymérisation
- Structure du polymère
Du saccharose à l’amylose
F G-Ftrehalulose
F
G-Fturanose
Isomerisation
G-enzymesaccharose
GF + enzymeF
G2
G3maltotriose
G
G2maltose
PolymerisationExtrémité non-réductriceMécanisme non-processif
Gn
Gn+1
Amyloseinsoluble
Maltooligosaccharides solubles
G
HydrolyseH2O
glucose
Caractérisation structurale de l’amylose
EnzymologieContrôle de la synthèse
MicroscopieMorphologie
Approche pluridisciplinaire
Diffraction des rayons XCristallinité
Analyse Enthalpique DifférentielleThermostabilité
Biochimie analytiqueTaille, rendements, cinétiques
Conditions réactionnelles
Concentrations initiales en saccharose100 mM (réaction A100)300 mM (réaction A300)600 mM (réaction A600)
Température 30°C
Incubation 16-28 h consommation totale du saccharose
Rendements finaux
24 g/l
3 g/l
050
100150200250300350400
S P S P S P
rési
dus
gluc
osyl
es in
corp
orés
(mM
)
amylose insolubleisomères du saccharoseDP>25 DP4-DP25DP2-DP3glucose
A100 A600A300
3 g/l
24 g/l
54 g/l
Analyse de la fraction insoluble
4 20 30 40 50 60 70 80 90 100 112-0,005
0,020
0,040
0,060
0,080
0,100 GABY 040510 #29 [modified by dionex] D24h concentré ECD_1µC
min
HPAEC
DP4
DP90
Mécanisme de polymérisation non-processif : forte polydispersité
Chromatographie d’exclusion de taille
A100 A300 A600DP 58 45 35
Polydispersité 3.0 2.6 2.3
Faibles concentrations en saccharose longues chaînes diluéesHautes concentrations en saccharose courtes chaînes concentrées
Morphologie : MET
Réseaux
Unités élémentaires 10-15 nm
Agrégats
A100 A300 A600
X 200 000 X 5 000 X 5 000
Morphologie : MEB
Particules ovoïdes
Agrégats de particules 1-2 µm
A300 A600
Particules isolées 4-5 µm
X 3 000
Morphologie : microscopie optique
Croix de MalteOrganisation sphérulitique
A300 A600
Biréfringence intense et homogène1 orientation par particule
X 500
Diffraction des rayons X
% crystallinité
5 10 15 20 25 302 thetas
DiffractedIntensity
5 10 15 20 25 305 10 15 20 25 305 10 15 20 25 302 thetas
DiffractedIntensity
Taille latérale(nm)
94
83
45 8.9
16.0
11.8
A600
A300
A100
DP
35
45
58
Type B
Analyse Enthalpique Différentielle
Tm↑ DP↑
Traitement thermique 5 min 90°C
0 80 120 160 200
T (¡C)
A100
A300
A600
Endothermic Flux
40
Traitement thermique
Crystallinité augmente de 30 %
5 min 90°C
5 10 15 20 25 302 Thetas
A600-TT
A600-NTT
A100-TT
A100-NTT
DiffractedIntensity
Pourquoi des structures si différentes ?
Cinétiques de précipitation et de polymérisation
- turbidimétrie des milieux de synthèse
- capacité de liaison à l’iode
- cinétique d’apparition des produits
Turbidité
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
3,5
4
4,5
0 10 20 30
Reaction time (h)
Turb
idity
(OD
600
nm
)
A100A300A600
2 mécanismes de précipitation :-A100 : précipitation progressive des plus longues chaînes diluées-A300, A600 : précipitation soudaine des petites chaînes concentrées
CTL A100 A300 A600
[chaînes DP>3]19 g/l
8 g/l
36 g/l
Polymérisation et précipitation
Temps de réaction
[saccharose] 100 mM
[saccharose] 600 mMMaltooligosaccharides
x2
1 h0.4 h
Interactions inter-chaînesprécipitation
17 hDP 58
DP 39DP 35
10 hDP 60
réseaux
agrégats
λmax
DP 642 h
λmax
précipitation
λmax
DP 642 h
Conclusion
Synthèse in vitro d’amylose
Concentration en saccharoseTaille, morphologie, cristallinité
Polydispersité élevée / DP 35-58 ≠ amylose naturelleIngénierie de l’amylosaccharase
- enzyme thermostable- ‘super-polymerase’
2 morphologies réseaux (longues chaînes diluées)agrégats ovoïdes (courtes chaînes concentrées)
Forte cristallinité de type B amylose résistante
Design d’amylose : thermostabilité, solubilité, résistance à l’hydrolyse enzymatique contrôlées
Merci !
INSA ToulouseIngénierie Enzymatique Moléculaire
Pierre Monsan Magali Remaud-Siméon
Cécile Albenne
INRA Nantes
Alain BuleonBruno Pontoire
Joëlle Davy
CERMAV Grenoble
Jean-Luc PutauxDanielle Dupeyre