49_cris

7/26/2019 49_cris

1/9

Prosiding Seminar Nasional Inovasi Teknologi Pertanian Spesifik Lokasi,

Banjarbaru 6-7 Agustus 2014| 435

PERKEMBANGAN PENGGUNAAN TEKNIK KULTUR JARINGAN

PADA TANAMAN KENTANG (Solanum tuberosumL.)

Chris Sugihono1dan Agus Hasbianto

2

1Balai Pengkajian Teknologi Pertanian (BPTP) Maluku Utara

Komplek pertanian kusu no.1 Sofifi-Kota Tidore Kepulauan;2Balai Pengkajian Teknologi Pertanian (BPTP) Kalimantan Selatan

Jl. P. Batur Barat No. 4 Banjarbaru, Kalimantan Selatan

Email:[email protected]

ABSTRAK

Kentang (Solanum tuberosum L.) adalah tanaman sayuran dataran tinggi yang termasuk

family Solanaceae yang merupakan salah satu pangan utama dunia setelah padi, gandumdan jagung. Tantangan dalam pengembangan kentang kedepan adalah penyediaan propagul

secara cepat, massal, murah, dan bebas penyakit maupun virus serta dihasilkannya kultivar

baru yang spesifik dalam fungsionalnya serta toleran terhadap cekaman biotik maupun

abiotik. Teknik kultur jaringan sudah banyak digunakan untuk mengembangkan kentang.

Induksi umbi mikro dan stek mikro merupakan salah satu teknik mikropropagasi kentang.

Sedangkan dalam rangka menghasilkan kultivar baru maka dilakukan teknik seleksi in vitro

untuk seleksi kultivar toleran kekeringan, cekaman NaCl. maupun mangan, hibridisasi

somatik, dan rekayasa genetika untuk menghasilkan kultivar yang tahan hama penggerek

umbi (tuber moth).

Kata kunci: kentang, kultur jaringan, mikropropagasi, benih, pemuliaan

Pendahuluan

Kentang (Solanum tuberosum L) adalah tanaman sayuran dataran tinggi yang

termasuk family Solanaceaeyang merupakan salah satu pangan utama dunia setelah padi,

gandum dan jagung karena kelebihannya dalam mensuplai kurang lebih 12 vitamin esensial,

mineral, protein, karbohidrat, dan zat besi serta didukung dengan rasanya yang enak

(Rubatsky dan Yamaguchi, 1995). Produksi kentang di Indonesia tahun 2008 mencapai

1,071 jt ton atau meningkat sebesar 6,7% dibanding tahun 2007 dengan tingkat

produktivitas sebesar 16,7 ton/ha. Namun demikian produksi kentang tersebut hanya dapatmemenuhi 8 % kebutuhan nasional yang mencapai 9 ton per tahun. Konsumsi kentang di

Indonesia terdiri dari 93,5% kentang segar dan 6,5% kentang olahan (french fries, chip, dan

tepung). Sentra produksi kentang saat ini berada di 9 Provinsi yaitu Jabar, Jateng, Jatim,

Sumut, NAD, Sumbar, Jambi, Sulsel, dan Sulut. Namun demikian pemanfaatan lahan untuk

budidaya kentang masih sangat rendah yaitu masih kurang dari 2 % dari total luas areal

potensial yang mencapai 11,3 juta ha (Kementan, 2010).

Meskipun potensi permintaan kentang yang cukup tinggi ditunjang dengan potensi

ketersediaan lahan yang cukup luas, namun pengembangan dan peningkatan peningkatan

produksi kentang berjalan lambat, hal tersebut disebabkan oleh beberapa faktor seperti

saingan pasar dari Cina, Taiwan, dan Australia; modal usaha yang dibutuhkan cukup tinggi
mailto:[email protected]:[email protected]:[email protected]:[email protected]

7/26/2019 49_cris

2/9

Chris Sugihono dan Agus Hasbianto : Perkembangan penggunaan teknik kultur jaringan

pada tanaman kentang | 436

mengingat tanaman kentang termasuk yang kebutuhan input tinggi, hasil output tinggi,

tetapi risiko juga tinggi; hama penyakit yang potensial menyerang kentang cukup banyak;

dan penggunaan bibit kentang bermutu yang masih rendah (Wattimena, 2000).

Tantangan dalam pengembangan tanaman kentang kedepan adalah merubah tanaman

kentang dari high input, high ouput, dan high riskmenjadi high input, high output, dan lowrisk melalui kultivar kentang yang toleran cekaman biotik dan abotik dan memproduksi

propagul kentang elit. Saat ini penggunaan teknik kultur jaringan telah banyak

dikembangkan untuk menghasilkan bibit kentang dalam jumlah banyak, waktu yang singkat,

bebas hama, penyakit, dan virus, tidak tergantung musim, kebutuhan bahan awal yang

sedikit, bibit yang dihasilkan bersifat seragam dan sama seperti induknya yang dapat dipakai

sebagai sumber perbanyakan (true to type), dan biaya penyediaan bibitnya relatif murah

dibandingkan bibit impor (Wattimena et al., 1983; Wattimena, 1986). Perbanyakan kentang

secara in vitro dapat dilakukan melalui tunas mikro dan umbi mikro. Umbi mikro memiliki

beberapa keunggulan dibandingkan dengan tunas mikro antara lain mudah ditangai, dapat

ditransportasikan dalam jarak jauh tanpa pengurangan daya berkecambah serta lebih tahan

bila dipindahkan ke media non aseptik (Wattimena, 1983).Tantangan lainnya adalah pengembangan kultivar baru kentang yang spesifik untuk

berbagai keperluan seperti di luar negeri dimana ada kultivar untuk kentang segar, kentang

olahan (chip, french fries, dan kentang industri/tepung). Selain itu juga adaptif untuk

lingkungan yang spesifik seperti iklim basah, kering, high input maupun low input. Teknik

kultur jaringan juga sudah banyak digunakan untuk menghasilkan kultivar baru yang tahan

terhadap cekaman biotik maupun abiotik, baik melalui induksi variasi somaklonal, seleksi in

vitro, maupun fusi protoplas. Makalah ini bertujuan untuk memberikan deskripsi tentang

perkembangan penggunaan teknik kultur jaringan untuk keperluan mikropropagasi maupun

untuk menghasilkan kultivar baru.

Kultur Jaringan Untuk Mikropropagasi Kentang

Secara klonal tanaman kentang dapat diperbanyak dengan umbi bibit, umbi mini,

true potato seed (TPS), umbi mikro, maupun stek mikro. Tujuan dari perbanyakan mikro

kentang adalah memproduksi sejumlah besar bahan tanaman dengan gen identik, produksi

tanaman bebas virus, produksi senyawa metabolit sekunder (solasodine pada kentang),

perbaikan tanaman (manipulasi jumlah kromosom, polinasi in vitro, penyelamatan embrio)

dan pelestarian plasma nutfah (Wattimena, 1992). Menurut Wattimena (2000) penggunaan

bibit mikropropagasi harus mempunyai 4 kriteria yaitu bibit mikropropagasi tersebut sangat

dibutuhkan, harus menguntungkan baik dalam produksi propagulnya maupun sistembudidaya, sistem distribusi yang memenuhi persyaratan kualitas dan kuantitas, dan dapat

beradaptasi terhadap sistem transportasi dan penanganan.

Perbanyakan kentang secara in vitr o

Penelitian tentang mikropropagasi kentang sudah banyak dilakukan baik di dalam

maupun di luar negeri. Hasil penelitian Khadiga et al. (2009) di Sudan menghasilkan

protokol dalam meregenerasi kentang secara in vitro pada berbagai kultivar kentang.

Perlakuan terbaik yang dihasilkan adalah pada kultivar Almera dengan menggunakan

eksplan buku (node) pada media MS + 3mg/L TDZ + 0,1 mg/L NAA berhasil menginduksi

rata-rata 5,4 tunas/eksplan. Kemudian induksi akar dilakukan dengan media MS+ 1 mg/L

7/26/2019 49_cris

3/9



IBA yang menghasilkan 35 akar/tunas. Selanjutnya plantlet berhasil 100% diaklimatisasi di

rumah kaca.

Gambar 1. Mikropopagasi kentang kultivar Almera secara in vitro (a) regenerasi tunas

(b) induksi akar (c) aklimatisasi di ruang kultur (d) pertumbuhan tanaman di

rumah kaca

Penelitian lainnya dilakukan Mohammed dan Alsadon (2009) yang mempelajari

pengaruh ventilasi dan konsentrasi sukrosa terhadap pertumbuhan dan anatomi daun pada

mikropogasi plantlet kentang kultivar Sandy. Eksplan yang digunakan adalah single node.

Media yang digunakan adalah media dasar MS bebas hormon yang ditambahkan dengan

thiamine 100 mg/L, nicotinic acid 50 mg/L, pyridoxineHCl 50 mg/L, glycine 200 mg/L,

myo-inositol 100 mg/L dan agar 7 g/l (BDH Laboratory Supplier, England). Hasil

penelitiannya menunjukkan bahwa konsentrasi sukrosa secara signifikan meningkatkan

bobot plantlet, bobot basah tunas, dan kadar klorofil daun. Selain itu juga diketahui bahwa

penggunaan ventilasi vessels dengan konsentrasi sukrosa 20 g/L dalam ruang pertumbuhan

dapat membuat kultur photomixotrophic dan hasil plantlet yang sehat.Penelitian tentang mikropropagasi kentang juga dilakukan oleh Karjadi (2007) untuk

menghasilkan kombinasi terbaik ZPT kinetin, IAA, dan GA3 dalam meningkatkan

pertumbuhan plantet kentang kultivar Granola. Media yang digunakan adalah media dasar

MS + 30g gula; 0,l mg GA3; l00ml air kelapa dan 6g agar per liter. Hasilnya ternyata tidak

terdapat interaksi dari kombinasi ketiga hormon tersebut. Penelitian penggunaan ZPT juga

dilakukan oleh Sajid (2009) yang meneliti pengaruh Thidiazuron (TDZ) pada

mikropropagasi kentang kultivar Desiree dan Cardinal. Eksplan yang digunakan adalah

tunas apikal. Media MS+TDZ 10-9

menghasilkan bobot basah dan kering plantlet paling

besar yaitu 0,543 g dan 0,0524 g pada kultivar Cardinal. Sedangkan pada kultivar Desiree

7/26/2019 49_cris

4/9



dengan media MS+ TDZ 10-10

menghasilkan bobot basah dan kering plantlet paling besar

yaitu 1,05 g dan 0,0965 g.

Masalah yang sering muncul dalam perbanyakan kentang secara in vitro adalah

kontaminasi. Syarat utama keberhasilan kultur in vitro adalah terciptanya kondisi aseptik

yaitu terbebas dari mikroorganisme. Proses sterilisasi merupakan langkah awal untukmenciptakan kondisi aseptic terutama pada eksplan yang digunakan. Hasil penelitian Badoni

dan Chauhan (2010) menghasilkan bahwa sterilisasi eksplan dengan menggunakan Sodium

Hypochlorite (NaOCl) selama 8 menit kemudian di masukkan ke dalam larutan etanol 30

detik dan dibilas dengan akuades sebanyak 2x merupakan perlakuan terbaik dan tidak

menimbulkan dampak pada eksplan dalam jangka panjang.

I nduksi umbi mikro (micro tubers)

Umbi mikro adalah umbi kecil dengan bobot basah 50-150 mg/umbi yang dihasilkan

secara in vitro (aseptik). Kriteria umbi mikro berkualitas baik adalah umbi dengan bobot

basah lebih dari 100 mg per umbi dan atau berdiameter 5-10 mm serta mempunyai bahankering lebih dari 14%. Pembentukan umbi mikro dipengaruhi oleh beberapa hal yaitu jenis

eksplan, media yang digunakan, lingkungan kultur (temperatur dan periode cahaya),

konsentrasi sukrosa, zat pengatur tumbuh (ZPT), dan metode pengumbian mikro

(Wattimena, 1992).

Berdasarkan hasil penelitian Fatima et al. (2004), induksi umbi mikro pada kentang

kultivar PARS 70 dengan menggunakan media MS dengan konsentrasi sukrosa 8% dan

eksplan buku (node) menghasilkan pembentukan tunas 100%, panjang akar 2,71 cm, jumlah

umbi mikro rata-rata 2,16 buah, bobot umbi mikro 164,5 mg/umbi dan jumlah daun rata-rata

5,71. Hasil ini lebih baik dibandingkan dengan menggunakan eksplan dari tunas pucuk

(shoot tip).

Media merupakan salah satu faktor yang menetukan keberhasilan dalam teknbikkultur jaringan. Media kultur yang memenuhi syarat adalah media yang mengandung nutrisi

makro, unsur mikro, sumber tenaga (pada umumnya sukrosa), vitamin, zat pengatur tumbuh,

dan pengkelat. Terdapat tiga jenis media dalam kultur invitro, yaitu media padat, media cair,

dan media semi padat. Hasil penelitian Sakya et al. (2003) menunjukkan bahwa penggunaan

ZPT coumarin dengan konsentrasi 45 mg/L lebih baik dibandingkan dengan aspirin pada

media MS untuk menginduksi umbi mikro kentang kultivar Atlantik. Jumlah umbi mikro

yang dihasilkan rata-rata 2,45 dengan bobot 20 mg. Tetapi hasil penelitian Warnita (2007)

menunjukkan hasil yang berbeda pada kentang kultivar Karnico. Penggunaan aspirin pada

media MS lebih baik dibanding coumarin maupun BAP dengan periode cahaya 16 jam.

Induksi umbi mikro dengan coumarin menghasilkan jumlah umbi sebanyak 6,25 dengan

bobot rata-rata 137 mg.

7/26/2019 49_cris

5/9



Tabel 1. Beberapa hasil penelitian terkait induksi umbi mikro kentang

Eksplan MediaLingkungan

kulturHasil Keterangan

Stek in

vitro

kentang

Atlantik

MS + Coumarin

45 mg/L

Periode cahaya 16

jam

Jumlah umbi

rata-rata 2,45

dengan bobot

20 mg

Sakya et al.,

2003

Nodedari

kultivar

PARS 70

MS solid agar

dengan

konsentrasi

sukrosa 8%

Suhu 270C, periode

cahaya 16 jam

dengan intensitas

2500 lux

Jumlah umbi

mikro rata-rata

2,16 dengan

bobot 164,05

mg

Fatima et al.,

2004

Stek

mikro dari

kultivarKarnico

MS agar

solid+Aspirin

Periode cahaya 16

jam dengan

intensitas 2000-3000 lux

Jumlah umbi

mikro rata-rata

6,25 denganbobot kering

137 mg

Warnita, 2007

a b

Gambar 2. Perbandingan hasil induksi umbi mikro dengan menggunakan eksplan

dari (a) nodedan (b)shoot tippada kultivar PARS 70

Stek mikro

Stek mikro berasal dari perbanyakan stek buku tunggal pada media MS padat tanpaZPT. Stek mikro dapat digunakan untuk memproduksi umbi bibit atau umbi mini. Hussey

dan Stacey (1981) menyatakan bahwa laju perpanjangan dan penebalan batang, jumlah

buku, dan morfologi tunas mikro dipengaruhi oleh panjang hari , intensitas cahaya dan

suhu. Selanjutnya Hutabarat (1994) menyatakan bahwa kondisi suhu optimum pembentukan

buku adalah 20-25C dengan penyinaran terus-menerus. Semakin lama penyinaran akan

membuat batang tunas mikro kentang semakin tebal dan pendek. Batang yang tebal dan

pendek lebih muda disubkultur daripada batang yang panjang dan kurus. Stek mikro kentang

mempunyai kemampuan multiplikasi yang sangat besar. Dari satu stek mikro bisa dihasilkan

sekitar 50-60 stek mini tergantung dari media dan pupuk daun yang diberikan (Wattimena,

2000).

7/26/2019 49_cris

6/9



Permasalahan stek mikro adalah kendala transportasi, apalagi jika jarak antara lab

kultur jaringan dan tempat aklimatisasi letaknya berjauhan. Transportasi plantlet dengan

botol kultur adalah memakan tempat dan tidak praktis, sehingga dikembangkan sistem

transportasi TAS (Toples Arang Sekam) dan TIAS (Tisu Arang Sekam). Pada sistem TAS,

plantlet dipindahkan kedalam toples yang berisi media arang sekam dan diprakondisi didalam lab selama 3 hari. Di tempat pembibitan stek mikro yang berada di toples berfungsi

sebagai stek mini, selanjutnya tiap satu minggu stek dapat dipanen sampai 8 minggu

tergantung kesuburan media yang ada di toples (Wattimena, 2000). Selain itu juga terdapat

teknik pengemasan yang dikembangkan Warnita (2006) dengan enkapsulasi tunas. Hasil

percobaan menunjukkan bahwa pemberian hormon GA3 0.10 mg/l dan spermidin dengan

konsentrasi 4.00 mg/l dapat meningkatkan saat muncul tunas dan tinggi tanaman

enkapsulasi kentang.

Perbanyakan propagul kentang bebas vir us dengan kul tur meristem

Penyakit yang disebabkan oleh virus dapat terbawa dalam umbi kentang dari satugenerasi ke generasi selanjutnya dan belum ditemukan obat pengendali virus. Pada tanaman

kentang ditemukan sekitar 50 jenis virus. Salah satu teknik yang dapat digunakan untuk

memproduksi propagul kentang bebas virus yaitu dengan kultur meristem dengan

menggunakan eksplant berupa jaringan meristematik (0,11-0,25 mm). Hasil penelitian

Sanavy dan Moeini (2003) menunjukkan pemberian NAA dan BAP serta media tanam

serbuk lumut dan pasir dengan perbandingan 4:1 adalah media yang baik untuk

pertumbuhan plantlet kentang kultivar Agria dan Marvona hasil kultur meristem. Sedangkan

plantletnya dihasilkan dengan menggunakan media MS dengan 0.25 mg/l GA3 and 0.01

mg/l NAA. Kemudian Plantlet ditumbuhkan pada suhu 250C and 16 h photoperiod dengan

intensitas cahaya 2000 selama 1 bulan.

Kultur Jaringan Untuk Perakitan Kultivar Baru Tanaman Kentang

Pengembangan kultivar baru kentang kedepan adalah untuk memenuhi kebutuhan

terhadap sisi hilir dan juga sisi produksi. Kebutuhan dari sisi hilir adalah spesifik

penggunaan untuk kentang segar dan juga kentang olahan. Sedangkan dari aspek produksi

dibutuhkan kultivar yang toleran cekaman biotik maupun abiotik. Beberapa teknik untuk

menghasilkan kultivar baru melalui kultur in vitro sudah banyak dilakukan diantaranya

adalah melalui seleksi in vitro, hibridisasi somatik/fusi protoplas, maupun melalui rekayasa

genetik.

Penelitian untuk menghasilkan kultivar baru melalui seleksi in vitro pada tanamankentang toleran kekeringan salah satunya dilakukan oleh Suharjo (2007) dengan menseleksi

12 genotipe kentang dengan agen penyeleksi PEG 8000 dengan konsentrasi 8%. Dengan

menggunakan indikator bobot kering akar, tunas, dan luas daun diperoleh genotipe Richie

yang paling toleran kekeringan. Tanaman kentang juga sangat sensitif terhadap mangan

yang terlalu berlebih sehingga bersifat toxic. Dampaknya adalah terjadinya nekrosis pada

lapisan batang. Hasil penelitian Sarkar et al. (2004) menunjukkan terdapat korelasi positif

antara konsentrasi mangan pada kentang terhadap kandungan mikronutrien Phospor pada

tanaman kentang. Semakin tinggi tingkat Mn maka kandungan P dalam tanaman semakin

berkurang.

7/26/2019 49_cris

7/9



Penelitian tentang genetika kentang juga dilakukan oleh Ni et al. (2009) yang

meneliti tentang gen pada tanaman kentang yang resisten terhadap layu bakteri dan cekaman

NaCl. Perbanyakan plantlet dilakukan secara in vitro dengan menggunakan media MS+3%

sukrosa+0,8% agar yang ditumbuhkan selama 4-5 minggu dengan kondisi periode cahaya

16 jam dengan suhu 200

C. Agen penyeleksi yang digunakan adalah inokulan bakteriPhytophthora infestans dan 200 Mm larutan NaCl. Hasilnya adalah dalah ditemukan gen

StPUB17 yang diisolasi dari daun kentang yang bersifat broad spectrum yang menyebabkan

tanaman sensitif terhadap P. infestans dan cekaman NaCl. Temuan ini kedepannya dapat

digunakan untuk perakitan kultivar baru kentang yang toleran layu bakteri dan cekaman

NaCl. Penelitian rekayasa genetika lainnya dilakukan oleh Kumar et al. (2010) yang

mengembangkan kentang transgenik yang berasal dari kultivar Kufri Badshah dengan

momidifikasi gen cry1Ab yang diambil dari Baccillus thuringiensis untuk mengendalikan

serangan hama penggerek umbi.

Gambar 3. Perbandingan hasil pengujian umbi mikro kentang (A) kentang cv Kufri

Badsah sebagai kontrol dengan (B) kentang transgenik CG127 yang

diinfestasi dengan larva penggerek umbi selama 21 hari

Regenerasi tanaman merupakan salah satu komponen dalam manipulasi genetik

secara in vitro. Untuk mendapatkan tanaman hasil rekayasa genetika maka diperlukan suatu

sistem regenerasi yang berhasil meregenerasikan tanaman baru. Pada penelitian kentang

transgenik diatas juga telah dihasilkan protokol untuk regenerasi. Selain itu untuk

meregenerasikan fusi protoplas juga telah diteliti oleh Asnawati et al (2002). Hasilpenelitiannya menunjukkan bahwa media MS dengan 2x konsentrasi unsur makro yang

dikombinasikan dengan sukrosa menghasilkan tanaman in vitro yang vigor dan berdiameter

daun lebar (144 cm). Kemampuan eksplan mesofil daun dalam menginisiasi tunas

tergantung dari interaksi ZPT yang diberikan, namun secara umum media M10 (0,1 mg/l

IAA+0,5 mg/l zeatin+0,5 mg/l GA3) merupakan media yang terbaik untuk meregenerasikan

tunas yang vigor. Larutan enzim dengan komposisi 0,5% selulase Onozuka RS dan 0,05%

pektoliase; 0,05% MES; 9,1 % manitol pada pH 5,5-5,6 dapat mengisolasi protoplas paling

tinggi yaitu 46,58x105protoplas/daun pada klon BF 15 kultivar Atlantic.

7/26/2019 49_cris

8/9



Kesimpulan

Penggunaan kultur jaringan pada tanaman kentang sudah sedemikian berkembang.

Perbanyakan secara in vitro ditujukan untuk mendapatkan teknik yang efisien dan murah

harganya sehingga propagul yang dihasilkan menjadi lebih kompetitif. Kemudian teknikuntuk mentransportasikan hasil stek mikro juga bisa dilakukan dengan sistem TAS maupun

TIAS, bahkan saat ini juga sudah dilakukan dengan enkapsulasi. Sedangkan penggunaan

kultur jaringan untuk menghasilkan kultivar baru juga sudah banyak dilakukan baik melalui

seleksi in vitro maupun melalui rekayasa genetik.

Daftar Pustaka

Asnawati, G.A. Wattimena, M. Machmud, A. Purwito. 2002. Studi regenerasi dan produksi

protoplas mesofil daun beberapa klon tanaman kentang (Solanum tuberosum L).Buletin Agronomi 30 (3):87-91

Bodani, A., J.S. Chauhan. 2010. In vitro sterilization protocol for micropropagation of

Solanum tuberosum cv. Kufri Himalini. Academia Arena 2(4): 24-27

Fatima, B., M. Usman, I. Ahmad, dan I.A. Khan. 2004. Effect of explant and sucrose on

microtuber induction in potato cultivar. International Journal of Agriculture &

Biology 07(1): 63-66

Karjadi, A.K. 2007. Effect of kinetin, IAA, and GA3hormones on growth of potato plantlet.

J. Agrivigor 6(2): 100-105

Kementerian Pertanian. 2010. Statistik Pertanian.www.deptan.go.id.diakses pada tanggal 1Juli 2010

Khadiga, G. Abd Elalem, Rasheid, S. Modawi, Mutashim, M. Khalafalla. 2009. Effect of

cultivar and growth regulator on in vitro micropropagation of potato. American-

Eurasian Journal of Sustainable Agriculture 3(3):487-492

Kumar, M., V. Chimote, R. Singh, G.P. Mishra, P.S. Naik, S.K. Pandey, dan S.K.

Chakrabarti. 2010. Development of Bt transgenic potatoes for effective control of

potato tuber moth by using cry1Ab gene regulated by GBSS promoter. Crop

Protection 29 (2): 121-127

Mohamed, M.A.H., dan A.A. Alsadon. 2010. Influence of ventilation and sucrose on growthand leaf anatomy of micropropagated potato plantlets. Scientiae Horticulturae 123

(3): 295-300

Ni X., Z. Tian, J. Liu, B. Song, J. Li, X. Shi, dan C. Xie. 2010. StPUB17, a novel potato

UND/PUB/ARM repeat type gene is associated with blight resistance and NaCl

stress. Plant Science 178: 158-169

Rubatsky, V., dan M. Yamaguchi. 1995. Sayuran Dunia: Prinsip, produksi, dan gizi.

Penerbit ITB. Bandung

Sajid, Z.A., dan F. Aftab. 2009. Effect if thidiazuron (TDZ) on in vitro micropropagation of

Solanum tubersolum L cv. Desiree and Cardinal. Pak.J.Bot., 41(4): 1811-1815
http://www.deptan.go.id/http://www.deptan.go.id/http://www.deptan.go.id/http://www.deptan.go.id/

7/26/2019 49_cris

9/9



Sakya, T.A., A. Yunus, Samanhudin, U. Baroroh. 2003. The effect of coumarin and aspirin

on induction of potato microtuber. Agrosains 5(1): 19-28

Sanavy, S.A.M.M., dan M.J. Moeini. 2003. Effects of different hormone combinations and

planting beds on growth of single nodes and plantlets resulted from potato meristem

culture. Plant Tissue Cult. 13(2): 145-150

Sarkar, D., S.K. Pandey, K.C. Sud, A. Chanemougasoundharam. 2004. In vitro

characterization of manganese toxicity in relation to phosporus nutrition in potato

(Solanum tubersolum L). Plant Science 167 (977-986)

Suharjo, U.K.J. 2007. Use of polyethilene glycol (PEG) 8000 for rapid screening of potato

(Solanum tubersolum L) genotypes for water stress tolerance:III. Root and shoot

growth. Jurnal Akta Agrosia (1): 11-18

Warnita. 2007. Effect of growth media and photoperiod on potato microtuberization. Jurnal

Akta Agrosia 10(2): 167-171

Wattimena, G.A., Mc. Cown dan G. Weis. 1983. Comparative field performance of potatoes

from microculture. Am. Potato J. 60:27-33

Wattimena. 1986. Kultur jaringan tanaman kentang. Jurusan Budidaya Pertanian. Fakultas

Pertanian IPB. Bogor

Wattimena. 1992. Bioteknologi tanaman I. PAU-Bioteknologi IPB. Bogor

Wattimena. 2000. Pengembangan propagul kentang bermutu dari kultivar unggul dalam

mendukung peningkatan produksi kentang di Indonesia. Orasi ilmiah guru besar tetap

ilmu hortikultura Fakultas Pertanian IPB. Bogor. 86p

Documents

49_cris