La flore des mauvaises herbes de la Canne à Sucre ... - Cirad

Essai d’efficacité d’herbicide de post-levée EE 13 09 12de la Canne à Sucre à La Réunion
Caractérisation à partir des témoins des essais d’herbicides
2005 - 2016
Cirad - Aïda
La flore des mauvaises herbes
de la Canne à Sucre à La Réunion
2005 – 2016
2.1 Les sites d’implantation des essais .............................................................................. 2
2.1.1 Localisation .......................................................................................................... 2
2.1.3 Altitude ................................................................................................................. 3
2.1.4 Irrigation ............................................................................................................... 4
2.3 Le dispositif expérimental ........................................................................................... 4
2.4 Dimensions d’une placette élémentaire ....................................................................... 5
2.5 Les observations de la flore ......................................................................................... 5
2.5.1 Les dates d’observation ........................................................................................ 5
2.5.2 Les notations de la flore ....................................................................................... 5
3 Analyses des données ......................................................................................................... 6
3.1 Les profils écologiques ................................................................................................ 6
3.2 La constitution de la matrice des données ................................................................... 7
3.3 La répartition spatiale .................................................................................................. 7
4 Résultats ............................................................................................................................. 8
4.2 Les espèces majeures ................................................................................................... 8
4.3 Les profils écologiques .............................................................................................. 10
4.3.1 Le facteur altitude ............................................................................................... 10
4.3.2 Le facteur saison ................................................................................................. 11
4.3.3 Le facteur zone ................................................................................................... 11
4.3.4 La combinaison des facteurs .............................................................................. 12
4.4 La représentation spatiale .......................................................................................... 13
Témoins herbicide / 2005 - 2016 Page ii
4.4.1 Solanum americanum (SOLAM) ....................................................................... 14
4.4.2 Eleusine indica (ELEIN) .................................................................................... 15
4.4.3 Paspalum scrobiculatum (PASSC) .................................................................... 16
4.4.4 Setaria pumila (SETPU) .................................................................................... 17
4.4.5 Setaria barbata (SETBA) .................................................................................. 18
4.4.6 Momordica charantia (MOMCH) ..................................................................... 19
4.4.7 Desmanthus virgatus (DEMVI) ......................................................................... 20
4.4.8 Bothriospermum tenellum (BOOTE) ................................................................. 21
4.4.9 Argemone mexicana (ARGME) ......................................................................... 22
4.4.10 Lepidium didymum (COPDI) ............................................................................. 23
4.4.11 Phyllanthus spp. ................................................................................................. 24
6 Annexes ............................................................................................................................ 28
6.1 Annexe 01 : Pluviosité ............................................................................................... 29
6.2 Annexe 02 : Températures ......................................................................................... 30
6.3 Annexe 03 : Répartition du nombre d’essais par facteur ........................................... 31
6.3.1 Nombre d’essais par commune et par zone ........................................................ 31
6.3.2 Nombre d’essais par commune et par année ...................................................... 32
6.3.3 Nombre d’essais par commune et par saison ..................................................... 33
6.3.4 Nombre d’essais par commune et par altitude ................................................... 34
6.3.5 Nombre d’essais selon l’irrigation ..................................................................... 35
6.4 Annexe 04 : Echelle de notation ................................................................................ 36
6.5 Annexe 05 : La flore rencontrée ................................................................................ 37
6.5.1 Les familles représentées ................................................................................... 37
6.5.2 Liste des espèces rencontrées ............................................................................. 39
6.5.3 Fréquence et recouvrement des espèces (triées par code EPPO) ....................... 44
6.5.4 Fréquence et recouvrement des espèces (triées par fréquence) .......................... 48
6.6 Annexe 06 : L’importance relative des espèces rencontrées ..................................... 52
6.7 Annexe 07 : Graphes d’infestation ............................................................................ 54
6.7.1 pour la saison chaude (été austral) dans les Bas (S1 A) ..................................... 54
6.7.2 pour la saison chaude (été austral) dans les Hauts (S1 B) .................................. 54
6.7.3 pour la saison fraiche (hiver austral) dans les Bas (S2 A) ................................. 55
6.7.4 pour la saison fraiche (hiver austral) dans les Bas (S2 A) sans THMQU .......... 55
6.7.5 pour la saison fraiche (hiver austral) dans les Hauts (S2 B) .............................. 56
6.8 Annexe 08 : Profils corrigés sur le recouvrement moyen ......................................... 57
6.8.1 Profils corrigés sur le recouvrement moyen selon l’altitude .............................. 57
6.8.2 Profils corrigés sur le recouvrement moyen selon la saison .............................. 58
6.8.3 Profils corrigés sur le recouvrement moyen selon la zone ................................. 59
Témoins herbicide / 2005 - 2016 Page iii
6.8.4 Profils corrigés sur le recouvrement moyen selon l’altitude et la saison ........... 60
6.9 Annexe 09 : Les espèces indicatrices par combinaison de facteurs .......................... 61
6.9.1 Combinaison par 2 ............................................................................................. 61
6.9.2 Combinaison par 3 ............................................................................................. 66
6.10 Annexe 10 : Récapitulatif des profils par espèce ................................................... 68
6.10.1 Espèces les plus fréquentes (fréquence relative (FR) ≥ 10 %) ........................... 68
6.10.2 Espèces peu fréquentes (3 % < FR < 10 % ........................................................ 70
6.10.3 Espèces rares (FR ≤ 3 %). .................................................................................. 71
Témoins herbicide / 2005 - 2016 Page iv
2005 - 2016
AVANT-PROPOS
Nous tenons à remercier ici tous les agriculteurs qui ont contribué au fil des années
à l’acquisition de ces données sur la flore des mauvaises herbes en accueillant sur
leurs parcelles de canne à sucre les essais sur les herbicides.
Nous exprimons notre gratitude aux différents bailleurs de fonds et aux firmes
phytosanitaires, qui ont financé ces essais, au Cirad et à eRcane, qui ont facilité
la réalisation de ces essais, aux techniciens des Pôles canne qui ont participé aux
choix des parcelles.
Un grand merci également aux personnes qui ont bien voulu relire ce document
et y apporter des corrections et des éléments d’amélioration.
Témoins herbicide / 2005 - 2016 Page 1
2005 - 2016
1 INTRODUCTION
A La Réunion, la canne à sucre est cultivée sur une superficie de l’ordre de 23.000 ha (en 2020).
Une démarche rigoureuse de sélection variétale, conduite par eRcane, met à disposition de la
filière des variétés résistantes, ou au moins tolérantes, aux ravageurs et aux maladies potentiels
de cette culture. En complément, des démarches de lutte biologique sont menées contre des
insectes, tels que le ver blanc (Hoplochelus marginalis).
Les mauvaises herbes restent le seul bioagresseur qui nécessite une lutte directe. Si le sarclage
mécanique des cannes vierges ou le paillis de résidus de récolte dans les cannes de repousses
apportent une certaine contribution à la régulation des populations d’adventices, le sarclage
manuel et surtout le désherbage chimique restent les moyens de lutte les plus employés en
culture de canne à sucre à La Réunion.
« L’application nationale de la directive européenne 91/414/CE a conduit à la disparition des
produits les plus utilisés et, au début des années 2000 l’élargissement de la gamme des produits
homologués en culture de canne à sucre a pris un caractère d'urgence… huit produits
herbicides demeuraient alors officiellement disponibles sur canne à sucre : le diuron,
l'hexazinone, le 2,4-D, l'asulame, l’ioxynil+2,4-D, TCA, amétryne et le dalapon. Dès le début
des années 2000, le Service de la Protection des Végétaux (SPV) et la Chambre d’Agriculture
de La Réunion et par la suite le Centre de Coopération Internationale en Recherche
Agronomique pour le Développement (Cirad) en 2002 se sont associés pour anticiper cette
question à La Réunion : des essais officiels d’efficacité et de sélectivité ont été conduits en
collaboration afin de constituer les dossiers d’homologation... Cette démarche a porté ses fruits
avec l'homologation de sept herbicides pour le désherbage de la canne à sucre : le S-
métolachlore (2004), la mésotrione (2005), la pendiméthaline (2005), la combinaison S-
métolachlore + mésotrione (2006), l’isoxaflutole (2008), la métribuzine (2009) et le fluroxypyr
(2010). Dans la continuité de cette procédure, il est apparu indispensable d'élargir le
référentiel technique sur ces herbicides. A partir de 2005, un réseau d'expérimentations a été
mis en place sur l'ensemble de l'île grâce à un lourd investissement des industriels du sucre,
des distributeurs d'intrants à La Réunion, du Cirad avec la participation de la Chambre
d'Agriculture, du CTICS et d’eRcane. Ces essais d’efficacité ont pour objectif de produire des
données pour alimenter un référentiel technique adapté à la diversité des situations et aux
contraintes d'application des produits. » 1.
A partir de 2012, eRcane a pris la responsabilité de cette action, qui est agréée par le Ministère
de l'agriculture et de l’alimentation, avec l’appui financier de l’Agence française pour la
1 Marnotte P., Esther J.J, Martin J., 2010. Un réseau d’essais herbicides sur le désherbage de la canne
à sucre à La Réunion. 21ème conférence du Columa. Journées internationales sur la lutte contre les
mauvaises herbes. Dijon (France) – 8 et 9 décembre 2010. [cédérom]. AFPP Dijon
biodiversité, sur les crédits issus de la redevance pour pollutions diffuses, attribués au
financement du plan Ecophyto (ODEADOM)
Ce dispositif expérimental est basé sur des essais d’efficacité ; ceux-ci comportent pour chaque
placette 2 traitée des témoins adjacents non traités, qui servent d’éléments de comparaison pour
le développement de la flore adventice afin d’évaluer le niveau d’efficacité des modalités
testées (produit seul ou en mélange).
La flore que l’on rencontre sur ces témoins traduit le potentiel d’enherbement de la parcelle qui
accueille l’essai au moment où il est installé.
L’étude présentée ici vise à analyser les peuplements de mauvaises herbes des témoins pour
hiérarchiser l’importance relative des espèces en termes de fréquence et d’abondance et pour
caractériser leur comportement.
L’efficacité des produits herbicides testés ne sera absolument pas abordée dans ce rapport.
2 MATERIEL ET METHODE
2.1.1 Localisation
Figure 01 : Localisation des essais d’herbicides et délimitation des zones climatiques
2 Dans ce texte, le terme « placette » désigne l’unité expérimentale de base en l’occurrence les témoins
non traités. Le terme « parcelle » désigne le site de l’essai.
Au cours des 12 années d’expérimentation de 2005 à 2016, 108 essais d’herbicides ont été
implantés sur l’ensemble de la sole cannière de La Réunion dans 17 communes 3 de l’île (cf.
figure 01).
Les communes ont été regroupées en trois zones climatiques (cf. les graphes de l’annexe 01 qui
présentent la pluviométrie annuelle et la répartition de la pluviométrie mensuelle pour huit
communes, en basse altitude). La répartition des essais par zone et par commune, présentée en
annexe 03, montre des effectifs équilibrés :
40 essais dans l’Est, très arrosé (pluviométrie annuelle > 3000 mm) avec notamment
Saint-Benoit et Bras-Panon ;
29 essais dans l’Ouest, peu arrosé (pluviométrie annuelle entre 700 et 800 mm) avec
notamment Saint-Paul ;
39 essais dans le Sud, moyennement arrosé (pluviométrie annuelle entre 1400 et 2000
mm) avec notamment Saint-Pierre et Saint-Louis.
2.1.2 Epoque de l’année : les saisons
Les courbes des températures (minimales, moyennes et maximales) présentées en annexe 02,
sont établies pour quatre communes couvrant les trois zones (Sainte-Marie et Sainte-Rose à
l’Est, Saint-Paul à l’Ouest et Petite-Île au Sud, stations de basse altitude). Elles suggèrent que
celles-ci sont très semblables quelle que soit la localisation à basse altitude, hormis pour les
températures maximales dans l’Ouest (Saint-Paul) qui sont supérieures d’un ou deux degrés.
Les variations saisonnières de température permettent de distinguer globalement deux saisons :
S1 : saison chaude (été austral) : de novembre à avril (60 essais) ;
S2 : saison fraiche (hiver austral) : de mai à octobre (48 essais).
Il est possible d’affiner le découpage avec la prise en compte des saisons intermédiaires (cf.
annexe 03) :
2.1.3 Altitude
L’ensemble du gradient d’altitude a été exploré par ces expérimentations : les essais ont été
réalisés sur toute la gamme d’altitude, aussi bien au niveau de la mer qu’aux limites maximales 4
de culture de la canne (cf. tableau 01).
3 Sur les 22 communes qui composent La Réunion, il ne manque que celles où la canne est très peu
cultivée : Saint-Denis, Le Port, La Possession, Salazie, Cilaos et La Plaine des Palmistes.
Dans les analyses, Saint-Gilles, qui appartient en fait à la commune de Saint-Paul a été mise à part.
4 Dans l’Est de La Réunion, la zone cannière se limite à l’altitude de l’ordre de 500 m à cause de la
forte nébulosité des Hauts aux vents, qui gêne le développement de la canne à sucre ; dans l’Ouest,
c’est la baisse des températures qui limite la zone cannière aux environs de 1000 m. Dans le Sud, la
situation est intermédiaire entre celle de l’Ouest et celle de l’Est.
Tableau 01 : Gamme d’altitudes des localisations des essais (en m)
Est Ouest Sud
minimum 5 8 10
maximum 444 985 750
Pour l’analyse, on a soit distingué les altitudes inférieures ou supérieures ou égales à 250 m,
soit considéré un classement en trois classes d’altitude (cf. annexe 03, tableau en § 6.3.4) :
A : les Bas < 100 m (29 essais) ;
B : tranche intermédiaire de moyenne altitude entre 100 m et 300 m (41 essais) ;
C : les Hauts : > 300 m (38 essais).
2.1.4 Irrigation
Pour pallier les déficits de pluie, il est parfois nécessaire sur certaines zones de faire des
irrigations. Le tableau en annexe 03 montre que, dans le présent échantillon, les parcelles de la
zone Est n’étaient pas irriguées, alors que dans l’Ouest et dans le Sud, cette pratique est
largement utilisée (quatre parcelles de l’échantillon sur cinq dans l’Ouest et une sur deux dans
le Sud) : ceci est évidemment à mettre en lien avec la pluviosité (cf. graphe en annexe 01).
L’irrigation est majoritairement effectuée par aspersion, mais certaines parcelles sont irriguées
en goutte-à-goutte.
2.2 Implantation des essais et pratiques culturales
Dans la majorité des cas, les essais d’herbicides sont implantés sur des canne en vierge, de ce
fait les cas de parcelles paillées par les résidus de récolte sont peu nombreux, seulement 14 sur
108.
Sur chacun des essais, la culture de canne à sucre est conduite de façon uniforme sur l’ensemble
de la parcelle expérimentale selon les pratiques agricoles du planteur, que ce soit depuis la
plantation pour les parcelles en canne vierge (travail du sol, fertilisation, choix variétal, densité
de plantation) ou depuis la récolte pour les parcelles en repousse et cela jusqu’à l’installation
de l’essai.
Une fois l’essai implanté, les seules différences entre les placettes élémentaires de l’essai sont
les applications (ou non) de traitements herbicides testés.
2.3 Le dispositif expérimental
Les modalités testées dans ces essais d’efficacité sont réparties au hasard dans trois blocs. Dans
le présent dispositif, le principe du témoin semi-adjacent non traité a été retenu : une placette
non traitée sert de témoin à une 5 ou deux placettes traitées. Ce témoin prend en compte
l’hétérogénéité de la répartition des mauvaises herbes au sein de l’essai et sert d’élément de
comparaison pour les observations d’efficacité.
Le nombre de placettes témoins par essai varie entre 6 et 12 en fonction du nombre de modalités
testées.
2.4 Dimensions d’une placette élémentaire
Les placettes témoins adjacentes ont la même dimension que les placettes traitées :
longueur : 12 m ;
largeur : 3 m (qui correspond à la largeur de la rampe de pulvérisation de l’appareil
d’épandage) ;
surface d’une placette élémentaire : 36 m² ;
nombre de rangs de canne : 2 (espacés typiquement de 1,50 m).
2.5 Les observations de la flore
Les observations pour l’étude de l’efficacité des préparations herbicides portent à la fois sur les
caractéristiques de l’essai, le développement des mauvaises herbes et le comportement de la
canne à sucre. Pendant toute la durée de l’essai, ces observations sont assurées par le
responsable de l’unité d’expérimentation, parfois en binôme avec un technicien du Pôle Canne.
2.5.1 Les dates d’observation
Après l’application des produits herbicides testés, les observations régulières sur le
comportement de la flore sont réalisées typiquement
tous les 14 jours pour les essais de produits de pré-levée : D1 = 14 JAT 6, D2 = 28 JAT,
D3 = 42 JAT, D4 = 56 JAT, D5 = 70 JAT, etc. ; en fait, les notations ne démarrent que
lorsque les placettes témoins commencent à s’enherber ;
et tous les 7 jours pour les essais de produits de post-levée : D1 = 7 JAT, D2 = 14 JAT,
D3 = 21 JAT, D4 = 28 JAT, D5 = 35 JAT, etc.
Ces observations consistent
en des notations de l’enherbement des témoins, qui sont utilisées ici ;
et en des notations de l’efficacité des traitements herbicides en comparaison avec les
témoins : ces données n’ont pas été communiquées et ne sont donc pas utilisées ici.
Les observations sont conduites jusqu’à ce que les mauvaises herbes de la majorité des placettes
traitées aient atteint le stade une à deux feuilles.
2.5.2 Les notations de la flore
En préalable aux notations de l’efficacité des applications d’herbicides sur les placettes traitées,
une évaluation de la flore est effectuée sur les placettes témoins : la flore dominante est
appréciée par une notation de recouvrement en trois étapes successives, répétées à chaque
placette :
1. identification des espèces dominantes, qui correspondent aux espèces ayant une note de
recouvrement ≥ 2 ; les espèces rares (un ou deux individus par placette) ne sont pas pris
en compte dans les observations ;
2. attribution d'une note globale de recouvrement (cf. annexe 04 : échelle de notation) ;
3. attribution d'une note de recouvrement de chaque espèce dominante. Ce sont ces notes
de recouvrement attribuées aux espèces qui sont utilisées dans la présente analyse.
6 JAT : Jours Après Traitement
3 ANALYSES DES DONNEES
Pour chacune des espèces considérées comme dominantes sur les 108 sites expérimentaux, une
moyenne des notes de recouvrement a été calculé pour chaque date de relevés. Pour la présente
étude, une seule date de notation a été prise en considération
pour les essais de produits de pré-levée, la date D3 (= 42 JAT), parce que c’est la date
la mieux représentée sur l’ensemble des essais considérés ;
et pour les essais de post-levée, la date D1 (= 7 JAT).
Les applications d’herbicides de pré-levée sont effectuées de 5 à 15 jours après à la date de
plantation ou de coupe de la parcelle ; celles de post-levée le sont environ 45 jours après : donc,
la date D3 pour les essais de pré-levée et la date D1 pour les post-levée correspondent à un
même délai de l’ordre d’un mois et demi à deux mois après le démarrage de la végétation sur
les placettes témoins.
En cas de défaut de notation à ces dates (D3 pour les essais en pré-levée et D1 pour ceux en
post-levée), c’est la notation de la date la plus proche qui a été prise en considération.
3.1 Les profils écologiques
Les notes moyennes de recouvrement calculées pour les 108 essais permettent de définir pour
chaque espèce :
la fréquence absolue : le nombre de relevés dans lesquels l'espèce est présente ;
la fréquence relative : la fréquence absolue rapportée au nombre de relevés considérés,
exprimée en pourcentage ;
le recouvrement moyen : la moyenne des notes de recouvrement attribuées à une espèce,
exprimées en pourcentage de recouvrement du sol, sur l’ensemble des relevés
considérés (donc en incluant les essais où les espèces ne sont pas présentes) ;
le recouvrement local : la somme des notes de recouvrements d’une espèce divisée par
sa fréquence absolue (c’est le recouvrement moyen quand l’espèce est présente). Ce
calcul met en évidence les espèces rares, qui ont un fort recouvrement quand elles sont
présentes.
Les relevés floristiques sont caractérisés par des facteurs du milieu agroécologiques : dans cette
étude, trois facteurs sont pris en compte, la localisation, l’altitude et la saison. Les valeurs de
ces facteurs sont réparties en classes ou états de facteur : ici, par exemple, chaque saison pourra
constituer un état de facteur.
L’analyse des relevés floristiques repose sur le calcul des fréquences et des recouvrements de
chaque espèce pour chacun des états du facteur considéré, ce qui permet d'estimer l'influence
de ce facteur sur le comportement de l'espèce.
Pour pouvoir comparer le comportement de différentes espèces, qui n'ont pas des
recouvrements moyens du même ordre, on calcule un recouvrement corrigé, qui correspond au
recouvrement moyen dans un état de facteur divisé par le recouvrement moyen sur l’ensemble
des relevés considérés. Ce calcul est multiplié par 100, ainsi plus l'écart à la valeur 100 est
important, plus l'espèce est sensible au facteur étudié.
Le tableau 02 indique le mode de calcul du profil corrigé d'une espèce pour les différents états7
d'un facteur.
Tableau 02 : Profil corrigé du recouvrement moyen pour une espèce
état 1 … état i … ensemble des
relevés
recouvrement moyen Rc1 =
recouvrement moyen corrigé (Rc1/RcT) x 100 … (Rci/RcT) x 100 … 100
Ces calculs aboutissent à l’établissement de profils écologiques, qui définissent les situations
favorables ou défavorables au développement des espèces.
3.2 La constitution de la matrice des données
Une matrice de données a ainsi été construite ; elle comporte en ligne les facteurs pris en compte
(date d’observation, localisation du site expérimental, altitude, type d’essai, irrigation, etc.),
puis les différentes espèces de la flore rencontrée et en colonne chacun des relevés floristiques
caractérisés par les états des facteurs et les notes des espèces dominantes présentes à la date
d’observation. Ces notes correspondent à la moyenne des notes de recouvrement attribuées à
l’espèce sur l’ensemble des placettes témoins de l’essai à la date d’observation.
L’analyse des relevés floristiques conduit à la caractérisation de la flore des mauvaises herbes
rencontrées sur l’ensemble des sites observés, en dressant la liste des espèces dominantes
composant l’enherbement des parcelles, en les hiérarchisant en fonction de leur fréquence et de
leur recouvrement et dégageant les tendances de leur comportement par rapport aux facteurs du
milieu.
3.3 La répartition spatiale
Pour chacune des espèces rencontrées, une carte de localisation 8 a été établie.
Lorsque l’espèce est présente, la taille du point traduit la note de recouvrement ; elles ont été
réparties en sept classes, R ≤ 1%, 1% < R ≤ 5%, 5% < R ≤ 10%, 10% < R ≤ 20%,
20% < R ≤ 30%, 30% < R ≤ 50%, R > 50%.
Trois facteurs sont représentés par le positionnement du point :
la zone (Est, Sud ou Ouest) ;
l’altitude par rapport aux deux courbes de niveaux (100 m et 300 m).
la saison (S1 : la saison chaude de novembre à avril de couleur rouge ou S2 : la saison
fraiche de mai à octobre de couleur bleue) ;
7 Dans la pratique, le nombre d’états d’un facteur à analyser sera limité pour que le nombre de relevés
par état soit suffisant. Pour les variables quantitatives, entières ou continues, il sera nécessaires de
créer des classes qu’il faudra équilibrer par rapport au nombre de relevés dans chaque classe. Pour
les données qualitatives, des regroupements pourront être faits.
8 Toutes les cartes ont été créées par Lionel le Mézo (Cirad-Aïda).
4 RESULTATS
L’analyse porte sur 108 relevés effectués de 2005 à 2016, répartis sur l’ensemble de la sole
cannière de La Réunion.
4.1 La composition floristique de l’étude
165 espèces dominantes (cf. annexe 05) ont été rencontrées sur l’ensemble des 108 sites
expérimentaux ; elles se répartissent en 44 familles (cf. annexe 08) :
40 espèces monocotylédones de 7 familles, principalement des Poaceae (27 espèces) et
des Cyperaceae (6 espèces) ;
(6 espèces), etc.
4.2 Les espèces majeures
Pour l’ensemble des relevés effectués, la fréquence relative croisée avec le recouvrement local
hiérarchise l’importance relative des espèces (cf. annexe 06) dans l’échantillon des 108
parcelles de cette étude. Dans les groupes suivants, les espèces sont classées par fréquence
décroissante.
Espèces très fréquentes avec un recouvrement local élevé
Solanum americanum
Ageratum conyzoides
Cyperus rotundus
Ipomoea hederifolia
Rottboellia cochinchinensis
Eleusine indica
Setaria pumila
Le groupe suivant comporte deux ensembles d’espèces de moindre importance, mais qui restent
majeures vis-à-vis de la contrainte de désherbage de la canne.
Espèces très fréquentes avec un recouvrement local modéré
Sigesbeckia orientalis
Cardiospermum microcarpum
Euphorbia heterophylla
Panicum maximum
Ipomoea obscura
Ipomoea nil
Portulaca oleracea
Argemone mexicana
Phyllanthus niruroides
Paspalum scrobiculatum
Setaria barbata
Distimake aegyptius
Cyperus esculentus
Dactyloctenium aegyptium
9 Amaranthus spp. regroupe les deux espèces Amaranthus viridis et Amaranthus dubius qui sont
difficiles à différencier surtout au stade jeune et dont on observe des formes intermédiaires.
Le groupe suivant rassemble les espèces localement importantes ; peu fréquentes, elles sont
néanmoins fortement développées quand elles sont présentes. Ce sont des espèces inféodées à
des conditions de milieux particulières, comme les températures plus basses des Hauts avec
Stellaria media ou Raphanus raphanistrum ou encore comme le climat plus sec de l’Ouest avec
Themeda quadrivalvis.
Au contraire, certaines espèces peuvent être fréquentes mais peu importantes, car ayant toujours
un recouvrement faible.
Bidens pilosa
Momordica charantia
Commelina benghalensis
Oxalis corniculata
Crassocephalum crepidioides
Les autres espèces, peu fréquentes et peu recouvrantes, ont une importance agronomique
beaucoup plus faible quant aux contraintes de désherbage des parcelles.
Figure 02 : Graphe d’infestation pour l’ensemble des essais
La figure 02 montre un graphe d’infestation qui indiquent la position relative des espèces selon
leur fréquence et leur recouvrement local. (graphe obtenu avec le package Amatrop sous R 10.
Ces graphes sont également présentés en annexe 07 pour quatre groupes selon la saison (chaude
= été ou fraiche = hiver) et l’altitude (les Bas < 300 m et les Hauts > 300 m).
4.3 Les profils écologiques
Pour l’analyse par les profils écologiques, trois facteurs 11 sont pris en considération : l’altitude,
la saison et la zone.
En annexe 10, les valeurs des profils écologiques sont présentées par espèces avec un code
couleur allant du rouge au bleu : rouge quand le facteur influence positivement l’espèce et bleu
dans le cas contraire. Les espèces sont réparties en trois groupes : 1/ les espèces les plus
fréquentes (fréquence relative (FR) ≥ 10 %) ; 2/ les espèces peu fréquentes (3 % < FR < 10 %) ;
3/ les espèces rares (FR ≤ 3 %).
Les histogrammes présentés en annexes 08 expriment ces valeurs pour une vingtaine d’espèces
caractéristiques. A titre d’illustration, quelques espèces sont présentées ci-après.
4.3.1 Le facteur altitude
Figure 03 : Profils corrigés sur le recouvrement moyen pour le facteur altitude
A < 100 m, B : 100 m à 300 m, C > 300 m
10 Fayolle B., S. Auzoux, P. Marnotte and T. Le Bourgeois (2020). Amatrop R-package: Analize and
process data from the Amatrop project for phytoecological studies of weed communities. Version
.0.0.9000 under R version 3.6.1 de R, created 2020, July 15. Cirad - Université Grenoble_Alpes.
(unpublished)
Plantago lanceolata (PLALA) n’a été rencontré que dans les situations d’altitude (> 300 m),
alors que les graminées comme Setaria pumila (SETPU), Rottboellia cochinchinensis
(ROOEX) ou Eleusine indica (ELEIN) sont plutôt développées en zone basse ou moyenne
(< 300 m) ; Oxalis debilis var. corymbosa (OXACB) se rencontre préférentiellement entre 100
et 300 m tandis que Commelina benghalensis (COMBE) est présent partout (cf. figure 03).
4.3.2 Le facteur saison
Figure 04 : Profils corrigés sur le recouvrement moyen pour le facteur saison (4 modalités)
saison chaude ; de décembre à mars ;
saison intermédiaire 1 ; avril et mai ;
saison fraiche ; de juin à septembre ;
saison intermédiaire 2 ; octobre et novembre.
La figure 04 montre bien l’opposition entre les espèces de saison chaude, comme Paspalum
paniculatum (PASPA), Drymaria cordata (DRYCO) ou Malvastrum coromandelianum
(MAVCO), celle de saison fraiche, comme Youngia japonica (UOUJA), celle de saison
intermédiaire 2 comme Nicandra physalodes (NICPH) ou bien de saison intermédiaire 1
comme Argemone mexicana (AGRME) et Cardiospermum microcarpum (CRIMI).
4.3.3 Le facteur zone
A l’échelle de l’île de La Réunion, certaines espèces se répartissent selon les zones
géographiques : Passiflora foetida (PAQFO) ou Eleusine indica (ELEIN) dans l’Est, Ipomoea
hederifolia (IPOHF) dans l’Ouest ainsi que Portulaca oleracea (POROL), tandis que Nicandra
physalodes (NICPH) et Melochia pyramidata (MEOPY) sont surtout présents dans le Sud (cf.
figure 05).
Figure 05 : Profils corrigés sur le recouvrement moyen pour le facteur zone
4.3.4 La combinaison des facteurs
L’analyse des profils écologiques peut être faite en combinant les facteurs. Les espèces
indicatrices d’une combinaison de facteurs sont obtenues
en classant par ordre décroissant les espèces sur le profil du recouvrement moyen
corrigé d’un état du premier facteur,
en sélectionnant le groupe d’espèces indicatrices (celles ayant un profil corrigé
supérieur à un seuil 12),
puis en recommençant le classement sur ce groupe sur le profil du recouvrement moyen
corrigé d’un état du deuxième facteur,
etc.
Les tableaux en annexe 09 donnent les espèces indicatrices les combinaisons suivantes :
zone x altitude (Est x Bas ; Est x Haut ; Ouest x Bas ; Ouest x Haut ; Sud x Bas ;
Sud x Haut) ;
zone x saison (Est x S1 ; Est x S2 ; Ouest x S1 ; Ouest x S2 ; Sud x S1 ; Sud x S2) ;
altitude x saison (Bas x S1 ; Bas x S2 ; Haut x S1 ; Haut x S2) ;
zone x altitude x saison (Est x Bas x S1 ; Est x Bas x S2 ; Est x Haut x S1 ; Est x Haut
x S2 ; Ouest x Bas x S1 ; Ouest x Bas x S2 ; Ouest x Haut x S1 ; Ouest x Haut x S2 ;
Sud x Bas x S1 ; Sud x Bas x S2 ; Sud x Haut x S1 ; Sud x Haut x S2)
Les espèces indifférentes au facteur considéré sont indiquées en dessous (cf. annexe 09).
Par exemple, le croisement des facteurs saison et altitude (cf. figure 06), réduits à deux classes
chacun, différencie des espèces de basse altitude, plutôt de saison chaude, comme Eleusine
indica (ELEIN) ou plutôt de saison fraiche comme Gnaphalium purpureum (GNAPU) et
Nicandra physalodes (NICPH) d’espèces que l’on rencontre en altitude en saison fraiche,
comme Heliotropium amplexicaule (HEOAM). Une espèce comme Panicum maximum est
12 Ici, le seuil a été fixé à 130.
présente partout et tout au long de l’année ce qui n’est pas étonnant puisque c’est l’une des
adventices les plus importantes de la canne à sucre à La Réunion.
Figure 06 : Profils corrigés sur le recouvrement moyen pour les facteurs altitude et saison
S1 = saison chaude (été austral) : de novembre à avril ; S2 = saison fraiche (hiver austral) : de mai à octobre ; bas
< 250 m ; haut ≥ 250 m
4.4 La représentation spatiale
L’ensemble des cartes de distribution spatiale des espèces 13 est présenté dans un document
séparé ; elles sont classées par ordre alphabétique du nom botanique.
A titre d’exemple, la représentation cartographique de quelques espèces a été mise en
comparaison avec les profils écologiques pour les facteurs pris en compte dans les cartes : la
zone (Est, Ouest et Sud), la saison (saison chaude = été austral et saison fraiche = hiver austral
en fonction de la couleur du point) et l’altitude avec deux courbes de niveaux (100 m et 300 m).
Pour les profils écologiques,
la saison comprend
soit quatre classes : saison chaude : de décembre à mars ; saison intermédiaire 1 :
avril et mai ; saison fraiche : de juin à septembre ; saison intermédiaire 2 : octobre et
novembre ;
soit deux classes : A : saison chaude de novembre à avril ou B : saison fraiche de mai
à octobre ;
l’altitude comprend
soit trois classes : A < 100 m, B : 100 m à 300 m, et C > 300 m
soit deux classes : A < 250 m et B ≥ 250 m
13 Les documents cartographiques (localisation des sites témoins et l’atlas des notes d’enherbement par
espèce) sont disponibles sur le site www. aware.cirad.fr.
4.4.1 Solanum americanum (SOLAM)
Solanum americanum est présente sur l’ensemble des zones de l’île, avec une légère préférence
pour les parcelles d’altitude en saison chaude (été austral).
4.4.2 Eleusine indica (ELEIN)
Eleusine indica est une graminée des Bas de l’Est de La Réunion, qui se développe plutôt en
saison chaude.
4.4.3 Paspalum scrobiculatum (PASSC)
Paspalum scrobiculatum a les mêmes profils qu’Eleusine indica : zones de basse altitude de
l’Est de l’île en saison chaude.
4.4.4 Setaria pumila (SETPU)
Setaria pumila se rencontre principalement dans la zone Est ; présente plutôt en basse altitude
(< 250 m), elle se développe plutôt en fin de saison chaude et en saison fraiche.
4.4.5 Setaria barbata (SETBA)
Setaria barbata, à l’inverse de Setaria pumila, est plus présente dans l’Ouest et elle se
développe en fin de saison fraiche (fin d’hiver) et en saison chaude dans les Hauts (> 250 m).
4.4.6 Momordica charantia (MOMCH)
Momordica charantia se rencontre à toutes les altitudes avec une tendance pour les Hauts ; elle
est bien développée en saison chaude, particulièrement dans l’Ouest
4.4.7 Desmanthus virgatus (DEMVI)
Dans les parcelles qui ont reçu les essais étudiés, Desmanthus virgatus a montré une préférence
pour les zones Ouest et Sud en basse altitude (< 300 m) tout au long de l’année, mais il est plus
abondant en saison chaude.
4.4.8 Bothriospermum tenellum (BOOTE)
Bothriospermum tenellum est présent à toutes les altitudes mais avec une préférence pour les
Hauts dans l’Est et le Sud. C’est typiquement une espèce de saison froide, qui disparaît en
saison chaude.
4.4.9 Argemone mexicana (ARGME)
Argemone mexicana est une espèce plutôt présente dans les zones Ouest et Sud, bien qu’on la
rencontre aussi dans l’Est ; c’est une adventice plutôt caractéristique des zones de moyenne
altitude entre 100 et 300 m et des Hauts (> 300 m), qui se développe surtout en saison fraiche.
4.4.10 Lepidium didymum (COPDI)
Espèce plutôt présente dans le Sud et dans les Hauts (> 300 m), Lepidium didymum est typique
de la saison fraiche.
4.4.11 Phyllanthus spp.
Les trois Phyllanthus (P. amarus, P. niruroides, P. tenellus) ont chacun une répartition préférentielle différente, que ce soit pour la zone, l’altitude ou la saison.
5 DISCUSSION ET CONCLUSION
La composition floristique des enherbements rencontrés dans les témoins des essais d’herbicides
est très similaire à celle de l’étude conduite en culture de canne à sucre à La Réunion par Le
Bourgeois et al. 14 en 2003-2004. Les familles botaniques majeures sont les mêmes avec des
nombres d’espèces voisins (cf. tableau 03)
Tableau 03 : Comparaison du nombre d’espèces par famille entre les deux études
floristiques
Poaceae 29 33
Cyperaceae 8 7
Fabaceae 24 14
Asteraceae 17 23
Convolvulaceae 12 8
Malvaceae 9 7
Solanaceae 9 11
Amaranthaceae 8 8
Euphorbiaceae 6 11
La hiérarchisation des espèces entre les deux séries de relevés montre également les mêmes
tendances avec cependant des nuances sensibles :
Panicum maximum, Cynodon dactylon, Cyperus rotundus et Sigesbeckia orientalis sont
classées par Le Bourgeois et al. (2004) comme les espèces majeures des cultures de canne à
sucre. Ici, hormis Cyperus rotundus, ces espèces ont un classement un peu différent :
Panicum maximum et Sigesbeckia orientalis, classées comme très fréquentes, n’ont pas un
recouvrement local très élevé : ceci est peut-être dû au choix des parcelles.
Si Cynodon dactylon est ici une espèce peu fréquente, c’est que, lors du choix des sites des
essais d’herbicides, les parcelles infestées par cette adventice ne sont pas retenues, car aucun
des herbicides testés n’était efficace a priori pour lutter contre cette espèce.
Momordica charantia se retrouve dans les deux séries de suivi comme très fréquente, mais avec
un recouvrement moyen faible.
Ipomoea hederifolia et Rottboellia cochinchinensis ont ici une fréquence relative
respectivement de 31% et 27% et un recouvrement local élevé, ce qui correspond au même
classement dans l’étude de Le Bourgeois ; en revanche, Paspalum paniculatum et Kyllinga
erecta, qui n’ont ici qu’une fréquence de 14% et un recouvrement moyen faible, apparaissent
dans l’étude précédente comme des espèces abondantes localement.
Quant à l’influence du facteur altitude, on retrouve le même classement entre les deux études (cf.
tableau 04.
14 Le Bourgeois T., Lebreton, G., Grillet N. et Chiroleu F. 2004. Caractérisation des enherbements en
culture de canne à sucre à La Réunion. AFPP – 19e conférence du Columa - Journées internationales
sur la lutte contre les mauvaises herbes. Dijon – 8, 9 et 10 décembre 2004. 8 p.
Tableau 04 : Répartition préférentielle des espèces selon l’altitude avec le même classement
entre les deux études
Bidens pilosa
Bromus catharticus
Erigeron sumatrensis
Coronopus didymus
Euphorbia peplus
Fumaria muralis
Lapsana communis
Nicandra physalodes
Plantago lanceolata
Raphanus raphanistrum
Rumex sp.
Centrosema pubescens
Cyanthillium cinereum
Eleusine indica
Euphorbia hirta
Hibiscus surattensis
Leucas lavandulifolia
Passiflora foetida
En revanche, Phyllanthus tenellus est mentionné comme espèce des Bas par Le Bourgeois et al.,
alors que c’est l’inverse dans la présente étude.
Même si l’information est à considérer avec précaution, les espèces peu fréquentes, voire rares
dans cette série d’essai, peuvent montrer une tendance, si leur comportement confirme ce qui est
déjà connu par ailleurs, par exemple :
Achyranthes aspera dans les Bas en début de saison fraiche (début d’hiver) dans l’Est ;
Bromus catharticus en altitude en fin de saison fraiche (fin d’hiver) dans le Sud ;
Dactyloctenium aegyptium dans les Bas en saison chaude (été) dans l’Ouest ;
Mimosa diplotricha à basse et moyenne altitude en saison fraiche (hiver) dans l’Est ;
Tribulus cistoides dans les Bas en saison fraiche (hiver) dans l’Ouest ;
etc.
Ces données sur la répartition spatiale des espèces végétales pouvant se comporter comme
mauvaises herbes fournit des informations pour aider à prévoir la composition floristique de la
flore spontanée des parcelles cultivées : il est possible d’envisager l’élaboration d’un outil d’aide
à la décision facilitant le choix des pratiques de gestion de l’enherbement des cultures sur la base
de la localisation de la parcelle concernée selon la région, l’altitude et la saison de l’année.
Le jeu de données indiquant la flore et les facteurs du milieu correspondant aux 108 essais est
déposé sur l’entrepôt institutionnel Dataverse du Cirad :
Marnotte Pascal, Esther Jean-Jo, Le Bourgeois Thomas, Auzoux Sandrine et Fayolle Benjamin,
2020, "Weed survey in herbicide experiments in sugarcane in Reunion Island (2005-2016)",
doi:10.18167/DVN1/OFZEH1, CIRAD Dataverse, V2.
Les documents cartographiques (localisation des sites témoins et l’atlas des notes
d’enherbement par espèce) sont disponibles sur l’atlas en ligne Aware (https://aware.cirad.fr),
en sélectionnant la catégorie "Agriculture" dans "Explorez les jeux de données disponibles".
Ci-dessous les liens pour accéder
à la couche géo-référencée "Flore des mauvaises herbes de la canne à sucre à La Réunion -
Caractérisation à partir des témoins des essais d’herbicides notées de 2005 à 2016" :
https://aware.cirad.fr/layers/geonode:a__2005_2016_temoin_essai_herbicide_Reunion1
à l'Atlas: notes d’enherbement en moyenne interannuelle pour 167 espèces à La Réunion :
https://aware.cirad.fr/documents/629
Ces documents cartographiques sont en accès public sous la licence .
2005 - 2016
6 ANNEXES
6.1 Annexe 01 : Pluviosité
6.2 Annexe 02 : Températures
Tx : température maximale ; Tm : température moyenne ; Tn : température minimale ; moyenne des températures journalières par mois ; Source : site https://smartis.re/METEOR
6.3 Annexe 03 : Répartition du nombre d’essais par facteur
Cette annexe indique la répartition des 108 parcelles d’essai selon la zone, l’année, la saison,
l’altitude ou le mode d’irrigation.
6.3.1 Nombre d’essais par commune et par zone
Communes Est Ouest Sud
6.3.2 Nombre d’essais par commune et par année
Communes 2005 2006 2007 2008 2009 2010 2011 2012 2013 2014 2015 2016 Total
Bras-Panon 5 1 1 1 1 2 11
Les Avirons 1 1
L'Etang-Salé 1 1 2
Saint-Benoît 3 4 3 1 1 1 1 14
Sainte-Marie 1 1 1 3
Sainte-Rose 1 1 1 3
Sainte-Suzanne 1 1 1 1 4
Saint-Gilles 2 2 1 1 6
Saint-Joseph 1 1 1 1 1 5
Saint-Leu 2 1 1 4
Saint-Louis 3 3 1 3 1 2 13
Saint-Paul 2 2 1 5 2 1 1 14
Saint-Philippe 1 2 1 4
Saint-Pierre 4 3 1 2 3 1 1 15
Tampon 1 1
Trois-Bassins 1 1 2
Total 19 17 9 10 14 5 4 7 6 7 6 4 108
6.3.3 Nombre d’essais par commune et par saison
Communes A B C D Total
Bras-Panon 2 2 5 2 11
Les Avirons 1 1
L'Etang-Salé 1 1 2
Saint-Benoît 2 3 6 3 14
Sainte-Marie 2 1 3
Saint-Gilles 1 2 1 2 6
Saint-Joseph 2 1 2 5
Saint-Leu 1 3 4
Saint-Philippe 1 3 4
Tampon 1 1
Trois-Bassins 2 2
A : saison chaude ; de décembre à mars ;
B : saison intermédiaire 1 ; avril et mai ;
C : saison fraiche ; de juin à septembre ;
D : saison intermédiaire 2 ; octobre et novembre.
6.3.4 Nombre d’essais par commune et par altitude
Communes A B C Total
Bras-Panon 8 2 1 11
Les Avirons 1 1
Sainte-Marie 1 2 3
Sainte-Rose 2 1 3
Saint-Philippe 4 4
Tampon 1 1
Trois-Bassins 2 2
B : moyenne altitude (100 m à 300 m) ;
C : « haute » altitude (> 300 m).
6.3.5 Nombre d’essais selon l’irrigation
zone altitude asp g à g sans total par
altitude
total
A 4 1 5
B 4 4 8
A 5 5
C 2 15 17
asp : irrigation par aspersion
sans : sans irrigation
B : moyenne altitude (100 m à 300 m) ;
C : « haute » altitude (> 300 m).
6.4 Annexe 04 : Echelle de notation
Pour le recouvrement des mauvaises herbes, estimé en pourcentage par rapport au sol.
note p.100 Recouvrement
2 7 moins d'un individu par m2
3 15 au moins un individu par m2
4 30 30 % de recouvrement
7 85 recouvrement fort
9 100 recouvrement total
notes
6.5.1 Les familles représentées
ensemble Dicotylédones Monocotylédones
nb total d’espèces 183 138 45
Familles Dicotylédones Monocotylédones
Familles Dicotylédones Monocotylédones
6.5.2 Liste des espèces rencontrées
Les espèces sont ordonnées par classe, famille, genre et espèce avec le code EPPO15 et des noms locaux à La
Réunion
Cannaceae Canna indica L. CNNIN conflore
Commelinaceae Commelina benghalensis L. COMBE grosse herbe de l'eau
Commelinaceae Commelina diffusa Burm.f. COMDI petite herbe de l'eau
Cyperaceae Cyperus distans L.f. CYPDT
Cyperaceae Cyperus esculentus L. CYPES
Cyperaceae Cyperus rotundus L. CYPRO oumine
Cyperaceae Fimbristylis sp. FIMSS
Cyperaceae Pycreus polystachyos (Rottb.) P.Beauv. PYCPO
Iridaceae Crocosmia × crocosmiiflora (Lemoine) N.E.Br. TTRCR glaïeul marron,
montbrétia
Poaceae Brachiaria sp. BRASS
Poaceae Chloris barbata Sw. CHRBA herbe à cils
Poaceae Chloris gayana Kunth CHRGA Rhodes grass
Poaceae Chloris pycnothrix Trin. CHRRA
Poaceae Cynodon dactylon (L.) Pers. CYNDA petit-chiendent,
chiendent fil-de-fer
Poaceae Digitaria horizontalis Willd. DIGHO digitaire
Poaceae Digitaria sp. 17 DIGSS digitaire
Poaceae Dinebra retroflexa (Vahl) Panzer DIMRE
Poaceae Echinochloa colona (L.) Link ECHCO
Poaceae Eleusine indica (L.) Gaertn. ELEIN gros chiendent
Poaceae Hyparrhenia rufa (Nees) Stapf HYRRU
Poaceae Melinis repens (Willd.) Zizka RHYRE herbe rose
Poaceae Panicum maximum Jacq. PANMA fataque
Poaceae Paspalum dilatatum Poir. PASDI herbe sirop, herbe épée,
herbe de miel
15 EPPO : European and Mediterranean Plant Protection Organization (cf. https://gd.eppo.int/)
16 Synonyme Cyperus erectus (Schumach.) Mattf. & Kük.
17 Digitaria sp. est vraisemblablement Digitaria radicosa. Pour l’analyse, Digitaria sp. regroupe
Digitaria horizontalis et Digitaria radicosa, difficiles à différencier au stade juvénile.
Famille Espèce code
EPPO noms communs
miel
Poaceae Pennisetum clandestinum Chiovenda PESCL kikuyu
Poaceae Phalaris arundinacea L. TYPAR herbe ruban
Poaceae Rottboellia cochinchinensis (Lour.) Clayton ROOEX fataque duvet
Poaceae Setaria barbata (Lam.) Kunth SETBA
grosse traînasse, herbe
tourterelle, petit
bambou, trainasse
Poaceae Setaria pumila (Poir.) Roem. & Schult. SETPF herbe queue de chat
Poaceae Setaria verticillata (L.) P.Beauv. SETVE herbe tourterelle
Poaceae Sorghum arundinaceum (Desv.) Stapf SORAR maïs cafre
Poaceae Themeda quadrivalvis (L.) Kuntze THMQU herbe de Saint-Paul
Dicotylédones
Aizoaceae Tetragonia tetragonioides (Pall.) Kuntze TEATE tétragone
Aizoaceae Trianthema portulacastrum L. TRTPO pourpier courant, brède
cacayanga
herbe d'Eugène, herbe
zen, queue-de-rat, la
Amaranthaceae Amaranthus viridis L. AMAVI pariétaire, paillatère
Amaranthaceae Chenopodium album L. CHEAL chénopode
Amaranthaceae Cyathula prostrata (L.) Blume CYHPR herbe canal
Amaranthaceae Dysphania ambrosioides (L.) Mosyakin &
Clemants CHEAM
cochlearia
Marie-Thérèse
Asteraceae Erigeron sumatrensis Retz. 19 ERISU camomille sauvage,
zamal marron
Asteraceae Cyanthillium cinereum (L.) H.Rob. VENCI herbe le rhum
Asteraceae Elephantopus mollis Kunth ELPMO
Asteraceae Emilia sonchifolia (L.) DC. ex DC. EMISO petit lastron, lastron des
oiseaux
Asteraceae Galinsoga parviflora Cav. GASPA piquant blanc
Asteraceae Gnaphalium purpureum L. GNAPU immortelle marrone
18 Amaranthus spp. regroupe les deux espèces Amaranthus viridis et Amaranthus dubius qui sont
difficiles à différencier surtout au stade jeune et dont on observe des formes intermédiaires.
19 Synonyme Conyza sumatrensis (Retz.) E.Walker
EPPO noms communs
Asteraceae Lapsana communis L. LAPCO
Asteraceae Parthenium hysterophorus L. PTNHY camomille
Asteraceae Sigesbeckia orientalis L. SIKOR colle-colle
Asteraceae Sonchus oleraceus L. SONOL lastron tendre
Asteraceae Synedrella nodiflora (L.) Gaertn. SYDNO petite marguerite
Asteraceae Youngia japonica (L.) DC. UOUJA lastron bâtard
Bignoniaceae Dolichandra unguis-cati (L.) L.G.Lohmann BIGUC
Boraginaceae Bothriospermum tenellum (Hornem.) Fisch. &
C.A.Mey. BOOTE myosotis
Boraginaceae Trichodesma zeylanicum (Burm.f.) R.Br. TRHZE herbe tourterelle
Brassicaceae Cardamine hirsuta L. CARHI
Brassicaceae Lepidium didymum L. COPDI herbe cressonette
Brassicaceae Raphanus raphanistrum L. RAPRA ravenelle
Cannabaceae Trema orientalis (L.) Blume TREOR bois d'Andrèze
Caryophyllaceae Drymaria cordata (L) Willd.ex Roem. &Schult DRYCO pilipili
Caryophyllaceae Stellaria media (L.)Vill. STEME stellaire, mouron blanc
Cleomaceae Cleome viscosa L. CLEVI brède caya, pissat de
chien
Convolvulaceae Ipomoea batatas (L.) Lam. IPOBA patate douce
Convolvulaceae Ipomoea eriocarpa R.Br. IPOER
Convolvulaceae Ipomoea hederifolia L. IPOHF amourette, liseron fleur
rouge
Convolvulaceae Ipomoea obscura (L.) Ker-Gawler IPOOB liane toupie, liseron fleur
blanc
Convolvulaceae Ipomoea triloba L. IPOTR
Convolvulaceae Merremia dissecta (Jacq.) Hallier f. MRRDI
Cucurbitaceae Coccinia grandis (L.) Voigt COCGR ti concombre rouge
Cucurbitaceae Cucumis melo L. CUMME melon
Cucurbitaceae Momordica charantia L. MOMCH margose
Euphorbiaceae Croton bonplandianus Baill. CVNBO
Euphorbiaceae Euphorbia heterophylla L. EPHHL herbe de lait
Euphorbiaceae Euphorbia hirta L. EPHHI Jean Robert
Euphorbiaceae Euphorbia hyssopifolia L. EPHHS petite euphorbe
Euphorbiaceae Euphorbia peplus L. EPHPE petite herbe de lait,
euphorbe réveil matin
Fabaceae Cajanus scarabaeoides (L.) Thouars ATYSC fausse pistache
marronne
EPPO noms communs
Fabaceae Crotalaria retusa L. CVTRE
Fabaceae Desmanthus virgatus (L.) Willd. DEMVI ti cassi
Fabaceae Desmodium intortum (Mill.) Urb. DEDIN colle colle
Fabaceae Desmodium tortuosum (Sw.) DC. DEDTO
Fabaceae Desmodium uncinatum (Jacq.) DC. DEDUN
Fabaceae Leucaena leucocephala (Lam.) de Wit LUAGL cassis, cassie blanc,
tamarin cheval
Fabaceae Mimosa diplotricha Sauvalle MIMIN
Fabaceae Mimosa pudica L. MIMPU sensitive
Fabaceae Mucuna pruriens (L.) DC. MUCPR poil à gratter
Fabaceae Phaseolus vulgaris L. PHSVX haricot
Fabaceae Rhynchosia malacophylla (Spreng.) Bojer RHNSE
Fabaceae Senna obtusifolia (L.) H.S.Irwin & Barneby CASOB
Fabaceae Senna occidentalis (L.) Roxb. CASOC indigo
Fabaceae Sesbania cannabina (Retz.) Pers. SEBCA
Fabaceae Tephrosia noctiflora Bojer ex Baker TEPNO
Fabaceae Teramnus labialis (L.f.) Spreng. TERLA pistache marronne
Lamiaceae Hyptis pectinata (L.) Poit. HPYPE
Lamiaceae Leonotis nepetifolia (L.) R.Br. LEONE
Lamiaceae Leucas lavandulifolia Sm. LEVLA petit tombé
Lauraceae Litsea glutinosa (Lour.) C.Rob. LISGU avocat marron
Malvaceae Hibiscus surattensis L. HIBSU oseille malabare
Malvaceae Malvastrum coromandelianum (L.) Garcke MAVCO herbe dure
Malvaceae Melochia pyramidata L. MEOPY herbe dure
Malvaceae Sida alba L. SIDLB
Malvaceae Sida glabra Mill. SIDGT herbe dure collante
Malvaceae Sida rhombifolia subsp. alnifolia (L.) Ugbor. SIDSS herbe dure
Malvaceae Sida rhombifolia subsp. retusa (L.) Borss.Waalk. SIDRR herbe dure
Malvaceae Urena lobata L. URNLO hérisson rouge
Melastomataceae Clidemia hirta (L.) D.Don. MICCR tabac boeuf
Myrtaceae Psidium cattleianum Afzel. ex Sabine PSICA goyavier
Nyctaginaceae Mirabilis jalapa L. MIBJA belle de nuit
Onagraceae Ludwigia octovalvis (Jacq.) Raven LUDOC herbe la misère
Oxalidaceae Oxalis corniculata L. OXACO ti trèfle
Oxalidaceae Oxalis debilis var. corymbosa (DC.) Lourteig OXACB gros trèfle, trèfle rose
Oxalidaceae Oxalis latifolia Kunth OXALA gros trèfle, oseille
Oxalidaceae Oxalis tetraphylla Cav. OXATE trèfle à quatre feuilles
Papaveraceae Argemone mexicana L. ARGME chardon
Papaveraceae Fumaria muralis Sond. ex Koch FUMMU fumeterre
Passifloraceae Passiflora foetida L. PAQFO passiflore
Passifloraceae Passiflora suberosa L. PAQSU grenadine l’encre
Phyllanthaceae Phyllanthus amarus Schumach. & Thonn. PYLAM ti tamarin blanc
EPPO noms communs
Phyllanthaceae Phyllanthus tenellus Roxb. PYLTE
Phytolaccaceae Phytolacca americana L. PHTAM faux vin
Plantaginaceae Plantago lanceolata L. PLALA petit plantain
Polygonaceae Rumex sp. RUMSS
Rosaceae Rubus alceifolius Poir. RUBAC vigne marron, raisin
marron
Sapindaceae Cardiospermum microcarpum Kunth CRIMI liane poc-poc
Solanaceae Datura innoxia Mill. DATIN herbe à Sitarane
Solanaceae Datura stramonium L. DATST
Solanaceae Nicandra physalodes (L.) Gaertn. NICPH poc-poc fleur bleue
Solanaceae Physalis angulata L. PHYAN -
Solanaceae Solanum americanum Mill. SOLAM brède morelle
Solanaceae Solanum lycopersicum L. LYPES tomate poc poc
Solanaceae Solanum mauritianum Scop. SOLMR bringellier marron
Solanaceae Solanum torvum Sw. SOLTO bringelle marron
Tropaeolaceae Tropaeolum majus L. TOPMA capucine
Verbenaceae Lantana camara L. LANCA galabert, corbeille d'or
Verbenaceae Stachytarpheta jamaicensis (L.) Vahl STCJA
Verbenaceae Stachytarpheta urticifolia (Salisb.) Sims STCUR épis bleus, herbe à
chenilles, queue de rat
6.5.3 Fréquence et recouvrement des espèces (triées par code EPPO)
Code : EPPO ; cl. : classe (M : Monocotylédones ; D : Dicotylédones)
FA : fréquence absolue ; FR : fréquence relative ; Rm : recouvrement moyen
code Espèce Famille cl. FA FR Rm
ACYAS Achyranthes aspera L. Amaranthaceae D 4 4 0.0
AGECO Ageratum conyzoides L. Asteraceae D 41 38 2.9
ALLNE Allium neapolitanum Cirillo Amaryllidaceae M 5 5 0.3
AMADU Amaranthus dubius H.Martius ex Thell. Amaranthaceae D 20 19 2.2
AMASS Amaranthus sp. Amaranthaceae D 31 29 2.9
AMAVI Amaranthus viridis L. Amaranthaceae D 7 6 0.4
AMASS Amaranthus spp. Amaranthaceae D 58 54 5.6
APULE Cyclospermum leptophyllum (Pers.) Eichler Apiaceae D 6 6 0.1
ARGME Argemone mexicana L. Papaveraceae D 25 23 1.5
ARTVU Artemisia verlotiorum Lamotte Asteraceae D 7 6 0.1
ASYCO Asystasia gangetica (L.) T.Anderson Acanthaceae D 3 3 0.1
ATYSC Cajanus scarabaeoides (L.) Thouars Fabaceae D 3 3 0.1
BIDPI Bidens pilosa L. Asteraceae D 49 45 1.3
BIGUC Dolichandra unguis-cati (L.) L.G.Lohmann Bignoniaceae D 1 1 0.0
BOOTE Bothriospermum tenellum (Hornem.) Fisch. &
C.A.Mey. Boraginaceae D 17 16 0.6
BRASS Brachiaria sp. Poaceae M 4 4 0.0
BROCA Bromus catharticus Vahl Poaceae M 2 2 0.0
CARHI Cardamine hirsuta L. Brassicaceae D 2 2 0.0
CASMI Chamaecrista mimosoides (L.) Greene Fabaceae D 1 1 0.0
CASOB Senna obtusifolia (L.) H.S.Irwin & Barneby Fabaceae D 2 2 0.0
CASOC Senna occidentalis (L.) Roxb. Fabaceae D 13 12 0.3
CHEAL Chenopodium album L. Amaranthaceae D 1 1 0.0
CHEAM Dysphania ambrosioides (L.) Mosyakin &
Clemants Amaranthaceae D 2 2 0.0
CHRGA Chloris gayana Kunth Poaceae M 1 1 0.1
CHRRA Chloris pycnothrix Trin. Poaceae M 1 1 0.0
CLEVI Cleome viscosa L. Cleomaceae D 1 1 0.0
CLLAS Centella asiatica (L.) Urb. Apiaceae D 9 8 0.1
CNNIN Canna indica L. Cannaceae M 9 8 0.2
COCGR Coccinia grandis (L.) Voigt Cucurbitaceae D 1 1 0.0
COMBE Commelina benghalensis L. Commelinaceae M 38 35 1.0
COMDI Commelina diffusa Burm.f. Commelinaceae M 14 13 0.3
CONAE Distimake aegyptius (L.) A.R.Simões &
Staples Convolvulaceae D 9 8 0.9
COPDI Lepidium didymum L. Brassicaceae D 15 14 0.2
COSSS Centrosema sp. Fabaceae D 7 6 0.4
CRIMI Cardiospermum microcarpum Kunth Sapindaceae D 42 39 1.6
CRSCR Crassocephalum crepidioides (Benth.)
CUMME Cucumis melo L. Cucurbitaceae D 1 1 0.0
CVCCA Cuscuta campestris Yunck. Convolvulaceae D 1 1 0.0
CVNBO Croton bonplandianus Baill. Euphorbiaceae D 2 2 0.1
CVTRE Crotalaria retusa L. Fabaceae D 7 6 0.3
CXAHI Clidemia hirta (L.) D.Don. Melastomataceae D 1 1 0.0
CXSES Colocasia esculenta (L.) Schott Araceae M 7 6 0.3
CYHPR Cyathula prostrata (L.) Blume Amaranthaceae D 2 2 0.0
CYNDA Cynodon dactylon (L.) Pers. Poaceae M 4 4 0.2
CYPDT Cyperus distans L.f. Cyperaceae M 2 2 0.3
CYPES Cyperus esculentus L. Cyperaceae M 8 7 1.2
CYPRO Cyperus rotundus L. Cyperaceae M 37 34 3.7
CYPXX Cyperaceae Cyperaceae M 13 12 0.7
DATIN Datura innoxia Mill. Solanaceae D 2 2 0.1
DATST Datura stramonium L. Solanaceae D 1 1 0.0
DEDIN Desmodium intortum (Mill.) Urb. Fabaceae D 3 3 0.2
DEDTO Desmodium tortuosum (Sw.) DC. Fabaceae D 1 1 0.0
DEDUN Desmodium uncinatum (Jacq.) DC. Fabaceae D 1 1 0.1
DEMVI Desmanthus virgatus (L.) Willd. Fabaceae D 17 16 0.5
DIGSS Digitaria sp. Poaceae M 17 16 0.4
DIMRE Dinebra retroflexa (Vahl) Panzer Poaceae M 2 2 0.3
DRYCO Drymaria cordata (L) Willd.ex Roem. &Schult Caryophyllaceae D 10 9 0.3
DTTAE Dactyloctenium aegyptium (L.) P.Beauv. Poaceae M 6 6 0.5
ECHCO Echinochloa colona (L.) Link Poaceae M 6 6 0.1
ELEIN Eleusine indica (L.) Gaertn. Poaceae M 24 22 1.9
ELPMO Elephantopus mollis Kunth Asteraceae D 2 2 0.1
EMISO Emilia sonchifolia (L.) DC. ex DC. Asteraceae D 14 13 0.3
EPHHI Euphorbia hirta L. Euphorbiaceae D 3 3 0.0
EPHHL Euphorbia heterophylla L. Euphorbiaceae D 40 37 2.7
EPHHS Euphorbia hyssopifolia L. Euphorbiaceae D 2 2 0.0
EPHPE Euphorbia peplus L. Euphorbiaceae D 4 4 0.1
ERISU Erigeron sumatrensis Retz. Asteraceae D 7 6 0.1
FIMSS Fimbristylis sp. Cyperaceae M 3 3 0.2
FUMMU Fumaria muralis Sond. ex Koch Papaveraceae D 11 10 0.7
GASPA Galinsoga parviflora Cav. Asteraceae D 9 8 0.5
GLASS Gladiolus sp. Iridaceae M 1 1 0.0
GNAPU Gamochaeta purpurea (L.) Cabrera Asteraceae D 10 9 0.4
HEOAM Heliotropium amplexicaule Vahl Boraginaceae D 4 4 0.2
HIBSU Hibiscus surattensis L. Malvaceae D 13 12 0.3
HPYPE Hyptis pectinata (L.) Poit. Lamiaceae D 1 1 0.1
HYRRU Hyparrhenia rufa (Nees) Stapf Poaceae M 1 1 0.0
IPOBA Ipomoea batatas (L.) Lam. Convolvulaceae D 1 1 0.0
IPOER Ipomoea eriocarpa R.Br. Convolvulaceae D 21 19 1.2
IPOHF Ipomoea hederifolia L. Convolvulaceae D 33 31 2.9
IPONI Ipomoea nil (L.) Roth Convolvulaceae D 35 32 1.4
IPOOB Ipomoea obscura (L.) Ker-Gawler Convolvulaceae D 35 32 1.4
IPOTR Ipomoea triloba L. Convolvulaceae D 7 6 0.2
KYLEL Kyllinga erecta Schumach. Cyperaceae M 15 14 0.4
LACIN Lactuca indica L. Asteraceae D 2 2 0.0
LANCA Lantana camara L. Verbenaceae D 4 4 0.0
LAPCO Lapsana communis L. Asteraceae D 2 2 0.1
LEONE Leonotis nepetifolia (L.) R.Br. Lamiaceae D 1 1 0.0
LEVLA Leucas lavandulifolia Sm. Lamiaceae D 6 6 0.3
LISGU Litsea glutinosa (Lour.) C.Rob. Lauraceae D 3 3 0.1
LUAGL Leucaena leucocephala (Lam.) de Wit Fabaceae D 7 6 0.3
LUDOC Ludwigia octovalvis (Jacq.) Raven Onagraceae D 3 3 0.1
LYPES Solanum lycopersicum L. Solanaceae D 11 10 0.1
MAVCO Malvastrum coromandelianum (L.) Garcke Malvaceae D 12 11 0.3
MEOPY Melochia pyramidata L. Malvaceae D 8 7 0.2
MEUAL Melilotus albus Medik. Fabaceae D 1 1 0.0
MIBJA Mirabilis jalapa L. Nyctaginaceae D 2 2 0.0
MIMIN Mimosa diplotricha Sauvalle Fabaceae D 4 4 0.1
MIMPU Mimosa pudica L. Fabaceae D 16 15 0.8
MOMCH Momordica charantia L. Cucurbitaceae D 40 37 1.0
MRRDI Merremia dissecta (Jacq.) Hallier f. Convolvulaceae D 1 1 0.1
MUCPR Mucuna pruriens (L.) DC. Fabaceae D 7 6 0.3
NICPH Nicandra physalodes (L.) Gaertn. Solanaceae D 7 6 0.4
OXACB Oxalis debilis var. corymbosa (DC.) Lourteig Oxalidaceae D 17 16 0.4
OXACO Oxalis corniculata L. Oxalidaceae D 33 31 1.0
OXALA Oxalis latifolia Kunth Oxalidaceae D 17 16 0.9
OXATE Oxalis tetraphylla Cav. Oxalidaceae D 1 1 0.1
PAEFO Paederia foetida L. Rubiaceae D 2 2 0.0
PANMA Panicum maximum Jacq. Poaceae M 40 37 2.0
PAQFO Passiflora foetida L. Passifloraceae D 18 17 0.4
PAQSU Passiflora suberosa L. Passifloraceae D 2 2 0.0
PASDI Paspalum dilatatum Poir. Poaceae M 3 3 0.1
PASPA Paspalum paniculatum L. Poaceae M 15 14 0.3
PASSC Paspalum scrobiculatum L. Poaceae M 22 20 0.9
PASUR Paspalum urvillei Steud. Poaceae M 3 3 0.1
PESCL Pennisetum clandestinum Chiovenda Poaceae M 1 1 0.0
PHBPU Ipomoea purpurea (L.) Roth Convolvulaceae D 2 2 0.0
PHSVX Phaseolus vulgaris L. Fabaceae D 1 1 0.0
PHTAM Phytolacca americana L. Phytolaccaceae D 8 7 0.2
PHYAN Physalis angulata L. Solanaceae D 1 1 0.0
PLALA Plantago lanceolata L. Plantaginaceae D 7 6 0.3
POROL Portulaca oleracea L. Portulacaceae D 30 28 1.2
PSICA Psidium cattleianum Afzel. ex Sabine Myrtaceae D 1 1 0.0
PTNHY Parthenium hysterophorus L. Asteraceae D 9 8 0.2
PYCPO Pycreus polystachyos (Rottb.) P.Beauv. Cyperaceae M 1 1 0.1
PYLAM Phyllanthus amarus Schumach. & Thonn. Phyllanthaceae D 19 18 0.5
PYLNO Phyllanthus niruroides Müll.Arg. Phyllanthaceae D 23 21 1.2
PYLTE Phyllanthus tenellus Roxb. Phyllanthaceae D 8 7 0.3
RAPRA Raphanus raphanistrum L. Brassicaceae D 3 3 0.3
RHNSE Rhynchosia malacophylla (Spreng.) Bojer Fabaceae D 3 3 0.1
RHYRE Melinis repens (Willd.) Zizka Poaceae M 3 3 0.0
RIICO Ricinus communis L. Euphorbiaceae D 1 1 0.0
ROOEX Rottboellia cochinchinensis (Lour.) W.Clayton Poaceae M 29 27 2.8
RUBAC Rubus alceifolius Poir. Rosaceae D 2 2 0.1
RUMSS Rumex sp. Polygonaceae D 3 3 0.1
SEBCA Sesbania cannabina (Retz.) Poir. Fabaceae D 2 2 0.1
SEBSS Sesbania sp. Fabaceae D 2 2 0.0
SETBA Setaria barbata (Lam.) Kunth Poaceae M 21 19 1.6
SETPU Setaria pumila (Poir.) Roem. & Schult. Poaceae M 22 20 2.4
SETVE Setaria verticillata (L.) P.Beauv. Poaceae M 2 2 0.2
SIDAL Sida rhombifolia subsp. alnifolia (L.) Ugbor. Malvaceae D 14 13 0.3
SIDGT Sida glabra Mill. Malvaceae D 5 5 0.1
SIDLB Sida alba L. Malvaceae D 4 4 0.1
SIDRR Sida rhombifolia subsp. retusa (L.)
Borss.Waalk. Malvaceae D 2 2 0.0
SIKOR Sigesbeckia orientalis L. Asteraceae D 55 51 3.2
SOLMR Solanum mauritianum Scop. Solanaceae D 8 7 0.1
SOLAM Solanum americanum Mill. Solanaceae D 85 79 7.6
SOLTO Solanum torvum Sw. Solanaceae D 4 4 0.1
SONOL Sonchus oleraceus L. Asteraceae D 8 7 0.2
SORAR Sorghum arundinaceum (Desv.) Stapf Poaceae M 10 9 0.1
STCJA Stachytarpheta jamaicensis (L.) Vahl Verbenaceae D 1 1 0.1
STCUR Stachytarpheta urticifolia (Salisb.) Sims Verbenaceae D 8 7 0.3
STEME Stellaria media (L.)Vill. Caryophyllaceae D 2 2 0.2
SYDNO Synedrella nodiflora (L.) Gaertn. Asteraceae D 4 4 0.1
TEATE Tetragonia tetragonioides (Pall.) Kuntze Aizoaceae D 1 1 0.0
TEPNO Tephrosia noctiflora Bojer ex Baker Fabaceae D 8 7 0.2
TERLA Teramnus labialis (L.f.) Spreng. Fabaceae D 1 1 0.1
THMQU Themeda quadrivalvis (L.) Kuntze Poaceae M 2 2 0.6
TOPMA Tropaeolum majus L. Tropaeolaceae D 2 2 0.1
TRBCI Tribulus cistoides L. Zygophyllaceae D 4 4 0.1
TREOR Trema orientale (L.) Blume Cannabaceae D 1 1 0.1
TRHZE Trichodesma zeylanicum (Burm.f.) R.Br. Boraginaceae D 4 4 0.3
TRTPO Trianthema portulacastrum L. Aizoaceae D 9 8 0.2
TTRCR Crocosmia × crocosmiiflora (Lemoine)
TYPAR Phalaris arundinacea L. Poaceae M 1 1 0.0
UOUJA Youngia japonica (L.) DC. Asteraceae D 6 6 0.2
URNLO Urena lobata L. Malvaceae D 6 6 0.1
VENCI Cyanthillium cinereum (L.) H.Rob. Asteraceae D 8 7 0.2
6.5.4 Fréquence et recouvrement des espèces (triées par fréquence)
Code : EPPO ; cl. : classe (M : Monocotylédones ; D : Dicotylédones)
FA : fréquence absolue ; FR : fréquence relative ; Rm : recouvrement moyen
SOLAM Solanum americanum Mill. Solanaceae D 85 79 7.6
AMASS Amaranthus spp. Amaranthaceae D 58 54 5.6
SIKOR Sigesbeckia orientalis L. Asteraceae D 55 51 3.2
BIDPI Bidens pilosa L. Asteraceae D 49 45 1.3
CRIMI Cardiospermum microcarpum Kunth Sapindaceae D 42 39 1.6
AGECO Ageratum conyzoides L. Asteraceae D 41 38 2.9
EPHHL Euphorbia heterophylla L. Euphorbiaceae D 40 37 2.7
PANMA Panicum maximum Jacq. Poaceae M 40 37 2.0
MOMCH Momordica charantia L. Cucurbitaceae D 40 37 1.0
COMBE Commelina benghalensis L. Commelinaceae M 38 35 1.0
CYPRO Cyperus rotundus L. Cyperaceae M 37 34 3.7
IPONI Ipomoea nil (L.) Roth Convolvulaceae D 35 32 1.4
IPOOB Ipomoea obscura (L.) Ker-Gawler Convolvulaceae D 35 32 1.4
IPOHF Ipomoea hederifolia L. Convolvulaceae D 33 31 2.9
OXACO Oxalis corniculata L. Oxalidaceae D 33 31 1.0
AMASS Amaranthus sp. Amaranthaceae D 31 29 2.9
POROL Portulaca oleracea L. Portulacaceae D 30 28 1.2
ROOEX Rottboellia cochinchinensis (Lour.) W.Clayton Poaceae M 29 27 2.8
CRSCR Crassocephalum crepidioides (Benth.)
ARGME Argemone mexicana L. Papaveraceae D 25 23 1.5
ELEIN Eleusine indica (L.) Gaertn. Poaceae M 24 22 1.9
PYLNO Phyllanthus niruroides Müll.Arg. Phyllanthaceae D 23 21 1.2
SETPU Setaria pumila (Poir.) Roem. & Schult. Poaceae M 22 20 2.4
PASSC Paspalum scrobiculatum L. Poaceae M 22 20 0.9
SETBA Setaria barbata (Lam.) Kunth Poaceae M 21 19 1.6
IPOER Ipomoea eriocarpa R.Br. Convolvulaceae D 21 19 1.2
AMADU Amaranthus dubius H.Martius ex Thell. Amaranthaceae D 20 19 2.2
PYLAM Phyllanthus amarus Schumach. & Thonn. Phyllanthaceae D 19 18 0.5
PAQFO Passiflora foetida L. Passifloraceae D 18 17 0.4
OXALA Oxalis latifolia Kunth Oxalidaceae D 17 16 0.9
BOOTE Bothriospermum tenellum (Hornem.) Fisch. &
C.A.Mey. Boraginaceae D 17 16 0.6
DEMVI Desmanthus virgatus (L.) Willd. Fabaceae D 17 16 0.5
DIGSS Digitaria sp. Poaceae M 17 16 0.4
OXACB Oxalis debilis var. corymbosa (DC.) Lourteig Oxalidaceae D 17 16 0.4
MIMPU Mimosa pudica L. Fabaceae D 16 15 0.8
KYLEL Kyllinga erecta Schumach. Cyperaceae M 15 14 0.4
PASPA Paspalum paniculatum L. Poaceae M 15 14 0.3
COPDI Lepidium didymum L. Brassicaceae D 15 14 0.2
COMDI Commelina diffusa Burm.f. Commelinaceae M 14 13 0.3
EMISO Emilia sonchifolia (L.) DC. ex DC. Asteraceae D 14 13 0.3
SIDAL Sida rhombifolia subsp. alnifolia (L.) Ugbor. Malvaceae D 14 13 0.3
CYPXX Cyperaceae Cyperaceae M 13 12 0.7
CASOC Senna occidentalis (L.) Roxb. Fabaceae D 13 12 0.3
HIBSU Hibiscus surattensis L. Malvaceae D 13 12 0.3
MAVCO Malvastrum coromandelianum (L.) Garcke Malvaceae D 12 11 0.3
FUMMU Fumaria muralis Sond. ex Koch Papaveraceae D 11 10 0.7
LYPES Solanum lycopersicum L. Solanaceae D 11 10 0.1
GNAPU Gamochaeta purpurea (L.) Cabrera Asteraceae D 10 9 0.4
DRYCO Drymaria cordata (L) Willd.ex Roem. &Schult Caryophyllaceae D 10 9 0.3
SORAR Sorghum arundinaceum (Desv.) Stapf Poaceae M 10 9 0.1
CONAE Distimake aegyptius (L.) A.R.Simões &
Staples Convolvulaceae D 9 8 0.9
GASPA Galinsoga parviflora Cav. Asteraceae D 9 8 0.5
CNNIN Canna indica L. Cannaceae M 9 8 0.2
PTNHY Parthenium hysterophorus L. Asteraceae D 9 8 0.2
TRTPO Trianthema portulacastrum L. Aizoaceae D 9 8 0.2
CLLAS Centella asiatica (L.) Urb. Apiaceae D 9 8 0.1
CYPES Cyperus esculentus L. Cyperaceae M 8 7 1.2
PYLTE Phyllanthus tenellus Roxb. Phyllanthaceae D 8 7 0.3
STCUR Stachytarpheta urticifolia (Salisb.) Sims Verbenaceae D 8 7 0.3
MEOPY Melochia pyramidata L. Malvaceae D 8 7 0.2
PHTAM Phytolacca americana L. Phytolaccaceae D 8 7 0.2
SONOL Sonchus oleraceus L. Asteraceae D 8 7 0.2
TEPNO Tephrosia noctiflora Bojer ex Baker Fabaceae D 8 7 0.2
VENCI Cyanthillium cinereum (L.) H.Rob. Asteraceae D 8 7 0.2
SOLMR Solanum mauritianum Scop. Solanaceae D 8 7 0.1
AMAVI Amaranthus viridis L. Amaranthaceae D 7 6 0.4
COSSS Centrosema sp. Fabaceae D 7 6 0.4
NICPH Nicandra physalodes (L.) Gaertn. Solanaceae D 7 6 0.4
CVTRE Crotalaria retusa L. Fabaceae D 7 6 0.3
CXSES Colocasia esculenta (L.) Schott Araceae M 7 6 0.3
LUAGL Leucaena leucocephala (Lam.) de Wit Fabaceae D 7 6 0.3
MUCPR Mucuna pruriens (L.) DC. Fabaceae D 7 6 0.3
PLALA Plantago lanceolata L. Plantaginaceae D 7 6 0.3
IPOTR Ipomoea triloba L. Convolvulaceae D 7 6 0.2
ARTVU Artemisia verlotiorum Lamotte Asteraceae D 7 6 0.1
ERISU Erigeron sumatrensis Retz. Asteraceae D 7 6 0.1
DTTAE Dactyloctenium aegyptium (L.) P.Beauv. Poaceae M 6 6 0.5
LEVLA Leucas lavandulifolia Sm. Lamiaceae D 6 6 0.3
UOUJA Youngia japonica (L.) DC. Asteraceae D 6 6 0.2
APULE Cyclospermum leptophyllum (Pers.) Eichler Apiaceae D 6 6 0.1
ECHCO Echinochloa colona (L.) Link Poaceae M 6 6 0.1
URNLO Urena lobata L. Malvaceae D 6 6 0.1
ALLNE Allium neapolitanum Cirillo Amaryllidaceae M 5 5 0.3
SIDGT Sida glabra Mill. Malvaceae D 5 5 0.1
TRHZE Trichodesma zeylanicum (Burm.f.) R.Br. Boraginaceae D 4 4 0.3
CYNDA Cynodon dactylon (L.) Pers. Poaceae M 4 4 0.2
HEOAM Heliotropium amplexicaule Vahl Boraginaceae D 4 4 0.2
EPHPE Euphorbia peplus L. Euphorbiaceae D 4 4 0.1
MIMIN Mimosa diplotricha Sauvalle Fabaceae D 4 4 0.1
SIDLB Sida alba L. Malvaceae D 4 4 0.1
SOLTO Solanum torvum Sw. Solanaceae D 4 4 0.1
SYDNO Synedrella nodiflora (L.) Gaertn. Asteraceae D 4 4 0.1
TRBCI Tribulus cistoides L. Zygophyllaceae D 4 4 0.1
ACYAS Achyranthes aspera L. Amaranthaceae D 4 4 0.0
BRASS Brachiaria sp. Poaceae M 4 4 0.0
LANCA Lantana camara L. Verbenaceae D 4 4 0.0
RAPRA Raphanus raphanistrum L. Brassicaceae D 3 3 0.3
DEDIN Desmodium intortum (Mill.) Urb. Fabaceae D 3 3 0.2
FIMSS Fimbristylis sp. Cyperaceae M 3 3 0.2
ASYCO Asystasia gangetica (L.) T.Anderson Acanthaceae D 3 3 0.1
ATYSC Cajanus scarabaeoides (L.) Thouars Fabaceae D 3 3 0.1
LISGU Litsea glutinosa (Lour.) C.Rob. Lauraceae D 3 3 0.1
LUDOC Ludwigia octovalvis (Jacq.) Raven Onagraceae D 3 3 0.1
PASDI Paspalum dilatatum Poir. Poaceae M 3 3 0.1
PASUR Paspalum urvillei Steud. Poaceae M 3 3 0.1
RHNSE Rhynchosia malacophylla (Spreng.) Bojer Fabaceae D 3 3 0.1
RUMSS Rumex sp. Polygonaceae D 3 3 0.1
EPHHI Euphorbia hirta L. Euphorbiaceae D 3 3 0.0
RHYRE Melinis repens (Willd.) Zizka Poaceae M 3 3 0.0
THMQU Themeda quadrivalvis (L.) Kuntze Poaceae M 2 2 0.6
CYPDT Cyperus distans L.f. Cyperaceae M 2 2 0.3
DIMRE Dinebra retroflexa (Vahl) Panzer Poaceae M 2 2 0.3
SETVE Setaria verticillata (L.) P.Beauv. Poaceae M 2 2 0.2
STEME Stellaria media (L.)Vill. Caryophyllaceae D 2 2 0.2
CVNBO Croton bonplandianus Baill. Euphorbiaceae D 2 2 0.1
DATIN Datura innoxia Mill. Solanaceae D 2 2 0.1
ELPMO Elephantopus mollis Kunth Asteraceae D 2 2 0.1
LAPCO Lapsana communis L. Asteraceae D 2 2 0.1
RUBAC Rubus alceifolius Poir. Rosaceae D 2 2 0.1
SEBCA Sesbania cannabina (Retz.) Poir. Fabaceae D 2 2 0.1
TOPMA Tropaeolum majus L. Tropaeolaceae D 2 2 0.1
BROCA Bromus catharticus Vahl Poaceae M 2 2 0.0
CARHI Cardamine hirsuta L. Brassicaceae D 2 2 0.0
CASOB Senna obtusifolia (L.) H.S.Irwin & Barneby Fabaceae D 2 2 0.0
CHEAM Dysphania ambrosioides (L.) Mosyakin &
Clemants Amaranthaceae D 2 2 0.0
CYHPR Cyathula prostrata (L.) Blume Amaranthaceae D 2 2 0.0
EPHHS Euphorbia hyssopifolia L. Euphorbiaceae D 2 2 0.0
LACIN Lactuca indica L. Asteraceae D 2 2 0.0
MIBJA Mirabilis jalapa L. Nyctaginaceae D 2 2 0.0
PAEFO Paederia foetida L. Rubiaceae D 2 2 0.0
PAQSU Passiflora suberosa L. Passifloraceae D 2 2 0.0
PHBPU Ipomoea purpurea (L.) Roth Convolvulaceae D 2 2 0.0
SEBSS Sesbania sp. Fabaceae D 2 2 0.0
SIDRR Sida rhombifolia subsp. retusa (L.)
Borss.Waalk. Malvaceae D 2 2 0.0
CHRGA Chloris gayana Kunth Poaceae M 1 1 0.1
DEDUN Desmodium uncinatum (Jacq.) DC. Fabaceae D 1 1 0.1
HPYPE Hyptis pectinata (L.) Poit. Lamiaceae D 1 1 0.1
MRRDI Merremia dissecta (Jacq.) Hallier f. Convolvulaceae D 1 1 0.1
OXATE Oxalis tetraphylla Cav. Oxalidaceae D 1 1 0.1
PYCPO Pycreus polystachyos (Rottb.) P.Beauv. Cyperaceae M 1 1 0.1
STCJA Stachytarpheta jamaicensis (L.) Vahl Verbenaceae D 1 1 0.1
TERLA Teramnus labialis (L.f.) Spreng. Fabaceae D 1 1 0.1
TREOR Trema orientale (L.) Blume Cannabaceae D 1 1 0.1
BIGUC Dolic

Documents

La flore des mauvaises herbes de la Canne à Sucre ... - Cirad