MANUEL DE PRELEVEMENT - mediplusonline.fr · 3.3.2 Prélèvements vaginaux chez la femme ... Les préconisations patients sont disponibles sur notre site internet , dans le

Manuel de Prélèvements MEDI + PG-MU0-078-03 – Version 3

PHOTOCOPIE INTERDITE SANS AUTORISATION 1 /57

M A N U E L D E

PR E L E V E M E N T

DOCUMENT A DIFFUSION MAITRISEE

Remis le : …./..../.........

à ............................................................................................................. (Nom du receveur)

par .......................................................................................................... (Nom du donneur)

en …... exemplaire(s)

Signature du donneur :

Je m'engage à restituer tous les exemplaires de ce document sur simple demande du laboratoire,

notamment en cas d'évolution de version. Je m'engage également à signaler au laboratoire dans les

plus brefs délais toute perte d'un ou plusieurs exemplaires de ce document.

Signature du receveur :



Table des matières1 RECOMMANDATIONS GÉNÉRALES ......................................................................... 4

1.1 Pourquoi être à jeun ? .................................................................................................. 4

1.2 Pourquoi prélever à certaines heures ? ........................................................................ 4 1.3 Analyses nécessitant des conditions particulières ....................................................... 4 1.4 Comment et pourquoi identifier le prélèvement et les Fiches de prélèvement de biologie

médicale ? .......................................................................................................................... 4 1.4.1 Identification minimale des prélèvements et échantillon transmis............ 4

A Identification des tubes ou des échantillons ......................................... 4 B Sur la feuille de suivi (feuille dite de transmission) ............................. 5

1.4.2 Fiches de prélèvement de biologie médicale ............................................. 5 1.4.3 Fiche de consentement pour les examens génétiques................................ 5

1.5 Comment gérer les demandes d'examens sans ordonnance ........................................ 5

2 LES DIFFÉRENTS TYPES DE RECUEILS ET LA PRÉPARATION DU PATIENT ................. 6

2.1 Préconisations patients ................................................................................................ 6

2.2 Les tests dynamiques ................................................................................................... 6 2.2.1 HGPO (HyperGlycémie Provoquée par voie Orale) ............................ 6 2.2.2 Test de O’Sullivan ................................................................................... 6

2.2.3 Dosage de la Prolactine ........................................................................... 7 2.2.4 Test à la LH RH (*) ................................................................................. 7 2.2.5 Test à la TRH (*) avec dosages de la Prolactine, de la TSH ou de la GH 7 2.2.6 Test au Synacthène (*) avec dosage de cortisol et/ou 17OHprogestérone. 8

2.2.7 Test au peptide C (*) avec dosage de glucose et peptide C .................. 8 2.2.8 Dosages de Rénine ou aldostérone debout et couché ............................ 8

2.2.9 Hélikit ....................................................................................................... 8 2.3 Les suivis thérapeutiques ............................................................................................ 8 2.4 Formulaires de consentement ...................................................................................... 9

3 LES PRÉLÈVEMENTS ............................................................................................ 10

3.1 Les prélèvements veineux ......................................................................................... 10 3.1.1 Matériel utilisé : ....................................................................................... 10 3.1.2 Avant le prélèvement ............................................................................... 10

A Préleveurs externes (infirmières libérales) ......................................... 10 B Préleveurs internes ............................................................................. 12

3.1.3 Choix des tubes : ..................................................................................... 12 3.1.4 Modalités des prélèvements sanguins ..................................................... 12

3.2 Protocoles particuliers ............................................................................................... 13 3.2.1 Temps de saignement .............................................................................. 13

3.2.2 Prélèvements pour hémoculture (*)......................................................... 14 3.2.3 Paludisme (*) ........................................................................................... 14 3.2.4 Gaz du sang ............................................................................................. 15

3.3 Les prélèvements bactériologiques ........................................................................... 16

3.3.1 Généralités ............................................................................................... 16 A Salle de prélèvement bactériologique ................................................. 16 B Responsabilités ................................................................................... 16

C Matériel utilisé .................................................................................... 16 3.3.2 Prélèvements vaginaux chez la femme ................................................... 17 3.3.3 Prélèvement urétraux chez l'homme ........................................................ 18 3.3.4 Autres prélèvements de la sphère uro-génitale ........................................ 19

A Prélèvement urétral chez la femme .................................................... 19

B Pour la recherche de l’Herpès : .......................................................... 19 C Recherche de Papillomavirus chez la femme ..................................... 19



D Autres prélèvements bactériologiques de la région périnéale (prépuce, vulve, péri-

anal...) : code PEAU .................................................................................... 19 3.3.5 Autres prélèvements bactériologiques ..................................................... 19

A Prélèvement de peau ........................................................................... 19 B ECBU, coproculture, crachats ............................................................ 20 C Prélèvements ORL, oculaires ............................................................. 20

D Autres prélèvements bactériologiques ................................................ 20 3.4 Les prélèvements mycologiques, parasitologiques, virologiques ............................. 20

3.4.1 Recherche de dermatophytes sur la peau................................................. 20 3.4.2 Recherche de dermatophytes au niveau des ongles ................................. 20 3.4.3 Recherche de dermatophytes au niveau du cuir chevelu (teigne) ........... 21

3.4.4 Test de Graham (recherche d'oxyures par scotch test) ............................ 21 3.4.5 Recherche de Demodex folliculorum ...................................................... 21 3.4.6 Recherche de gale (Sarcoptes scabiei) .................................................... 21 3.4.7 Recherche de Pytiriasis versicolor par scotch-test .................................. 21 3.4.8 Recherche d’Herpès virus : ..................................................................... 22

3.5 Frottis cervico-vaginal ............................................................................................... 22 3.5.1 Généralités ............................................................................................... 22

A Salle de prélèvement bactériologique ................................................. 22 B Responsabilités ................................................................................... 22 C Matériel utilisé .................................................................................... 22

3.5.2 Déroulement ............................................................................................ 22

4 CONSERVATION ET TRANSPORT DES ÉCHANTILLONS ........................................... 23

5 LISTE DES PRINCIPALES ANALYSES MEDI + ....................................................... 23

6 CATALOGUE DES PRINCIPALES ANALYSES TRANSMISES ET EFFECTUÉES PAR LES

LABORATOIRES SOUS TRAITANTS ........................................................................... 23

7 CONDUITE À TENIR EN CAS D'INCIDENT DE PRÉLÈVEMENT OU D'ACCIDENT

D'EXPOSITION AU SANG .......................................................................................... 24

8 INTÉRÊT CLINIQUE DES EXAMENS DE ROUTINE .................................................... 25

9 ANNEXES ............................................................................................................ 26

9.1 Annexe : Liste des analyses MEDI + ........................................................................ 26 9.2 Annexe : Liste des analyses à conditions particulières (SFBC 2011) ....................... 28

Analyses nécessitant un horaire particulier (rythme nycthéméral) ....................... 28

Analyses nécessitant un régime alimentaire particulier ........................................ 30 Autres analyses à conditions particulières ................................................... 30

9.3 Annexe : liste des principales interférences et variations physiopathologiques ....... 34 9.4 Annexe : Fiche de prélèvement de biologie médicale ............................................... 44 9.5 Annexe : Conservation pré-analytique des échantillons biologiques ........................ 45

Chimie-Enzymologie sanguine ....................................................................................... 45 Hormones sanguines ....................................................................................................... 48

Marqueurs protéines ........................................................................................................ 49 Hématologie .................................................................................................................... 50

Hémostase ....................................................................................................................... 51 Immunohématologie ........................................................................................................ 52 Médicaments toxiques ..................................................................................................... 52

Biologie du LCR ............................................................................................................. 52 Gazométrie artérielle ....................................................................................................... 53

Chimie-Enzymologie urinaire ......................................................................................... 53 Microbiologie .................................................................................................................. 54 9.6 Annexe : élimination des déchets .............................................................................. 57



Ce manuel a pour objectif de guider les préleveurs dans leurs pratiques quotidiennes. Il permet

d'avoir une vue d'ensemble de l'organisation mise en place au sein du laboratoire afin que les

examens soient réalisés dans des conditions optimales.

1 Recommandations générales

1.1 Pourquoi être à jeun ?

Extrait de la plaquette d'information 2008 créée par Bio-Log et LABAC (Association des

Laboratoires d'Analyses de Biologie Accrédités COFRAC)

Certains dosages varient après le repas parce que l’alimentation apporte elle-même certains

des éléments dosés (ex : tri glycérides, glucose, …)

Après un repas, la qualité du sérum ou du plasma est modifiée (trouble, viscosité).

Ces modifications de la qualité des prélèvements peuvent perturber le fonctionnement des

appareils d’analyse de plus en plus sensibles et précis.

De manière générale, le jeûne est recommandé pour l’ensemble des analyses.

Voir en annexe 9.3 « Liste des principales interférences et variations physiopathologiques »

1.2 Pourquoi prélever à certaines heures ?

Le cycle nycthéméral a une influence importante sur certains paramètres biologiques (ex : cortisol,

prolactine) et dans ce cas le prélèvement doit être fait à des heures particulières de la journée. Pour

d’autres paramètres, l’influence est modérée mais réelle.

1.3 Analyses nécessitant des conditions particulières

Voir en Annexe 9.2 « Liste des analyses à conditions particulières »

1.4 Comment et pourquoi identifier le prélèvement et les Fiches de prélèvement de

biologie médicale ?

(annexe 9.4 « Fiches de prélèvement de biologie médicale »)

1.4.1 Identification minimale des prélèvements et échantillon transmis

Toutes les précautions doivent être prises pour identifier correctement le patient y compris en

établissement de santé (utilisation de bracelets électroniques...).

Quelque soit l’analyse, doivent impérativement figurer :

A Identification des tubes ou des échantillons

sexe, nom, prénom, DDN +/- nom de JF



B Sur la feuille de suivi (feuille dite de transmission)

patient : nom, prénom, DDN, +/- nom de JF, adresse, sexe +/- téléphone

date et heure de prélèvement

identification du pré leveur

identification du prescripteur

nombre de tubes prélevés et nature du prélèvement (case : sang, urines, autre)

transmission des résultats : urgent, à téléphoner, à faxer, à poster, pharmacie, laboratoire

renseignements cliniques (Traitement par AVK, héparinothérapie, dosage des médicaments,

DDR, autres)

Ces indications, vérifiées par le préleveur doivent être parfaitement lisibles.

Ces éléments sont utilisés pour différencier les homonymes, lier le patient à ses antériorités et

attribuer les valeurs de références adaptées (homme, femme, enfant).

« Attention certains patients peuvent présenter les mêmes nom, prénom et date de naissance, d’où la

nécessité de préciser l’adresse et voire le lieu de naissance, pour la validation des cartes de

groupages sanguins ».

L’absence ou l’erreur d’identification du prélèvement ou de l’échantillon constitue un critère de

non-conformité et est enregistrée comme telle dans le système qualité des laboratoires : elle peut

entraîner la non-exécution des actes.

1.4.2 Fiches de prélèvement de biologie médicale

Associées aux échantillons, elles sont obligatoires. Elles sont mises à disposition dans les boites de

prélèvements.

Nous vous demandons de les compléter et d’y préciser tous renseignements cliniques et

thérapeutiques susceptibles d’aider à la compréhension des résultats des analyses.

1.4.3 Fiche de consentement pour les examens génétiques

Elle est spécifique pour les examens de génétique et de dépistage de la Trisomie 21 Fœtale par les

marqueurs sériques maternels. Si nécessaire, le laboratoire peut à votre demande vous en fournir.

1.5 Comment gérer les demandes d'examens sans ordonnance

Le document « Enregistrement des demandes formulées oralement » (DE-MU0-357) doit être

rempli par le patient responsable majeur après qu'il ait pris connaissance des modalités du

prélèvement et de rendu des résultats, du montant à payer...

A noter qu'il convient d'obtenir le nom du médecin traitant (indispensable pour les sérologies

HIV) pour avoir un correspondant médical en cas de résultats pathologiques.



2 Les différents types de recueils et la préparation du patient

2.1 Préconisations patients

Les préconisations patients sont disponibles sur notre site internet www.mediplusonline.fr, dans le

rubrique « Les analyses ».

2.2 Les tests dynamiques

Certains examens nécessitent de prévoir un temps de réalisation plus ou moins important (ex :

HGPO), ou un jour précis. Pour l’ensemble de ces tests, la réalisation au laboratoire est

recommandée.

Faire les temps indiqués sur l’ordonnance. En l’absence d’indication, il est préférable de vérifier

auprès du prescripteur les temps souhaités.

2.2.1 HGPO (HyperGlycémie Provoquée par voie Orale)

But du test : stimuler la sécrétion d’insuline et freiner la sécrétion hypophysaire de la GH.

Indications : dépistage des états diabétiques, évaluation de l’insulino-sécrétion, diagnostic de

l’acromégalie et suivi thérapeutique, confirmation de diabète gestationnel, diagnostic étiologique

des hypoglycémies.

Dosage : glycémies à 4 temps différents pour les femmes enceintes et les autres patients.

Modalités de l’examen :

Le patient doit être à jeun depuis 10 h.

Administrer par voie orale :

▪ 75 g de glucose chez l'adulte

▪ 1,75 g/kg de poids corporel (sans dépasser 75g) chez l'enfant

Prélever de nouveau aux temps :

▪ 60, 120 minutes pour la femme enceinte.

▪ 30, 60, 90, 120, 150 et 180 minutes pour les autres patients.

Recueil des urines : 0, 60, 120 et 180 minutes (pour 75g de glucose - absence de

recueil pour les femmes enceintes).

2.2.2 Test de O’Sullivan

Principe : évaluation de la glycorégulation.

Indications : dépistage du diabète gestationnel.

Dosage : glycémie.

Modalité de l’examen :

La patiente doit être à jeun de préférence

Prélever un tube fluorure pour une glycémie initiale.

Administrer à la patiente par voie orale 50 g de glucose (T0).

Laisser la patiente au repos pendant une heure. Si la patiente ne désire pas rester au

laboratoire, lui faire signer une décharge.

Prélever un tube fluorure une heure après ingestion du glucose (T60).

http://www.mediplusonline.fr/



2.2.3 Dosage de la Prolactine

Le prélèvement doit être effectué à jeun, entre 8 heures et 12 heures, chez un sujet au repos depuis

au moins 15 minutes et non stressé.

Différentes méthodes de prélèvement peuvent être utilisées :

1/Prolactine après repos pendant (15-20min).

mettre le patient au repos pendant 15-20mn

prélever à T + 20 minutes.

2/ Prolactine poolée

Prélever au temps T0

Mettre la patiente au repos puis prélever aux temps 15 et 30 min.

Un seul dosage sera réalisé après mélange des trois sérums prélevés à T0 et

T15 et T30 minutes.

3/ Test à la TRH avec dosage de prolactine

voir test au TRH

2.2.4 Test à la LH RH (*)

Prise de rendez-vous indispensable : ce test est réalisé par une infirmière ou un médecin biologiste

Chez la femme, le prélèvement doit se faire dans la première partie du cycle (entre J3 et J5),

sans traitement œstroprogestatif (arrêter depuis 1 mois minimum, de préférence 2 mois), et

ne pas être enceinte.

Patiente à jeun et au repos

T0 :

◦ Prélever 1 tube

Injecter en intraveineuse 100mg de LH-RH Stimu-LH (délivrée en Pharmacie hospitalière sur

ordonnance et apportée par le patient)

à T+ 30 et à T+ 60 minutes : Prélevement

2.2.5 Test à la TRH (*) avec dosages de la Prolactine, de la TSH ou de la GH

Prise de rendez-vous obligatoire : ce test est réalisé par une infirmière ou un médecin

biologiste

Entre J3 et J5 du cycle, sans traitement œstroprogestatif depuis 1 mois.

Patient à jeun et au repos depuis 30 minutes.

prélèvement T0, T+30 et T+ 60 minutes.

T0 :

Prélever 1 tube

Injecter en intraveineuse lente (1 à 2 minutes) 250mg de stimu-TSH (délivrée en

pharmacie hospitalière sur ordonnance, apportée par le patient)

à T+ 30 et à T+ 60 minutes : Prélevement



2.2.6 Test au Synacthène (*) avec dosage de cortisol et/ou 17OHprogestérone.

Prise de rendez-vous indispensable : le test est effectué par une infirmière ou un médecin biologiste.

Patient à jeun, au repos depuis 15 minutes

Prélever au temps T0 aussi proche que possible de 8 heures du matin

Injecter en intramusculaire une ampoule de synacthène immédiat (0, 25 mg) prescrite

par le médecin et apportée par le patient. (Injection IV si patient sous AVK)

Prélever ensuite aux temps T + 30 minutes et T + 60 minutes en respectant la

prescription, le patient étant resté au repos dans l’intervalle de temps.

Contre-indications : asthme et sujets allergiques.

2.2.7 Test au peptide C (*) avec dosage de glucose et peptide C

Prise de rendez-vous indispensable : le test est effectué par une infirmière ou un médecin biologiste.

Patient à jeun.

Prélever au temps T0.

Injecter en intraveineuse une ampoule de glucagon (1 mg) prescrite par le médecin et

apportée par le patient.

Prélever ensuite aux temps T + 10 minutes et T + 30 minutes.

Si test long : T0, T+30, T+60, T+120, T+180 et T+240 minutes.

2.2.8 Dosages de Rénine ou aldostérone debout et couché

Le patient reste allongé au laboratoire pendant 1 à 2 heure (selon ordonnance) puis on effectue la

1ère prise de sang. Le patient marche ensuite 1 heure et l’on effectue la seconde prise de sang.cf

annexe 9.2 “ Conditions particulières et liste des interférences alimentaires et médicamenteuses “

2.2.9 Hélikit

Buts du test : recherche de présence d’Helicobacter pilori, suivi thérapeutique.

Dosage : envoyé au laboratoire Cerba

Conditions initiales :

être à jeun

ne pas fumer

arrêt du traitement avant la réalisation du test :

- inhibiteurs pompe à protons (IPP) 2 semaines avant (Mopral®, Inexium®, Lanzor®,

Ogast®, Eupantol®, Inipomp®, Pariet®)

- antibiotique 4 semaines avant

Mise en œuvre :

- Suivre les indications du kit.

2.3 Les suivis thérapeutiques

Voir annexe 9.2« Liste des analyses à conditions particulières »



2.4 Formulaires de consentement

- Pour les demandes d’analyses sans ordonnance, le formulaire de consentement qui s’édite à

l’enregistrement doit être rempli par le patient responsable majeur après qu’il ait pris

connaissance des modalités du prélèvement et du rendu des résultats, du montant à payer…

A noter qu’il convient d’obtenir le nom du médecin traitant (indispensable pour les

sérologies HIV) pour avoir un correspondant médical en cas de résultats pathologiques.

- Le formulaire de consentement est spécifique pour les examens de génétique et de dépistage

de la Trisomie 21 Foetale par les marqueurs sériques maternels. Si nécessaire, le laboratoire

peut à votre demande vous en fournir.

Voici les liens vers :

o Consentement en vue d'un examen génétique

o Dépistage sanguin du risque accru de trisomie 21 fœtale

Liens vers :

Génotypage Rhésus foetal D

Consentement Cerba

Procédure à respecter pour un Caryotype post-natal

Etude du gène CFTR (mucoviscidose)

https://a603e22820d6599698e0-bbdb7f161ccb31c1097f44a65e0e3b52.ssl.cf3.rackcdn.com/167_bpr_10326_1484562081838.pdf

http://arnaud-origet.oxatis.com/Files/31346/12837281949510.pdf

http://www.lab-cerba.com/genetique/FDARHD.pdf

http://www.lab-cerba.com/images/espace_medecin/CONSSG.pdf

http://www.lab-cerba.com/images/espace_medecin/PROADU.pdf

http://www.lab-cerba.com/images/espace_medecin/GNCFTR.pdf



3 Les prélèvements

3.1 Les prélèvements veineux

3.1.1 Matériel utilisé :

Corps de pompe

Garrot, coton conditionné

Aiguilles, embouts, flacons stériles

Seringues à usage unique : 2, 5, 10 et 20 ml montées. (IM) -cathéter- dispositif à ailettes

Tubes à prélèvements BD® Vacutainer ® :

◦ tubes secs avec activateur de la coagulation et gel 3,5 et 8,5 mL de vide (bouchon

jaune)

◦ tubes secs avec activateur de coagulation, 4ml de vide (bouchon rouge)

◦ tubes citratés 2,7 ml de vide (bouchon bleu)

◦ tubes EDTA K2, 4 ml de vide (bouchon violet)

◦ tubes héparinate de Lithium, 3ml de vide avec gel (bouchon vert pâle)

◦ tubes héparinate de Lithium sans gel, 4ml de vide (bouchon vert)

◦ tubes fluorure de sodium /EDTA disodique 4ml de vide

◦ tubes neutres sans additif (purge et fluides biologiques autres que le sang), 3ml de

vide (bouchon transparent).

Alcool 70 %, Biseptine® (pour les bébés) ou Bétadine®

Boîte récupératrice d'aiguilles et poubelle pour déchets non contaminés.

Dakin® (en cas d’Accident d'exposition au sang AES)

+/- : flacons à hémoculture (aérobies et anaérobies),

Compresses stériles, gants, Sparadrap hypoallergénique – Stéristrip®, dispositif Surgicut, adulte et

enfant, lancettes, lames, Tensiomètre, Chronomètre, Papier filtre, Thermomètre électronique

NB : avant de prendre en charge le patient, il est nécessaire de vérifier la présence de tout le

matériel indispensable au prélèvement.

3.1.2 Avant le prélèvement

A Préleveurs externes (infirmières libérales)

Le laboratoire fournit le matériel de prélèvement nécessaire dans des coffrets unitaires conformes à

l’ADR. Les « Fiches de prélèvement de biologie médicale » sont placées dans ces coffrets.

Veiller à n’utiliser que des tubes non périmés : pour vous aider, la Date Limite d’Utilisation est

visible sur l’étiquette collée sur tous les tubes. N’hésitez pas à nous retourner les coffrets anciens

pour des échanges.

Après avoir vérifié que les conditions pré-analytiques étaient satisfaisantes (jeûne…), vous pourrez

vérifier le type du tube à prélever en vous reportant au document « Choix des tubes » ci-après, que

nous vous fournirons à votre demande.



Remplissage de la Fiche de prélèvement de biologie médicale :

Compléter la Fiche de prélèvement de biologie médicale (Annexe 9.4 Fiche de prélèvement de

biologie médicale) en n’oubliant pas les indications concernant directement le patient et qui

pourraient influer sur la qualité et l’interprétation des résultats :

Jeûne

Posologie et heure de la dernière prise pour les dosages de médicaments,

Objectifs thérapeutiques (INR)

Date et heure de prélèvement

Date Dernières Règles...

Merci enfin de bien vouloir noter vos coordonnées de façon à ce que l’on puisse vous contacter en

cas de problèmes concernant le prélèvement.



B Préleveurs internes

Le préleveur, muni de l'ordonnance et de la planche d’étiquettes s'assure de l’identité du patient

(nom, prénom et date de naissance) et vérifie l’intégralité de la prescription (pas d’erreur ou oubli

paramètre), le code médecin et le suffixe « U » pour les urgents.

Il s'assure que le patient est confortablement installé et le rassure si besoin.

Il vérifie la conformité des conditions de prélèvement :

État de jeûne

Dernière prise de médicaments, ou injection (pour les héparinémies)

Périodes de repos pour les paramètres le nécessitant.

Date des dernières règles.

Il s'enquiert de l'existence d'une éventuelle thérapeutique et sollicite, si nécessaire, des informations

cliniques complémentaires et note ces informations sur la fiche de renseignements.

Il sélectionne les tubes à prélèvements (nature, contenance et nombre) en fonction des analyses

prescrites (Cf « Choix des tubes » (§ 3.1.2)) et du système veineux observé.

3.1.3 Choix des tubes :

Cf « Choix des tubes (§ 3.1.2)» et liste des analyses de Medi+ (annexe) et sur

www.mediplusonline.fr) et pour tous les examens transmis aux laboratoires Medibio

(www.medibiolab,com), BPR (www.bpr-as.com) ou CERBA, consulter les catalogues

correspondants.

3.1.4 Modalités des prélèvements sanguins

SE NETTOYER LES MAINS ENTRE CHAQUE PATIENT (SOLUTION

ANTISEPTIQUE A DISPOSITION)

Antisepsie de la peau à l'aide d'un coton imprégné de solution antiseptique.

(Si prélèvement pour alcoolémie, utiliser une lingette d’antiseptique pour prélèvement ECBU

ou de la Bétadine®)

Pose du garrot et recherche de la veine.

Utilisation d'aiguille stérile à usage unique obligatoire. Utiliser les tubes à prélèvement en

fonction des analyses prescrites (Cf « Choix des tubes » (§ 3.1.2)).

Une fois que l'on est dans la veine, desserrer le garrot, prélever le ou les tubes.

Retirer l’aiguille tout en comprimant la veine avec un coton.

Retourner délicatement plusieurs fois chaque tube (ne pas agiter)

Le patient assure la compression pendant 1 minute en temps normal et 2 à 3 minutes s’il est

sous anticoagulant (apposer un coton sec pour la compression des patients sous traitement

anticoagulant)

Pour le prélèvement à la seringue : répartir le sang dans les tubes en respectant l’ordre des tubes.

Ne jamais pousser sur le piston (risque accru d’hémolyse)

Pour les jeunes enfants, veiller à ne pas prélever plus que nécessaire. Le tube citraté utilisé en

routine présente déjà un faible volume (2,7 ml).

NB. Respecter l’ordre de prélèvement des tubes suivant :

BLEU ROUGE/JAUNE VERT MAUVE GRIS


http://www.bpr-as.com/



Le tube citrate doit impérativement être correctement rempli jusqu’à la bande dépolie. Tube de

purge si prélèvement à l’ailette.

Attention : Bouchon coiffant à refermer d' 1/4 de tour en cas de rupture du vide. Tourner et

pousser le bouchon vers le bas.

Attention, signaler une rupture du vide sur les tubes citratés (sparadrap autour du tube) car

risque d'impact sur le résultat d'hémostase

Élimination de l'aiguille : Les aiguilles doivent être obligatoirement éliminées dans les containers jaunes collecteurs à DASRI

(« Procédure d’élimination des déchets »), immédiatement après le prélèvement et au vu du patient.

Le recapuchonnage est interdit. Il est également proscrit d’introduire la main à l’intérieur du

container. Cf «Annexe 9.6 "Elimination des déchets" »

Il est rigoureusement interdit de replacer les aiguilles utilisées dans les coffrets : risque d’AES

par le personnel du laboratoire à l’ouverture du coffret.

Dans la mesure du possible, nous vous remercions de remplir complètement les tubes : le bon

remplissage des tubes est en effet un critère important dans la standardisation des conditions pré-

analytiques et donc des résultats d’analyses.

Il est à noter qu’aucune analyse ne pourra être effectuée sur un tube CITRATE (bleu) mal

rempli ou coagulé, ou sur un tube EDTA (violet) coagulé.

Identification des prélèvements

Selon la législation en vigueur, applicable à tous les préleveurs et correspondants (même externes

au laboratoire), il est impératif de noter sur TOUS les échantillons les :

Sexe

Nom

Prénom

Date de naissance

Nom de jeune fille – indispensable pour les tubes EDTA susceptibles d'être utilisés en

Immuno-Hématologie : le laboratoire devra obtenir au maximum le nom de naissance

NE PAS OUBLIER QUE TOUS LES ÉCHANTILLONS DOIVENT ÊTRE IDENTIFIÉS

AVEC SEXE, NOM, PRÉNOM, DATE DE NAISSANCE

3.2 Protocoles particuliers

3.2.1 Temps de saignement

Méthode de DUKE substituée par l’évaluation de la fonction plaquettaire par mesure du

temps d’occlusion capillaire :

Prélever un tube citraté

Homogénéiser par un seul retournement

Mettre un sparadrap autour du bouchon (pas de centrifugation)

Coller l’étiquette : TS

Transférer sur le site de Melun



3.2.2 Prélèvements pour hémoculture (*)

Matériel : 2 flacons (1 aérobie et 1 anaérobie), dispositif à ailettes ou seringue de 10cc ou corps de

pompe spécial hémoculture, compresses stériles bétadinées, thermomètre, gants.

Noter les renseignements nécessaires sur la fiche de suivi : l’heure du prélèvement,

température du patient au moment du prélèvement, l’antibiothérapie éventuelle.

Se laver les mains, mettre les gants

Réaliser le prélèvement de préférence lors d'un pic fébrile, avant le début d’une

antibiothérapie. En cas d’impossibilité, prélever l’échantillon immédiatement avant

l’administration de la dose d’antibiotique.

Retirer la capsule en plastique, désinfecter soigneusement

Nettoyer très soigneusement le site de ponction en utilisant une compresse bétadinée.

Laisser agir l'antiseptique.

Prélèvement standard avec l’adaptateur adéquat pour les flacons : Remplir en premier le

flacon pour culture aérobie (vert) puis celui pour culture anaérobie (orange) (10 ml de sang

par flacon) puis les autres tubes éventuels.

Prélèvement à la seringue : inoculer en premier le flacon pour culture anaérobie (orange)

puis celui pour culture aérobie (vert).

Homogénéiser les flacons par 2 ou 3 retournements, les laisser à température ambiante.

3.2.3 Paludisme (*)

Noter les renseignements nécessaires sur la fiche de renseignements :

◦ Notion de fièvre

◦ Zone géographique avec date de retour

◦ Chimio- prophylaxie : nom, durée du traitement, interruption éventuelle

◦ Antécédent d’accès palustre

Prélever en systématique un tube sur EDTA

Éventuellement, réaliser un frottis à partir du sang capillaire :

Masser l’extrémité du majeur.

Désinfecter avec de l’alcool à 70 °.

Piquer la pulpe du doigt avec un vaccinostyle.

Recueillir une goutte sur deux lames différentes et réaliser les étirements pour les

frottis sanguins.

Sécher le doigt du patient.

Identifier les lames et les apporter rapidement en technique.



3.2.4 Gaz du sang

Ponction :

Noter la température du patient

Remplir bon d'examen, date et heure, T°, service, conditions d'oxygénation (attendre 15 à

30 minutes si le patient vient d'être placé sous oxygène)

Se laver les mains

Préparer le matériel

Mettre le poignet du patient en extension et repérer l’artère radiale avec le majeur et l'index

Asepsie rigoureuse et large de la zone à ponctionner d'un mouvement circulaire (compresses

stériles bétadinées)

Attendre une minute de temps de contact

Mettre les gants non stériles et en bétadiner les doigts servant à repérer l'artère

Lorsque l' artère est perçue avec ses 2 doigts, ponctionner obliquement à 45 °, la pointe de

l’aiguille face au courant artériel.(biseau vers le haut)

Ponctionner progressivement jusqu’à l’apparition de sang rouge vif rythmé par le pouls dans

la seringue. Il est inutile de tirer sur le piston car la pression artérielle permet au sang de

monter dans la seringue

Prélever 2 à 3 ml de sang (minimum 1 ml)

Retirer l’aiguille et comprimer immédiatement l’artère pendant 5 min avec une compresse

imbibée d’antiseptique

Chasser les bulles d'air de la seringue en la tapotant juste après le prélèvement et avant

l'homogénéisation

Obturer la seringue avec un bouchon

Poser un pansement compressif non circulaire sur l’artère

Identifier la seringue et la placer dans un sachet. Y associer le bon de labo

Transmissions et transport de la seringue au labo immédiatement



3.3 Les prélèvements bactériologiques

3.3.1 Généralités

A Salle de prélèvement bactériologique

Elle est verrouillable et garantit une isolation phonique et visuelle.

Une propreté rigoureuse des locaux et ustensiles doit y régner (poubelles spécifiques pour

déchets et papiers jetables).

B Responsabilités

Les prélèvements sont réalisés sous la responsabilité du biologiste et sont pratiqués par le

personnel autorisé (cf procédure « prélèvements »).

Lorsque le prélèvement est effectué par le patient, la personne présente à l’accueil remet les

préconisations et le matériel nécessaires.

C Matériel utilisé

gants à usage unique : LE PORT DES GANTS EST OBLIGATOIRE

spéculum stérile en plastique à usage unique pour les prélèvements vaginaux

écouvillons gélosés, écouvillon sec (pour la lame, la mesure du pH, l'examen direct)

ou milieux de type e-swab

éventuellement, milieu de transport et écouvillons spéciaux pour la recherche de

Chlamydiae et mycoplasmes

papier pH pour les prélèvements vaginaux

lames

la FEUILLE DE RENSEIGNEMENTS DOIT ÊTRE COMPLÉTÉE au moment du

prélèvement

LES ECHANTILLONS ET LES LAMES DOIVENT IMPERATIVEMENT ETRE

IDENTIFIES

L’horodatage du prélèvement ou du recueil, de l’acheminent et de la réception de chaque

échantillon au laboratoire ainsi que l’identification de toutes les personnes qui

accomplissent ces tâches sont essentiels



3.3.2 Prélèvements vaginaux chez la femme

Installer la patiente en position gynécologique

le préleveur vérifie que la patiente n'a pas effectué de toilette intime ni appliqué de

traitement local (crème, ovules, gels, savons...) avant le prélèvement

Éviter de prélever lors de la période menstruelle car la flore est modifiée : reporter l'examen

en cas de saignements abondants

En cas de difficultés pour visualiser le col, demander à la patiente de placer ses poings serrés

sous ses fesses avant de réintroduire le spéculum.

Le prélèvement doit être réalisé avant ou à distance de tout traitement antibiotique (> 2 jours

pour les germes banaux, > 15 jours pour les chlamydiae)

PENSER A TOUJOURS IDENTIFIER LES PRELEVEMENTS GRACE AUX

ETIQUETTES PATIENT (indiquer la localisation : endocol ou PV)

Recherche de streptocoque B chez la femme enceinte :

ne pas utiliser de spéculum s'il existe une notion de col modifié ou de contractions

rapprochées et en cas d'antécédent de prématurité

le prélèvement se fait au niveau du 1/3 inférieur de la cavité vaginale

Privilégier les dispositifs de type E-swab : prélever un écouvillon et le casser dans le

milieu liquide

Identifier écouvillon

Prélèvement cervico-vaginal +/- Chlamydia +/- Mycoplasmes

Prélever avec un dispositif de type E-swab :

◦ prélever un écouvillon au niveau de l'endocol et du vagin (y compris culs de sacs

vaginaux) et le casser dans le milieu liquide

◦ utiliser un écouvillon sec pour la mesure du pH

Recherche de Chlamydia :

◦ elle peut être rajoutée à l'initiative du biologiste. Chez la femme enceinte, elle n'est

faite que sur demande explicite du médecin : c’est alors le biologiste qui décide. La

recherche se fait au niveau de l'endocol mais chez la petite fille, elle peut être faite sur le

premier jet urinaire .

◦ utiliser les écouvillons fournis avec le milieu PCR-Media (bouchon jaune)

◦ le premier écouvillon sert à nettoyer le col afin d'éliminer l'excès de glaire et de

mucus. Jeter cet écouvillon après usage

◦ Introduire le deuxième écouvillon dans le canal endo-cervical, effectuer

délicatement environ 5 rotations dans le même sens en évitant le contact avec les

parois vaginales

◦ Dévisser le bouchon du milieu PCR media et introduire l'écouvillon dans le tube.

Casser l'écouvillon dans le milieu de culture (le point de cassure au niveau de la tige

est matérialisé par un trait noir)

◦ Transporter et conserver à température ambiante



Recherche de Mycoplasmes :

◦ Prélever idéalement au niveau de l'endocol un écouvillon sec qui sera déchargé dans

le flacon de transport

Prélèvement vaginal seul

Chez l'enfant et la jeune vierge : le prélèvement se fait sans spéculum, en dégageant

bien, manuellement, la fente vaginale et en introduisant directement les écouvillons.

Utiliser les dispositifs de type E-swab :

◦ prélever un écouvillon au niveau du vagin (y compris culs de sacs vaginaux) et le

casser dans le milieu liquide

◦ utiliser un écouvillon sec pour la mesure du pH

3.3.3 Prélèvement urétraux chez l'homme

Le prélèvement doit être réalisé avant ou à distance de tout traitement antibiotique (> 2

jours pour les germes banaux, > 15 jours pour les chlamydiae)

La recherche de mycoplasmes ne peut se faire que sur prescription explicite du médecin

: ne pas hésiter à le contacter pour lui proposer ces analyses.

La recherche de Chlamydia peut se faire à l'initiative du biologiste (la recherche

s'effectue au niveau du 1er jet urinaire)

Le patient ne doit pas avoir uriné dans les 1 heure précédant le prélèvement (à faire de

préférence le matin).

Remplir la feuille de renseignements cliniques (notamment présence d'un écoulement)

Utiliser les dispositifs de type E-swab : prélever un écouvillon fin au niveau du méat

urinaire et le décharger dans le milieu liquide, positionner l'écouvillon du système E-

Swab dans le tube.

Recherche de Chlamydia :

◦ utiliser les écouvillons fournis avec le milieu de transport Cobas® PCR Female

Swab Sample Packet (bouchon jaune)

◦ tourner environ 5 fois un des deux écouvillons au niveau du méat urinaire et le

décharger dans le milieu de transport (le point de cassure au niveau de la tige est

matérialisé par un trait noir).

Recherche de Mycoplasmes :

◦ Prélever un écouvillon fin sec qui sera déchargé dans le flacon de transport



3.3.4 Autres prélèvements de la sphère uro-génitale

A Prélèvement urétral chez la femme

Installer la patiente en position gynécologique.

Libérer le méat urinaire et réaliser les mêmes prélèvements que pour l’homme.

Le protocole est identique aussi pour la recherche de Chlamydiae, Mycoplasmes et

Trichomonas.

B Pour la recherche de l’Herpès :

Repérer les vésicules et prélever avec un écouvillon au niveau du plancher de celles-ci

en frottant fort à l’aide d’un écouvillon. Faire 2 étalements circulaires (1cm de

diamètre) sur 2 lames avec le même écouvillon.

Si une recherche par PCR est demandée, décharger l'écouvillon dans un milieu de

transport M4RT. N.B : le prélèvement par PCR est hors nomenclature.

C Recherche de Papillomavirus chez la femme

cf protocole de prélèvement du frottis cervico-vaginal en milieu liquide

D Autres prélèvements bactériologiques de la région périnéale (prépuce, vulve,

péri-anal...) : code PEAU

Remplir la feuille de renseignements cliniques (notamment présence d'un écoulement)

Utiliser les dispositifs de type E-swab : prélever un écouvillon au niveau du méat

urinaire et le décharger dans le milieu liquide

3.3.5 Autres prélèvements bactériologiques

Le préleveur vérifie que le patient n'a pas appliqué de traitement local antibiotique ou

antiseptique avant le prélèvement

Le prélèvement doit être réalisé avant ou à distance de tout traitement antibiotique (> 2

jours pour les germes banaux)

Remplir la feuille de renseignements cliniques

Penser à bien identifier les échantillons et les lames

Utiliser les dispositifs de type E-swab : prélever un écouvillon et le décharger dans le

milieu liquide

A Prélèvement de peau

Vérifier s'il est nécessaire de réaliser un prélèvement mycologique avec une recherche

de dermatophytes en parallèle : interroger le patient pour savoir si le médecin s'attend à

un rendu dans un mois, noter si la lésion est compatible avec une mycose (lésion de la

peau glabre avec desquamation périphérique, atteinte d'un ongle, plaque alopéciante du

cuir chevelu...)

Prélever au centre de la lésion en insistant sur d'éventuelles zones purulentes



B ECBU, coproculture, crachats

Se reporter aux préconisations patients, disponibles sur notre site internet

www.mediplusonline.fr dans la rubrique « Les analyses ».

C Prélèvements ORL, oculaires

au niveau de l’œil :

◦ prélever au niveau des conjonctives et de l'angle interne de l’œil

◦ si blépharite (croûtes palpébrales, cils) : prélever des cils à la pince stérile

prélèvement de gorge :

◦ Abaisser la langue (abaisse-langue)

◦ Frotter l'écouvillon sur la surface de chaque amygdale et toute la surface

pathologique en évitant le contact avec la langue ou la muqueuse jugale.

◦ Si épiglottite, ne pas faire le prélèvement

Prélèvement d'oreille : écouvillonner le conduit auditif externe

Prélèvement de nez : écouvillonner les 2 fosses nasales

En cas de recherche du bacille de BORDET GENGOU (coqueluche) : Écouvillonner jusque

dans le naso-pharynx (exclusivement au labo) (utilisation d'un milieu M4RT) cf module de

formation http://www.pasteur.fr/pasteur/film_cnr/prelev.swf

D Autres prélèvements bactériologiques

Suivre le même protocole.

En cas de doute, se renseigner auprès d'un biologiste

3.4 Les prélèvements mycologiques, parasitologiques, virologiques

Remplir la feuille de renseignements cliniques: ancienneté des lésions, traitement préalable,

contact avec les animaux, prurit...

METTRE DES GANTS POUR LE PRELEVEMENT

3.4.1 Recherche de dermatophytes sur la peau

◦ Arrêt de tout traitement anti-mycosique depuis au moins 7 jours

◦ Prélèvement effectué à la curette ou au vaccinostyle par grattage en périphérie des

lésions suspectes. Recueillir les squames dans une boite de Pétri stérile (prendre soin de

bien la fermer).

◦ en cas de lésions suppuratives (levuroses en particulier), utiliser un écouvillon

3.4.2 Recherche de dermatophytes au niveau des ongles

◦ arrêt de tout traitement anti-mycosique depuis au moins 21 jours

◦ Enlever grâce à un coupe-ongle, l'ongle atteint pour dégager la jonction entre la zone

saine et la zone pathologique. Prélèvement à la curette ou au vaccinostyle par grattage à


http://www.pasteur.fr/pasteur/film_cnr/prelev.swf



ce niveau et recueil des squames dans une boite de Pétri stérile (prendre soin de bien la

fermer).

◦ Si la zone jonctionnelle n'est pas accessible (ongle non décollé ou atteint dans son

intégralité), gratter la surface de l'ongle grâce à la curette ou au vaccinostyle.

3.4.3 Recherche de dermatophytes au niveau du cuir chevelu (teigne)

Arrêt de tout traitement anti-mycosique depuis au moins 21 jours

Noter le type de fluorescence si une lumière de Wood est disponible lors du prélèvement

Prélèvement de quelques cheveux à la pince stérile en périphérie de la lésion alopéciante

(utiliser des ciseaux pour ne conserver que la racine du cheveu)

+ Prélèvement à la curette ou au vaccinostyle par grattage en périphérie des lésions

suspectes.

Recueillir les squames et les cheveux dans une boite de Pétri stérile (prendre soin de

bien la fermer).

3.4.4 Test de Graham (recherche d'oxyures par scotch test)

Se reporter aux préconisations patients, disponibles sur notre site internet

www.mediplusonline.fr dans la rubrique « Les analyses ».

3.4.5 Recherche de Demodex folliculorum

Les demodex sont à la base des cils (blépharite)

Arracher quelques cils et les recueillir dans une boite de Pétri stérile

3.4.6 Recherche de gale (Sarcoptes scabiei)

◦ Rechercher la notion d'un prurit souvent très intense et à recrudescence nocturne,

symptomatologie identique dans l'entourage

◦ Rechercher les lésions :

▪ au niveau de localisations évocatrices (zones de peau fine) : espaces interdigitaux,

face antérieure des poignets, coude, aisselles, pli fessier, ombilic, mamelons...

▪ les lésions sont souvent très polymorphes : papules, vésicules, pustules, « sillon »

caractéristique mais rare

▪ Prélever la sérosité après ouverture des sillons et vésicules cutanés et raclage

(scratching-test).

▪ Déposer cette sérosité sur une lame et recouvrir d'une lamelle.

▪ Faire parvenir rapidement au site technique

3.4.7 Recherche de Pytiriasis versicolor par scotch-test

Prélever des squames cutanées à l'aide d'un scotch adhésif transparent au niveau des lésions

hypo ou hyper-pigmentées.

Coller le scotch sur une lame et la faire parvenir au site technique




3.4.8 Recherche d’Herpès virus :

◦ Repérer les lésions vésiculaires, percer les vésicules et gratter le fond à l'aide d'un

écouvillon.

◦ Faire 2 étalements circulaires (1cm de diamètre) sur 2 lames avec le même écouvillon.

◦ Il est possible de fixer les lames à l'acétone

◦ S’il n’y a pas de lésion, la recherche peut s’effectuer au niveau de l’endocol.

Si recherche par PCR : décharger l’écouvillon sur milieu M4RT fourni par Cerba.

3.5 Frottis cervico-vaginal

3.5.1 Généralités

A Salle de prélèvement bactériologique

Elle est verrouillable et garantit une isolation phonique et visuelle.

Il y règne une propreté rigoureuse des locaux et ustensiles (poubelles spécifiques pour

déchets et papiers jetables).

B Responsabilités

Les prélèvements peuvent être réalisés par un médecin ou un biologiste habilité.

C Matériel utilisé

gants à usage unique : LE PORT DES GANTS EST OBLIGATOIRE

spéculum stérile en plastique à usage unique

brosse à usage unique et milieu de conservation (ThinPrep PAP test)

la feuille de renseignements doit être complétée au moment du prélèvement

3.5.2 Déroulement

Installer la patiente en position gynécologique

Ne pas prélever lors de la période menstruelle

En cas de difficultés à visualiser le col, réintroduire le spéculum en demandant à la patiente

de placer ses poings serrés sous ses fesses.

Frottis en milieu liquide :

utiliser la brosse prévue à cet effet

introduire les soies centrales de la brosse dans l'orifice de l'endocol assez

profondément pour que les soies les plus courtes soient en contact avec le col. Faire

tourner la brosse plusieurs fois dans le sens des aiguilles d'une montre



Rincer la brosse dans le flacon de solution de conservation en poussant la brosse

plusieurs fois au fond du flacon. Pour finir, tourner vigoureusement la brosse pour

libérer ce qui reste de substance. Ne pas laisser la tête de la brosse dans le flacon.

Identifier le prélèvement.

4 Conservation et transport des échantillons

Les conditions de conservation sont un maillon essentiel de la qualité des résultats. Nous vous

demandons de prendre toutes les précautions utiles, par ex : ne pas déposer les coffrets près de la

bouche de chauffage ou de climatisation de votre véhicule, sur le tableau de bord,…

Il est également recommandé de stocker dans le véhicule le minimum de coffrets non-utilisés afin

d’éviter d’éventuels chocs thermiques préjudiciables à la bonne conservation des anticoagulants

contenus dans les tubes.

- Délai et stockage des échantillons, délais pour prescrire analyse supplémentaire, répétition des

analyses en raison d'une défaillance analytique ou des analyses complémentaires du même

échantillon primaire :

Annexe 9.5 "Conservation pré-analytique des échantillons biologiques"

Certaines analyses nécessitent une centrifugation rapide : cf catalogue Medibio et BPR

www.medibiolab.fr et www.bpr-as.com

5 Liste des principales analyses MEDI +

Annexe 9.1 « Liste des analyses Medi + » et sur www.mediplusonline.fr

6 Catalogue des principales analyses transmises et effectuées par les

laboratoires sous traitants

Pour les analyses les plus courantes, se référer à la fiche cf Choix des tubes (§ 3.1.2)

Lien : Catalogue des analyses Medibio et BPR sur www.medibiolab.fr et www.bpr-as.com

http://www.medibiolab.fr/


https://asp.zone-secure.net/v2/index.jsp?id=994/1248/12472&lng=fr

https://asp.zone-secure.net/v2/index.jsp?id=994/1248/12472&lng=fr

http://www.medibiolab.fr/




7 Conduite à tenir en cas d'incident de prélèvement ou d'accident d'exposition

au sang

en cas d’hématome important, de tentatives multiples ou de douleur sur le trajet nerveux :

rassurer le patient,

appliquer un traitement local d’appoint, ou un pansement alcoolisé,

changer de préleveur si nécessaire

lui proposer de nous recontacter à terme pour contrôler l’évolution

ne pas hésiter à faire intervenir un biologiste

renseigner l’informatique au niveau des renseignements cliniques avec la mention :

« prélèvement difficile »

renseigner l’informatique avec le code « COM » (texte libre non éditable)

en cas de malaise :

surélever les jambes du patient

le stimuler

lui proposer à boire, un sucre +/- avec de l’alcool de menthe

renseigner l’informatique

En cas d'accident d'exposition au sang (AES) :

cf page suivante



8 Intérêt clinique des examens de routine

Lien vers le site : http://www.labtestonline.fr/

http://www.labtestonline.fr/



9 Annexes

9.1 Annexe : Liste des analyses MEDI +

Analyses Code tube Délai de rendu

Nf N Tube EDTA 1 jour

Plaquettes PL Tube EDTA 1 jour

VGM VGM Tube EDTA 1 jour

Réticulocytes RET Tube EDTA 1 jour

Groupe sanguin GR Tube EDTA Urgence 1 jour

RAI RAI Tube EDTA Urgence 1 jour

TP TP Tube Citrate 1 jour

TCA TCA Tube Citrate 1 jour

Fibrinogène FIB Tube Citrate 1 jour

D Dimères DDM Tube Citrate 1 jour

NT-pro-BNP NTBNP Tube Héparinate Sodium 1 jour

Sodium NA Tube Héparinate Sodium 1 jour

Potassium K Tube Héparinate Sodium 1 jour

Chlore CL Tube Héparinate Sodium 1 jour

Réserve Alcaline RA Tube Héparinate Sodium 1 jour

Protides Totaux PR Tube Héparinate Sodium 1 jour

CRP CRP Tube Héparinate Sodium 1 jour

Procalcitonine PCT Tube Héparinate Sodium 1 jour

Glycémie G Tube Héparinate Sodium

ou Tube Fluoré

1 jour

Cholestérol C Tube Héparinate Sodium 1 jour

Triglycérides T Tube Héparinate Sodium 1 jour

Hdl cholestérol HDL Tube Héparinate Sodium 1 jour

Urée U Tube Héparinate Sodium 1 jour

Créatinine CR Tube Héparinate Sodium 1 jour

Acide urique AU Tube Héparinate Sodium 1 jour

GOT GOT Tube Héparinate Sodium 1 jour

GPT GPT Tube Héparinate Sodium 1 jour



Phosphatase alcaline PAL Tube Héparinate Sodium 1 jour

GGT GGT Tube Héparinate Sodium 1 jour

LDH LDH Tube Héparinate Sodium 1 jour

CPK CPK Tube Héparinate Sodium 1 jour

Bilirubine B Tube Héparinate Sodium 1 jour

Lipase LIP Tube Héparinate Sodium 1 jour

Amylase AMY Tube Héparinate Sodium 1 jour

Calcium CA Tube Héparinate Sodium 1 jour

Phosphore P Tube Héparinate Sodium 1 jour

Fer FE Tube Héparinate Sodium 1 jour

Transferrine TRF Tube Héparinate Sodium 1 jour

Albuminémie ALB Tube Héparinate Sodium 1 jour

Digoxine DIGO Tube Héparinate Sodium 1 jour

Alcool ALCO Tube fluoré 1 jour

LH LH Tube Héparinate Sodium 1 jour

FSH FSH Tube Héparinate Sodium 1 jour

E2 E2 Tube Héparinate Sodium 1 jour

Progestérone PRG Tube Héparinate Sodium 1 jour

HCG HCG Tube Héparinate Sodium 1 jour

Paludisme PALU Tube EDTA 1 jour

Cytologie urinaire CYTO Tube boraté ou pot

primaire urines

1 jour

Kleihauer RHF Tube EDTA 1 jour

Sang dans les selles SS1-SS2-SS3 Pot primaire selles 1 jour



9.2 Annexe : Liste des analyses à conditions particulières (SFBC 2011)

LISTE DES ANALYSES NÉCESSITANT D'ÊTRE À JEUN (12h, 1 verre d'eau)

ACIDES GRAS

APOLIPOPROTÉINES A1 ET B

BILAN LIPIDIQUE (Cholestérol, LDL,

Triglycérides)

CROSS-LAPS sérum et urines – CTX

EAU LIBRE : clairance

FER – SATURATION

GASTRINE

GLUCOSE A JEUN

HELIKIT (ne pas boire ni fumer)

HOMOCYSTÉINE

NORDIN (index de) : avec ou sans

hydroxyproline

NTX (TELOPEPTIDES N-Terminal

collagène I) : urines

TAUX DE REABSORPTION TUBULAIRE

DU PHOSPHORE

TESTOSTERONE BIODISPONIBLE

XYLOSE

Analyses nécessitant un horaire particulier (rythme nycthéméral)

ACTH le matin, à jeun, non stressé +/- 16 et 24h. A

congeler dans l’heure.

Aldostérone Le matin

Corticostérone, Composé S (11-

désoxycortisol), 21-désoxycortisol, DOC (11-

désoxycorticostérone)

Le matin entre 7 et 10h

Cortisol (Composé F) Rythme nycthéméral : prélever à 8h (taux

maximal), à 16-17h (taux minimal) ou 24h

Cross-laps Le matin avant 9h toujours à la même heure

(taux maximal la nuit) à jeûn

Cycle glycémique – C-peptide – Insuline Bien respecter les heures du cycle

17-hydroxy Pregnénolone et Pregnénolone

Sulfate

Le matin entre 7 et 10h (taux maximal)

Prolactine Entre 8 et 12 heures à jeun et après un repos de

20 minutes, en première partie de cycle chez la

femme

PTH (parathormone) Prélèvement le matin

Pyridinoline et désoxypyridinoline urinaires Maximum le soir ou la nuit : 2ème urines du

matin (toujours à la même heure)

Rénine-Aldostérone Le matin entre 7 et 10h – position :

position debout : après 1h de déambulation



Analyses nécessitant un horaire particulier (rythme nycthéméral)

position couchée : après 1 h minimum de repos,

allongé en salle de prélèvement

régime normosodé – Noter traitements (anti-

hypertenseurs-spironolactone) si impossible de

les arrêter

Sulfate de DHA, Déhydroépiandrostérone

(DHEA)

Le matin

T3, T4, TSH Le matin



Analyses nécessitant un régime alimentaire particulier

Aldostérone (sang et urines) Régime normosodé (80-250 mmol/24h de

natriurèse)

Ammoniémie Ne pas fumer dans les 6 heures précédant le

prélèvement

CATHÉCHOLAMINES ET DÉRIVÉS

METHOXYLES:

Cathécholamines et dérivés méthoxylés

(plasma ou urines)

Ac.homovanilique (HVA) (urines),

Ac. Vanylmandélique (VMA) (urines)

Éviter dans les 48 heures avant le prélèvement

et pendant la période de recueil des urines de

24h, la consommation de

banane, vanille, thé, café, chocolat

surtout

agrumes, tomates

Sérotonine et

Ac. 5-hydroxy indol acétique (5HIA)(plasma

et urine

Éviter dans les 48 heures précédant le dosage

la consommation de

banane, chocolat,

fruits secs, agrumes, avocat, tomate,

prune, kiwi, ananas,

mollusques

Autres analyses à conditions particulières

Catégories

d'analyses

Conditions de prélèvement Renseignements à

obtenir

Bactériologie,

mycologie,

parasitologie

à distance de toute thérapeutique antibiotique (48

heures) ou antifongique (21 jours pour les ongles

et cheveux, 7 jours pour la peau)

fiche de renseignements

remplie par le patient

(recueil à domicile)


annotée par le préleveur

(prélèvement au

laboratoire)

Hémoculture Au moment du pic thermique fiche de renseignements à

remplir

Prélèvements

génitaux

ni toilette, ni rapport sexuel dans les 24 heures

précédentes, éviter la période des règles

Fiche de renseignements

à remplir

Scotch test Le matin au réveil sans

être allé à la selle

Spermoculture De préférence au laboratoire et impérativement si

spermogramme associé

Fiche de renseignements

remplie par le patient



Catégories

d'analyses


obtenir

Agglutinines

irrégulières

¨Préciser la date d'une

éventuelle injection

d'anti-D (Rophylac®)

Coagulation,

Hémostase

HBPM (Fraxiparine®, Lovenox®,

Fragmine®, Clivarine®, Innohep®, Fraxodi®) si

dosage Héparinémie ou anti-Xa : Prélèvement 4

à 5 heures après l'injection

Protéine C, S : à distance d’un

traitement par AVK (sauf prescription contraire)

ou 1 mois après arrêt du traitement AVK

AT III : à distance d’un traitement par

héparine ou d'une prise d'oestrogènes (1 mois)

Anticoagulant circulant (ne pas faire

chez patient en cours de traitement à l'Héparine)

Temps de saignement pas de prise

d'anti-agrégants plaquettaires depuis 7 à 10 jours

sauf sur prescription explicite

Traitement

anti-coagulant en cours

Antécédents

(thrombose,

hémorragies)

Traitement éventuel

COCKROFT

(clairance estimée

de la créatinine)

Age, sexe, poids

Drogues :

dépistage urinaire

(amphétamines,

benzodiazépines,

barbituriques,

cannabis, cocaïne,

morphine/opiacés,

métamphétamines,

ecstasy,

méthadone,

antidépresseurs

tricycliques)

A faire impérativement au laboratoire, protocole

strict de recueil : s'assurer du recueil effectif au

laboratoire, couleur du recueil (pour éviter

dilution par eau, vérifier éventuellement par

mesure de la densité), température

Date, heure et lieu du

recueil, traitement

médicamenteux

Electrophorèse de

l'Hémoglobine

Age, origine ethnique,

transfusions éventuelles

Electrophorèse des

protéines

A distance des produits de contrastes iodés : pic

migrant en alpha, bêta ou gamma

Les traitements antibiotiques peuvent donner une

fausse bisalbumine



Catégories

d'analyses


obtenir

Glucose-6-

phosphate

déshydrogénase

(G6PD) et

Pyruvate Kinase

Ne pas réaliser après une transfusion sanguine

(intervalle : 3 semaines)

Groupe sanguin Nécessité de deux déterminations sur deux

prélèvements distincts pour délivrer une carte de

groupe sanguin

Sexe, date de naissance,

nom de naissance, nom

marital, prénom

Hormonologie de

la reproduction

(FSH, LH,

ESTRADIOL,

PROGESTERON

E, PROLACTINE,

BHCG, analyses

spécialisées)

Date des dernières règles,



Médicaments :

Digoxine,

Phénytoïne(Di-

Hydan®),

Carbamazépine(T

égrétol®),

Phénobarbital,

Théophylline,

Ac.valproique

(Dépakine®)

Dosage en phase résiduelle : juste avant une

nouvelle prise

Posologie, date et heure

de la dernière prise, fiche

de renseignements


Antibiotiques :

Vancomycine et

aminosides

:Amikacine

(Amiklin®),

Gentamycine

(Gentalline®),

Nétilmycine

(Nétromicine®),

Tobramycine

(Nebcine®

Tobrex®)

Dosage en phase résiduelle : 30min avant une

nouvelle injection

au moment du pic sérique : 30min après la fin

d'une injection de 30min

Posologie, date et heure

de la dernière injection,



Notion d'insuffisance

rénale

Test au LHRH Du 2ème au 5ème jour du cycle Absence de traitement

œstroprogestatif depuis 1

mois



Catégories

d'analyses


obtenir

Trisomie 21 :

dépistage au 2ème

trimestre

De la 15ème semaine d'aménorrhée à la 18ème

semaine d'aménorrhée (soit 14SA révolues à

17SA+6jours)

Attestation du médecin

complétée : date de

naissance, date de la

grossesse, poids,

tabagisme, gémellité,

date du prélèvement,

renseignements

échographiques, nom et

adresse du médecin

prescripteur,

+ Consentement éclairé

signé

Trisomie 21 :

dépistage au

1er trimestre

De la 11S+0jours à 13S+6jours d’aménorrhée Numéro de réseau

périnatalité

Attestation du médecin

complétée : date de

naissance, date de la

grossesse, poids,

tabagisme, gémellité,

date du prélèvement,

renseignements

échographiques, nom et

adresse du médecin

prescripteur

+ Consentement éclairé

signé

Typage HLA Uniquement dans le cadre de l’association HLA-

Maladies

Consentement éclairé

Prélèvements particuliers ou délicats : guide MEDIBIO, BPR ou CERBA



9.3 Annexe : liste des principales interférences et variations physiopathologiques

Attention : Des résultats d’analyses de biologie médicale peuvent être erronés en cas de prise de

biotine à forte dose, par exemple dans le cadre du traitement de la sclérose en plaques.

Le patient devra le signaler au secrétariat du laboratoire ou lors de la prise de sang.

Pour toutes les analyses spécialisées, se reporter au(x) guide(s) fournis par le(s) laboratoire(s)

spécialisé(s). Document non exhaustif.

Analyses

demandées

Interférences

médicamenteuses

Interférences

alimentaires

Autres facteurs physiopathologiques

(effort physique, grossesses,

pathologies,…)

ACE Pathologies bénignes digestives (cirrhose) et

pulmonaires, tabagisme, I.rénale chronique :

➚

Acide

homovanilique

Acide

vanylmandéliq

ue (VMA)

Banane, vanille, thé,

café, chocolat : ➚

Acide urique

Diurétiques qui

modifient

l’excrétion urinaire

de l’acide urique et

anticancéreux : ➚

Hypo-uricémiants,

Alpha-

méthyldopa,

déféroxamine,

dobésilate de

calcium, vitamine

C : ➘

Régimes

hyperprotidiques et

hypercaloriques, et

après ingestion

d’alcool : ➚

Période de jeûne

prolongé : ➚

En cas de fièvre : ➚

Pendant l’été : ➚ (5 à 7 % plus élevé que

l’hiver)

Pendant phase folliculaire : ➚

5 premiers mois de la grossesse : ➘

Fumeurs : ➘

Corrélation positive avec le poids chez les

adultes (nette surtout pour les poids > 80 kg)

Aldostérone Régime normosodé Rythme nycthéméral, concentration

maximale le matin



Analyses

demandées

Interférences

médicamenteuses

Interférences

alimentaires



pathologies,…)

Alpha foeto-

proteine

(AFP)

Au cours de la grossesse :

-➚ à partir de la 12ème semaine de gestation.

dans le sang maternel les variations

sont fonction de différentes situations

normales ou pathologiques :

le poids de la parturiente

la présence d’un ou plusieurs fœtus

les troubles rénaux du fœtus et/ou la

présence de malformations fœtales

Les taux sont très élevés à la naissance et

dans les premiers mois, en particulier chez le

prématuré, puis diminuent progressivement

pour atteindre les valeurs de l’adulte vers

l’âge de 8 mois.

Amylase

Aspirine,

diurétiques,

corticostéroïdes,

contraceptifs

oraux,

indométacine et

dérivés

morphiniques... :

➚

Défaut d’élimination rénale : ➚

Remarque : La salive et la sueur étant

particulièrement riches en amylase attention

à toute contamination, du prélèvement ou

des réactifs

Antithrombine Oestrogènes : ➘

2

microglobuline

Transplantations rénales ou hépatiques : ➚

des taux sériques.

Grossesse et pré-éclampsies : ➚

Exercice physique intense : ➚ des taux

urinaires.

Bilirubine

De nombreux

médicaments ou

leur métabolites

peuvent induire

une interférence

analytique

Jeûne : ➚

Remarque : Eviter la stase veineuse et très

grande sensibilité de la bilirubine à la photo

oxydation par la lumière (oxydation

température dépendante)

Calcium

Traitements au

long cours par les

diurétiques

thiazidiques : ➚

Jeûne : ➚

Exercice physique intense : ➚

Patient debout : ➚ du calcium total

Grossesse : ➘

Remarque : Eviter la stase veineuse et

l’utilisation de gants talqués



Analyses

demandées

Interférences

médicamenteuses

Interférences

alimentaires



pathologies,…)

Cholestérol Anticoagulant : ➚

Alimentation :

nécessité d’un jeûne

strict de 12 heures avant toute

détermination

Alcool : ➚

Obésité : ➚

Grossesse : ➚ surtout dans les dernières

semaines

Cycle menstruel : Variation

Stress : ➚

Fumeurs : ➚

Cortisol

Traitements

oestrogéniques : ➚

Corticothérapie :

➚

Jeûne prolongé : ➚

Remarque : Sevrage

alcoolique chez les

éthyliques, une

semaine avant les

dosages

Grossesse : ➚

Fumeurs : ➚

Stress : ➚

Insuffisance hépatique sévère : ➘

Cycle nycthéméral : maximum à 8h

Créatinine

Salicylés, certains

diurétiques, acides

ascorbique : ➚

Antiépileptiques :

➘.

Jeûne et régime

végétarien : ➘

Régimes riches en

protides : ➚

Effort physique intense : ➚

Anorexies mentales : ➚

Fumeurs : ➚

Cycle nycthéméral : maximum à 8h et 16h

Créatine

Kinase

(CK)

Médicaments

administrés en

intramusculaire :

➚ (pouvant être

importante en cas

d’injections

répétées)

Certains

traitements

hypocholestérolé-

miants : ➚

Grossesse et chez le sujet alité : ➘

Exercice physique intense : ➚

Couleur de peau Noire : ➚

D-Dimères Thrombolytiques➚



Analyses

demandées

Interférences

médicamenteuses

Interférences

alimentaires



pathologies,…)

Digoxine

Vérapamil,quinidi

ne, -bloquants,

amiodarone, anti-

ac., charbon

activé, hydroxydes

d’aluminium,

cholestyramine,

salazopyrine,

phénobarbital,

phénytoïne,

diurétiques

hypokaliémiants,

laxatifs, insuline,

glucocorticoïdes,

amphotéricine B,

sels de calcium : ➚

ou ➘ selon les cas

Grossesse : ➚ de la clairance.

Insuffisance rénale : ➚ de la ½ vie

Troubles thyroïdiens : ➚ des concentrations

plasmatiques chez les hypothyroïdiens.

Malabsorptions intestinales : ➘ de la

biodisponibilité des digitaliques.

Insuffisance cardiaque : ➘ de l’élimination.

Electrophorèse

des protéines

Régimes

végétariens : ➘ à

court terme, (à long

terme, sans effet).

Grossesse : ➘

Exercices physiques prolongés : ➚

Patient debout : ➚

Remarque : Eviter la stase veineuse

Estradiol Estrogènes : ➚

Examen

bactério,

parasito et

mycologique

A effectuer à distance d'un traitement

antibactérien ou fungique

Fer

Contraception

orale

(progestérone) : ➚

Vitamine C : ➚

l'absorption

Traitement par

desferrioxamine:

Fer complexé non

mesurable

Aliments enrichis en

fer et vitamines : ➚

Régime végétarien :

➘

Grossesse : ➚ sous l’effet de la progestérone

ou ➘ par déficit en fer.

Cycle nycthéméral : maximum le matin.

Cycle menstruel : minimale après la

menstruation

Fibrinogène Thrombolytiques :

➘

Insuffisance hépato-cellulaire et CIVD

(coagulation intra-vasculaire disséminée) :

➘

Grossesse : ➚

Syndromes inflammatoires et néphrotiques :

➚

Patients VIH séro-positifs et VIH : ➚

Stress : ➚



Analyses

demandées

Interférences

médicamenteuses

Interférences

alimentaires



pathologies,…)

Gamma

Glutamyl

Transferase

(GT)

Antiépileptiques

(phenobarbital,

phenytoine),

certains

hypolipémiants,

contraceptifs

oraux,

antidepresseurs :

➚.

L’alcool surtout en

ingestion chronique :

➚

Gaz du sang

Broncho-

dilatateurs,

diurétiques

barbituriques,

oxygénothérapie,

… modifient les

paramètres

respiratoires.

Repas : Alcalose

post-prandiale

Exercice physique: ➘ du pH artériel et de la

PCO2

Altitude : ➘

Fumeurs : ➘ de la PO2

Glucose Corticoïdes : ➚

Alimentation :



détermination

L’alcool (ingestion

chronique), la

caféine : ➚

Cigarette avant la prise de sang, exercice

physique, stress : ➚.

HDL

Oestrogènes

(pilule

oestroprogestative,

traitement

substitutif de la

ménopause),

corticothérapie: ➚

Progestatifs (type

norstéroïdes

androgéniques) :

➘

Alcool : ➚ de la

fraction HDL3

Exercice physique : ➚

Grossesse : modification des HDL

Tabac, Obésité : ➘

Hémoglobine

Glyquée

Acide

acétylsalicylique,

dérivés de

l’éthanol : ➚

Patients non diabétiques en état

d’insuffisance rénale : ➚

Hors technique HPLC : attention aux hémoglobinopathies

Hydroxy-

prolinurie

viande, gelée,

gélatine dans les 48

heures précédant le

dosage : ➚

LDH Exercice physique : ➚.

Grossesse : ➚ au cours du 3ème trimestre



Analyses

demandées

Interférences

médicamenteuses

Interférences

alimentaires



pathologies,…)

Magnésium

Alimentations

parentérales

prolongées : ➘.


Cas de stress chronique : ➘

Métanéphrines Traitement par

bêta bloquants

Chocolat, banane,

agrumes, thé, café :

➚

Numération

Formule

Sanguine

Anémies,

thrombopénies, ou

agranulocytoses

immuno-

allergiques ou

toxiques :

Antimitotiques,

antibiotiques,

antiviraux,

diurétiques,

antalgiques, anti-

inflammatoires,

sels d’or,

antithyroïdiens,

anticonvulsivants,

antiulcéreux,

psychotropes,

antidiabétiques,

héparine, etc

Hyperéosinophilie

iatrogène:

Certains

antibiotiques,

antifongiques,

psychotropes, anti-

épileptiques,

antidiabétiques

oraux,

cytotoxiques,

produits iodés,

anti-

inflammatoires,

héparine, etc :

Anémies

macrocytaires :

Antifoliques,

analogues

puriques ou

pyrimidyques :

Grossesse : ➘ de l’hémoglobine, et ➚ de la

leucocytose avec polynucléose au cours du

3ème trimestre.

Altitude : ➚ de l’hémoglobine et du nombre

de globules rouges circulants

Exercice physique intense : ➚ du nombre

des globules rouges, de globules blancs et du

taux de l’hémoglobine.

Stress, exposition au froid, tachycardie

paroxystique, exposition au soleil et aux

rayons UV : ➚ de la leucocytose

Origine : Neutropénie modérée chez les

noirs d’Afrique, des Caraïbes et chez les

juifs yéménites et polyglobulie

microcytaire observée chez les populations

originaires du pourtour méditerranéen

Fumeurs : ➚ de l’hémoglobine, du VGM et

hyperagrégabilité plaquettaire et de la

leucocytose avec polynucléose.

Ethylisme chronique : ➚ du VGM

Cycle nycthéméral : Hémoglobine diminue

l’après-midi



Analyses

demandées

Interférences

médicamenteuses

Interférences

alimentaires



pathologies,…)

Ph. Alcalines

Oestrogènes et les

hypolipémiants :

➘

Anticoagulants

oraux,

antiépileptiques :

➚

Malnutrition : ➘

Grossesse : ➚ chez la femme enceinte à

partir de la 20ème semaine.

Enfants en période de croissance : ➚

Obésité : ➚ (surtout chez les femmes en

surpoids)

Porphyrines

fécales

Consommation de

légumes verts et de

viande rouge

saignante dans les 72

h précédent le

dosage : ➚

Potassium

Anti-

inflammatoires

non stéroidiens,

bêta-bloquants …:

variations chez

certains patients

Consommation

excessive de fruits,

de réglisse : ➚

Exercices physiques prolongés : ➘

Exposition prolongée à la chaleur : ➘

Pose du garrot trop longue : ➚

Prolactine

Antiprolactine : ➘

Certains

antidépresseurs,

anxiolytiques et

antiémétiques type

Primpéran® : ➚

De nombreux

médicaments

modifient le taux

de prolactine

En post-prandial : ➚ Stress : ➚

Protéine C

Hypocoagulants

oraux de type

antivitamines K :

➘

Protéine S

Hypocoagulants

oraux de type

antivitamines K ,

Oestrogènes : ➘

Protéines

totales

Régimes

végétariens : ➘ à

court terme, (mais à

long terme, ils sont

sans effet).

Malnutrition : Baisse

globale des protides

sanguins.

Grossesse : ➘

Exercices physiques prolongés : ➚

Patient debout : ➚




Analyses

demandées

Interférences

médicamenteuses

Interférences

alimentaires



pathologies,…)

PSA et PSA

Libre Manipulations prostatiques : ➚

Recherche de

sang dans les

selles

Éviter le prélèvement lors des épisodes de

constipation sanglante, hémorroïdes, règles...

Sérotonine

Banane, chocolat,

fruits secs, agrumes,

avocat, tomate dans

les 48 h précédent le

dosage : ➚

Sodium

Corticoïdes au

long cours : ➚

Diurétiques

thiazidiques : ➘

Influence d’un

régime hypersodé ou

au contraire d’un

régime désodé

prolongé.

TCA

AVK, hirudine (ou

ses dérivés),

thrombolytique,

antifibrinolytiques,

antithrombotiques

mélagatran /

ximélagatran :

Allongement du

TCA

Syndrome inflammatoire, grossesse, taux

élevé de facteur VIII et chez certains patients

ayant une résistance à la protéine C activée :

TCA mesuré peut être plus court que

celui du témoin normal

Déficit constitutionnel ou acquis en facteurs

VIII, IX, XI, XII, et dans une moindre

mesure en facteurs II, V, X et/ou en

fibrinogène ; en cas d’insuffisance hépato-

cellulaire ou de CIVD (coagulation intra-

vasculaire disséminée), en cas de présence

d’anti-VIII ou anti-IX et en cas de carence

en vitamine K : Allongement du TCA

Temps de

saignement

Aspirine, anti

agrégants

plaquettaires : ➚

Temps de

Thrombine

Antithrombines

type hirudine,

antithrombotiques

(mélagatran /

ximélagatran) ;

traitements

fibrinolytiques:

Allongement du

temps de

thrombine

Insuffisance hépato-cellulaire ou de CIVD

(coagulation intra-vasculaire disséminée) :

Allongement du temps de thrombine

Hypofibrinogénémies (dans lesquelles le

fibrinogène fonctionnel et le fibrinogène

antigène sont abaissés dans les mêmes

proportions) et dysfibrinogénémies (dans

lesquelles le taux de fibrinogène fonctionnel

est abaissé tandis que le taux de fibrinogène

antigène est normal) : Allongement du

temps de thrombine

Présence d’héparine non fractionnée, de taux

significativement élevés de produits de

dégradation de la fibrine : Allongement du

temps de thrombine



Analyses

demandées

Interférences

médicamenteuses

Interférences

alimentaires



pathologies,…)

TP

De nombreux

médicaments sont

susceptibles

d’interférer dans le

métabolisme des

AVK et de

potentialiser ou

réduire l’effet

anticoagulant des

AVK (se référer au

dictionnaire

Vidal®) ; ces

interférences

peuvent conduire à

des variations de

l’INR.

Antithrombines

type hirudine,

antithrombotiques

(mélagatran /

ximélagatran) :

Abaissement du

taux de

prothrombine.

Choux, choux-fleurs,

brocolis, foie de

porc, volaille, alcool,

et vin : A éviter

pendant le

traitement

Déficit constitutionnel ou acquis en facteurs

II, V, VII, X et/ou en fibrinogène ; en cas

d’insuffisance hépato-cellulaire ou de CIVD

(coagulation intra-vasculaire disséminée) et

en cas de carence en vitamine K :

Abaissement du taux de prothrombine.

Transaminases

:

(ASAT -

ALAT)

Antiépileptiques,

hypolipémiants,

contraceptifs

oraux,

Roaccutane : ➚.

L’alcool en ingestion

chronique : ➚

Grossesse : ➘

Déficit en vitamine B6, patients

dialysés : ➘

Exercice physique : ➚ (surtout

d’ASAT).

TRIGLYCERI

DES

Traitements

antihypertenseurs,

contraceptifs

oraux

(oestroprogestatifs

fortement dosés en

œstrogènes) ;

glucocorticoïdes,

la cyclosporine

chez les patients

transplantés : ➚

Alimentation :



détermination

Alimentation riche en

glucides à absorption

rapide, alimentation

riche en graisse

saturée, boissons

alcoolisées : ➚.

Utilisation d’huile

avec des acides gras

mono ou poly-

insaturés : ➘

Grossesse : ➚

Obésité : ➚

Fumeurs : ➚

Alcoolisme chronique : ➚



Analyses

demandées

Interférences

médicamenteuses

Interférences

alimentaires



pathologies,…)

TSH

Corticothérapie :

Abolition des pics

nocturnes de TSH

Dopamine : ➘

Amiodarone : ➚

Grossesse : ➘ au 1er trimestre

Etats dépressifs : Abolition des pics

nocturnes de TSH

Insuffisance surrénalienne : ➚

Stress : ➚

T4

➚ pouvant aller

jusqu’à 13% dans

les 9 heures

suivant la prise de

lévothyrox®

Rythme nycthéméral, concentration

maximale le matin

UREE Corticothérapie :

➚

Régime végétarien :

➘.

Régime

hyperprotidique : ➚

Grossesse : ➘

Effort physique prolongé : ➚

Cas d’hypercatabolisme protidique (jeûne,

fièvre,...) : ➚

VS

L’aspirine et les

anti-

inflammatoires

non stéroïdiens : ➘

La vitesse de sédimentation est modérément

accélérée en fin de grossesse et en période

menstruelle

La polyglobulie et la présence abondante de

cryoglobulines : Empêchement de la

sédimentation des hématies, quelle que soit

la pathologie.

L’hypofibrinémie, l’hypohaptoglobinémie et

l’agammaglobulinémie : Empêchement de

la V.S. d’augmenter

L’anémie : ➚

La période post-prandiale : ➚

Références :

Bioqualité

« L'exploration de la thyroïde » Cahier de formation Bioforma n°14



9.4 Annexe : Fiche de prélèvement de biologie médicale



9.5 Annexe : Conservation pré-analytique des échantillons biologiques

Les échantillons non centrifugés doivent être conservés à température ambiante selon les recommandations ci-dessous. Après centrifugation, le sérum ou

le plasma doivent être analysés dans le temps recommandé pour le sang total si l’échantillon n’est pas stocké en utilisant un gel séparateur ou un filtre

dans le tube primaire. Quand le plasma ou le sérum doit être conservé au réfrigérateur ou congelé, il doit tout d’abord être décanté SAUF SI TUBE A

GEL. (1)

Pour les analyses spécialisées envoyées au laboratoire BPR, seules sont mentionnées celles nécessitant une prise en charge particulière et/ou rapide.

Pour les autres analyses, se référer au catalogue en ligne.

Pour les analyses spécialisées envoyées au Cerba, se référer au catalogue en ligne.

Chimie-Enzymologie sanguine

Analytes

Conservation maximale

avant centrifugation

Conservation maximale après centrifugation

Sans décantation

Avec décantation ou tube à gel

Température ambiante

+2/+8°C -20°C

AMYLASE (1) 4 jours 4 jours 7 jours 7 jours 1 an

CPK (2) 7 jours 7 jours 2 jours 7 jours 4 semaines

GAMMA GT (2) 1 jour 1 jour 7 jours 7 jours 1 an

LDH (5,18) 6 heures 6 heures 7 jours 7 jours 6 semaines

LIPASE (2) 12 heures 12 heures 7 jours 7 jours 1 an

PHOSPHATASES ALCALINES (2)

4 jours 4 jours 7 jours 7 jours 2 mois

TGO (1) 7 jours 7 jours 4 jours 7 jours 3 mois

TGP (1) 4 jours 4 jours 3 jours 7 jours 7 jours

ACIDE URIQUE (1) 7 jours 7 jours 3 jours 7 jours 6 mois

ALBUMINE (2) 6 jours 6 jours 2,5 mois 5 mois 5 mois



Analytes




Sans décantation



+2/+8°C -20°C

AMMONIÉMIE (1) 15 minutes en EDTA

15 minutes en EDTA

15 minutes 2 heures 3 semaines

Cf préconisations BPR

APOLIPOPROTÉINE A & B (1,19] 1 jour 1 jour 3 jours 2 mois

BILIRUBINES (12, 14) 1 jour 1 jour 1 jour 7 jours 6 mois

pas d'exposition prolongée à la lumière

CALCIUM IONISÉ(1) 30 minutes 30 minutes 6 heures 1 jour Cf préconisations BPR

CALCIUM TOTAL(1) 2 jours 2 jours 7 jours 3 semaines 8 mois

CHLORE (1) 1 jour 1 jour 7 jours 7 jours 1 an

CHOLESTEROL HDL(1) 2 jours 2 jours 2 jours 7 jours 3 mois

CHOLESTEROL LDL(1) 1 jour 1 jour 1 jour 7 jours 3 mois

CHOLESTEROL TOTAL(1) 7 jours 7 jours 7 jours 7 jours 3 mois

CO2- BICAR (1, 14,19) 24 heures 24 heures 40 heures 7 jours 6 mois

CRÉATININE (1) 2 jours 2 jours 7 jours 7 jours 3 mois

CRP(2,14] 1 jours 7 jours 15 jours 2 mois 3 ans

FER (6,7, 14) 1 jour 1 jour 7 jours 3 semaines 1 an

GLUCOSE SUR TUBE FLUORÉ(2) 1 jour 1 jour 2 jours 7 jours 1 jour

GLUCOSE SUR TUBE HÉPARINÉ ou SEC (12) 2 h 2 h 2 jours 7 jours

PHOSPHORE(8) 6 heures 6 heures 1 jour 4 jours 1 an

POTASSIUM (5,7,14, 18, 19) 6 heures 6 heures 2 semaines 2 semaines 1 an



Analytes




Sans décantation



+2/+8°C -20°C

PROTIDES (2) 1 jour 1 jour

1 jour pour électrophorèse

6 jours pour dosage

7 jours pour électrophorèse

4 semaines pour dosage

3 semaines pour électrophorèse

1 an pour dosage

SODIUM (1) 4 jours 4 jours 2 semaines 2 semaines 1 an

TRIGLYCÉRIDES(1) 7 jours 7 jours 2 jours 7 jours 1 an

URÉE(1) 1 jour 1 jour 7 jours 7 jours 1 an



Hormones sanguines

Analytes




Sans

décantation



+2/+8°C -20°C

ACTH Centrifugation réfrigérée immédiate ou transport dans glace Congélation rapide Cf préconisations BPR

CALCITONINE Centrifugation réfrigérée immédiate ou transport dans glace Congélation rapide Cf préconisations BPR

ERYTHROPOIETINE(1) 6-24h 6-24h 2 semaines 5 mois

GASTRINE Centrifugation réfrigérée immédiate 4 h Congélation rapide Cf préconisations BPR

FSH(1) 7 jours 7jours 2 semaines 2 semaines 1 an

FT3(14) 1 jour 1 jour 1 jour 2 semaines 3 mois

FT4(14) 1 jour 1 jour 2 jours 8 jours 3 mois

HCG(2) 1 jour 3 jours 1 an

INSULINE(11, 14) 6 heures 6 heures 6 heures 3 jours 6 mois

OESTRADIOL(1, 19) 1 jour 1 jour 1 jour 3 jours 6 mois

PEPTIDE C (1, 14) 6 heures 6 heures 2 jours 3 jours 2 mois

PROGESTERONE(2) 7 jours 7 jours 1 jour 3 jours 1 an

PTH 6 heures 6 heures 6 heures 1 jour 4 mois

TSH (1) 7 jours 7 jours 1 jours 3 jours 3 mois



Marqueurs protéines

Analytes




Sans

décantation

avec décantation ou tube à gel

Température ambiante +2/+8°C -20°C

ACE(2) 3 jours 3 jours 7 jours 7 jours 6 mois

AFP(1) 7 jours 7 jours 3 jours 7 jours 3 mois

BNP(9) 12 heures 5 jours 5 jours 5 jours

CA 125(2) 3 jours 3 jours 3 jours 5 jours 3 mois

CA 15-3(10) 7 jours 5 jours 3 mois

CA 19-9(2) 7 jours 7 jours 7 jours 1 mois 3 mois

FERRITINE(7) 8 heures 7 jours 7 jours 1 an

HBA1C(1) 3 jours 3 jours 3 jours 7 jours 6 mois

MYOGLOBINE(14) 1 jour 1 jour 2 jours 1 semaine 3 mois

NSE(1, 2) 2 heures 2 heures 2 jours 7 jours 3 mois

NT Pro BNP(1,2) 2 jours 2 jours 3 jours 6 jours 12 mois

PSA libre (1,15) 5h30 5h30 8 heures 5 jours 12 semaines

PSA total(1) 1 jour 1 jour 7 jours 30 jours 3 mois

TROPONINE T(1) 8 heures 8 heures 1 jour 1 jour 3 mois



Hématologie

Analytes


Sans décantation


+2/+8°C

-20°C

ERYTHROCYTES (2) 4 jours 4 jours 7 jours

FORMULE LEUCOCYTAIRE (2) 12 heures 12 heures Ne pas conserver au réfrigérateur

HÉMOGLOBINE (2) 4 jours 4 jours 7 jours

LEUCOCYTES (2) 7 jours 7 jours Ne pas conserver au réfrigérateur

PLAQUETTES (2) 7 jours 7 jours

RÉTICULOCYTES(2) 1 jour



Hémostase

Analytes




Sans

décantation

avec décantation


TP INR(21,22), D-dimères(21,22), Fibrinogène(21,23),

24 heures 24 heures 24 heures 16 mois

TCA(3, 20,21) (sans HNF) < 6h 6 heures 6 heures 12 mois

TCA si HNF[21] 2 heures 6 heures (double

centrifugation) [26]

Héparinémie standard (HNF) [21] 2 heures 4 heures Double centrifugation avec congélation si

non fait sur site

Héparinémie fractionnée (HBPM) [21] 4 heures 24 heures Double centrifugation avec congélation si

non fait sur site

Facteur VIII, Facteur XII [21] 4 heures Double centrifugation avec congélation Cf préconisations BPR 6 mois

Facteur V, Protéine S Ag [21] 8 heures Double centrifugation avec congélation Cf préconisations BPR 12 mois

AUTRES MARQUEURS D’HÉMOSTASE ([21] ≥ 12heures Double centrifugation avec congélation Cf préconisations BPR > 4 mois



Immunohématologie

Analytes




Sans

décantation

avec décantation


+2/+8°C -20°C

GROUPE SANGUIN(16) 7 j réfrigéré 7 j réfrigéré 7 jours

RAI (17) 72 h réfrigéré 72 h réfrigéré 72 réfrigéré

Médicaments toxiques

Analytes




Sans décantation


Gentamicine(2) 4 heures 4 heures 4 heures 4 semaines 4 semaines

Lithium(2) 1 heure 1 heure 1 jour 7 heures 6 mois

Vancomycine ND ND 2 heures 48 heures 4 semaines

Biologie du LCR

Analytes Température ambiante +2/+8°C -20°C

Albumine(2) 1 jour 2mois 1an

Glucose LCR(2) 5 heures 3 jours 1 mois

IgG(2) 1 jour 7 jours Instable

Leucocytes(2) 1-2 heures 3-5 heures

Protides LCR(2) 1 jour 6 jours 1 an



Gazométrie artérielle

Analytes Conservation maximale

avant analyse


Sans décantation

Température ambiante Température ambiante

GAZ DU SANG (2,25) 30 minutes à temperature ambiante

Chimie-Enzymologie urinaire

Analytes

Conservation maximale Température ambiante +2/+8°C -20°C

5-HIA(1) 2 heures 2 jours 2 jours

ACIDE URIQUE(2) Instable à pH <7 4 jours si pH >8 Instable Instable

ACIDE VANYLMANDÉLIQUE(2) 7 jours 7 jours 1 an

ALBUMINE (1) 7 jours 1 mois 6 mois

AMYLASE (1) 2 jours 10 jours 3 semaines

BANDELETTES (2) 1 heure

CALCIUM (1) 2 jours 4 jours 3 semaines

CATÉCHOLAMINES (2) 4 jours 4 jours 20 jours

CRÉATININE(1) 2 jours 6 jours 6 mois

CUIVRE(1) 3 jours 7 jours 1 an

GLUCOSE (24) 8 heures (en l’absence d’infection) 2 jours

HYDROXYPROLINE(1) 5 jours 5 jours 5 jours

MAGNESIUM (1) 3 jours 3 jours 1 an



Analytes

Conservation maximale Température ambiante +2/+8°C -20°C

OSMOLALITÉ(1) 3 heures 7 jours 3 mois

PHOSPHORE (1) 2 jours à pH <5

PORPHOBILINOGÈNES PORPHYRINES(1) 4 jours

A l’abri de la lumière

7 jours


1 mois


POTASSIUM (1) 45 jours 2 mois 1 an

PROTIDES (1) 1 jour 7 jours 1 mois

SODIUM (1) 45 jours 45 jours 1 an

URÉE (2) 2 jours 7 jours 4 semaines

Microbiologie

Prélèvements Conservation maximale

Température ambiante +2/+8°C 37°C

HÉMOCULTURES(4) 48 heures NON NON

LCR(4) Pas de conservation : URGENCE !!!! Transport à température ambiante

ECBU

sur flacon non boraté(4) 2 heures 24 heures NON

sur flacon boraté(4) 48 heures 48 heures NON

SÉCRÉTIONS BRONCHO PULMONAIRES(4) 2 heures NON NON

RECHERCHE DE SANG DANS LES SELLES 2 heures

1 semaine en suspension

8 heures NON

COPROCULTURES SANS PARASITO(4) 2 heures 12 heures NON

SÉCRÉTIONS ANO-GÉNITALES



E-Swab (4) 48 heures

24 heures pour le gonocoque

NON NON

écouvillon gélosé (4,19))) 24 heures NON NON

écouvillon sec (4) 2 heures NON NON

MYCOPLASMES URO-GENITAUX 8 heures sur milieu UMMt 16 heures sur milieu UMMt NON

SPERMOCULTURE(4) 2 heures NON NON

SÉCRÉTIONS ORL OU OCULAIRES

E-Swab (4) 48 heures NON NON

écouvillon gélosé (4,19)) 24 heures NON NON


PEAU ET PUS SUPERFICIELS(4) 6 heures NON NON

E-Swab (4) 48 heures NON NON

écouvillon gélosé (4,19))) 24 heures NON NON


PUS PROFONDS(4) 2 h sans milieu de transport 6 heures NON

LIQUIDE ARTICULAIRE(4) 2 heures NON NON

LIQUIDE ASCITE PLEURAL(4) 2 heures 6 heures NON

CATHÉTER(4) 2 heures NON

MYCOLOGIE CUTANÉE(4) Plusieurs jours NON NON

PARASITOLOGIE DES SELLES

2 heures

Sinon faire préparation avec solution MIF

CHLAMYDIAE URINAIRES 24h

PARASITOLOGIE SANGUINE 72 heures



(1) World health organization : use of anticoagulants in diagnostic laboratory invesigations 2002 WHO/DIL/LAB 99.1 Rev 2 (2) Reference Ranges for Adults and Children: Pre-Analytical Considerations 2008-Roche (3)Recommandations 2007: prélèvements destinés aux tests d'hémostase – GEHT (4)REMIC: référentiel en microbiologie médicale 2010 (5)Boyanton 2002 (6)CLSI H18 A4 (7)Tanner 2008 (8)Portugal, 2010 (9)Gobinet, 2000 (10)German Society for Clinical Chemistry § Laboratory Medecine 2010 (11) M.J. Ellis et al./Clinical Biochemistry 36 (2003) 109-112 (12)Foucher, 2005 (13)Saunier, 2009, Feuillets de Biologie Clinique (14)Portugal, 2012 (15)Pironeme (16)G. Togni, C. Volken, G. Sabo , Forum Med Suisse No 6 6 février 2002 (17)Cahier Bioforma N° 26 Immuno-hématologie et groupes sanguins (18) Etude interne 2012 site de Vendôme

(19)Préconisations fournisseurs : http://www.cml.fr/produits_cml/prelevement/pdf/2007/prelevements-bacteriologiques.pdf (20)Adcock D, Kressin D, Marlar RA. The effect of time and temperature variables on routine coagulation tests. Blood Coagul Fibrinolysis 1998;9:463-70 (21)Mauge L, Alhenc-Gelas M, Stabilité pré-analytique des paramètres de la coagulation : revue des données disponibles. Ann Biol Clin 2014 ;72(2) :141-5

(22)Zurcher M, Sulzer I, Barizzi G, Lämmle B, AlberionL. Stability of coagulation assays performed in plasma from citrated whole blood transported at ambient temperature. Thromb

Haemost 2008; 99 :416-26

(23)Salvagno GL, Lippi G, Montagnana M, Franchini M, Poli G, Guidi GC. Influence of temperature and time before centrifugation of specimens for routine coagualtion testing. Int J

Lab Hematol 2009;31:462-7

(24)Zehner L., Coffre M., Mariotti V., Mariotti P. Chimie urinaire et préanalytique : recherche de solutions pratiques. B22-CNBH, Toulouse septembre 2012

(25) A. Skurup. Recommandations de stockage des échantillons de gaz du sang. Bulletin n°31-2005 Radiometer

(26) D’après Mauge L, Alhenc-Gelas M, Stabilité pré-analytique des paramètres de la coagulation : revue des données disponibles. Ann Biol Clin 2014 ;72(2) :141-5 : double

centrifugation pour s’affranchir du relargage de facteur 4 plaquettaire

http://whqlibdoc.who.int/hq/2002/WHO_DIL_LAB_99.1_Rev.2.pdf

http://site.geht.org/site/Pratiques-Professionnelles/Recommandations-GEHT/Variables-Preanalytiques/Recommandations-Variables-preanalytiques_69_722.html

http://www.cml.fr/produits_cml/prelevement/pdf/2007/prelevements-bacteriologiques.pdf



9.6 Annexe : élimination des déchets

Documents

MANUEL DE PRELEVEMENT - mediplusonline.fr · 3.3.2 Prélèvements vaginaux chez la femme ... Les préconisations patients sont disponibles sur notre site internet , dans le