AT 16: Observation de moisissures

Technique  du  drapeau  (livre  page  100)  Organisa7on  du  poste  de  travail

Dépôt  d’une  gou.e  de  bleu  coton  sur  une  lame  

     Prélèvement  de  la  culture  à  l'aide  du  pic  recouvert  de  ruban  adhésif    

Dépôt  du  ruban  adhésif  sur  la  lame  à  l'aide  d'une  pince,  côté  prélèvement  sur  la  lame  

Dépôt  d'une  gou.e  de  bleu  coton  sur  le  dessus  du  ruban  

Dépôt  d'une  lamelle  

Mise  en  oeuvre  de  la  technique  du  drapeau

Analyse  des  risques  de  l’exemple  ?

Démarche  d’analyse  des  risques.1)  Iden7fica7on  des  dangers  : biologique chimique électriquephysique

2) Situations exposantes au danger et évènement(s) dangereux possible(s)

3) Choix des mesures de prévention adaptés

La situation exposante précise l’environnement et le matériel utilisé

Envisager l’évènement dangereux pour le manipulateur et pour les élèves voisins

Il faut envisager les adaptations de la situation de travail avant la mise en œuvre des EPI et EPC.

Danger Biologique Prélèvement et coloration des moisissures

Contamination par aérosols ou contact direct

Utilisation correcte du PSM (décontamination de tout le matériel avant entrée sous le PSM) Utilisation de matériel à usage unique, éliminé en DASRI mous Décontamination de la pince après usage (pot de désinfectant sous le PSM à sortir avant d’éteindre le PSM)

Observation des moisissures Contamination par contact Elimination des lames dans DASRI dures et décontamination des microscopes si nécessaire

Danger Chimique Utilisation du Bleu de lactophénol

Dangereux par contact cutané, contact oculaire, inhalation

Utilisation d’un flacon compte-gouttes, port des gants

Danger Physique Utilisation du microscope et du PSM

Electrisation Vérification de l’état apparent du matériel

Utilisation de matériel en verre (lame, lamelle, tube, pot)

Coupure suite à un bris de verre Manipuler avec précaution

Observations macroscopiques et microscopiques

h.p://www.iata.csic.es/jpolaina/Mucor1.JPG  

Mucor

sporangiospores

columelle    (ovoïde)

Filament  siphonné  (non  segmenté)

sporangiophore  non  ramifié

sporange  globuleux

Mucor

http://pathmicro.med.sc.edu/mycology/mucor-dk.jpg

Mucor

Mucor

Penicillium    roquefor.

http://farm4.static.flickr.com/3268/2902232380_88e96dee32.jpg

Penicillium

conidies  en  longues  chaînes

mycélium  septé

conidiophores  plus  ou  moins  ramifiés  de  façon  

dichotomique  en  pinceaux

phialide

métule]

http://www.uoguelph.ca/~gbarron/MISC2004/penicill.htm

Penicillium

http://bit.ly/1C8DRkchttp://bit.ly/1wcG3m6

Penicillium

Aspergillus  niger

http://bit.ly/1IyEBmS http://bit.ly/1AgEE0i

http://bit.ly/1KLk8gFAspergillus    flavus

Aspergillus    nidulans

conidies  (groupées  en  longues  chaînes)

phialides  (cellules  conidiogènes),  disposées  en  1  ou  2  rangées,  sur  

une  parTe  ou  toute  la  surface  de  la  vésicule

conidiophore

mycélium  septé  (segmenté)

vésicule

tête  aspergillaire

Aspergillus

Scanning electron micrograph of the asexual reproductive apparatus of Aspergillus niger. Partially freeze-dried (Read, 1991).

Aspergillus

py.guillaume1.free.fr/.../aspergillus_niger3.jpg

Aspergillus

http://bit.ly/1xr0rAj

Aspergillus  flavus

http://bit.ly/1KLllom

Aspergillus  flavus

http://bit.ly/1y0azVz

http://bit.ly/1ARy0jZ

Aspergillus  flavus

http://bit.ly/154n2wh

Aspergillus  nidulans

http://bit.ly/1yl3iyP

Aspergillus  nidulans

http://bit.ly/1B3fN5F

Aspergillus  nidulans