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45ème Congrès du Groupe Français des PesticidesVersailles, 27-29 mai 2015
Sana Romdhane, Marion Devers-Lamrani, Fabrice Martin-Laurent , Christophe Calvayrac , Emilie
Rocaboy-Faquet , David Riboul, Jean-François Cooper & Lise Barthelmebs
Biocapteurs Analyse Environnement, F-66860, Perpignan, France
Laboratoire de Chimie des Biomolécules et de l’Environnement – CRIOBE – USR 3278 CNRS EPHE, F-66860, Perpignan, France
INRA, UMR 1347 Agroécologie, Pole Ecoldur, 17 rue Sully, BP 86510, 21065 Dijon Cedex, France
INPT, ENSIACET, Université de Toulouse, 31432 Toulouse, France
Laboratoire de Génie Chimique (LGC UMR 5503), CNRS, 4 allée Emile Monso, BP 84234, 31432 Toulouse, France
Isolement et caractérisation de Bradyrhizobium sp. SR1 dégradant deux
herbicides β-tricétones
ANR Projet TRICETOX
• Recommandés pour les traitements de pré et post-levée en
maïsiculture.
Herbicides β-tricétones : utilisation et mode d’action
Sulcotrione Mesotrione
Tembotrione
Leptospermone
• Mode d’action : inhibition de p-hydroxyphénylpyruvate dioxygénase (HPPD)
Perturbation de la photosynthèse + blanchissement
• Dérivé de la leptospermone
• Remplacement de l’atrazine
a b
Devenir des herbicides dans l’environnement : processus impliqués
•Adaptation par acquisition des capacités de dégradation des pesticides
• Rôle important de la dégradation microbienne dans l’atténuation des pesticides
Herbicide
volatilisation
Lixiviation
ruissellement
SolAdsorption
Désorption
EauDégradation microbienne
Dégradationabiotique
Hydrolyse
Photolyse
Biodégradation des herbicides β-tricétones : état des lieux
Mésotrione
Sulcotrione1,3-cyclohexanedione (CHD)
+ acide 2-chloro-4-méthyl sulfonylbenzoïque (CMBA)
Pseudomonas sp. 1OP
Calvayrac et al. 2012
Chaabane et al. 2008
Biodégradation Métabolites
Bacillus sp. MES11
Bacillus sp. 3B6
Biodégradation Métabolites
Durand et al. 2006 ; 2010
Batisson et al. 2009
AMBAMNBAM2, M3, M4
Comportement
Comportement
DT50 : entre 16 et 122 jours
DT50 : entre 6 et 34 jours
Durand et al. 2006 ; 2010
Batisson et al. 2009
Prélèvement au champ
Cultures d’enrichissement
Dilution et Étalement
Analyse chromatographique
CLHP/UV et CLHP/ SM
Objectif : isolement d’une souche dégradant la sulcotrione
Prélèvement au champ
Cultures d’enrichissement
Dilution et Étalement
Analyse chromatographique
CLHP/UV et CLHP/ SM
Bradyrhizobium sp. SR1
Séquençage ARNr 16S
Isolement de Bradyrhizobium sp. SR1
0
20
40
60
80
100
120
0 2 4 8 12 20 24 32 38 48 72Temps (heures)
Concentr
ation (
µM
)
Dégradation de la sulcotrione par Bradyrhizobium sp. SR1
Sulcotrione CMBA
Temps de demi- vie : 13 h
Accumulation du CMBA
0
20
40
60
80
100
120
0 2 4 8 12 20 24 32 38 48 72Temps (heures)
Concentr
ation (
µM
)
Dégradation de la sulcotrione par Bradyrhizobium sp. SR1
Sulcotrione CMBA
0
10
20
30
40
50
60
0 24 48 72
Co
nce
ntr
atio
n (
Arb
itra
ryU
nit
)
LC-MS/MS HR
Sulcotrione Hydroxy-sulcotrione CMBA
Temps de demi- vie : 13 h
Accumulation du CMBA
Identification d’un nouveau métabolite :
hydroxy-sulcotrione
UV:254nm
CMBA Sulcotrione
??
Formule brute retenue (ion) :
C14H12O6ClS
Temps (heures)
• Tembotrione ?
• Leptospermone ?
• Mésotrione
0
20
40
60
80
100
120
0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20
Temps (jours)
Co
nce
ntr
atio
n (
µM
)
AMBAMésotrione MNBA
Biodégradation d’autres herbicides tricétones
Accumulation des métabolites connus:
MNBA et AMBA
Temps de demi- vie : 3 jours
Hypothèse: affinité plus importante des enzymes pour la sulcotrione
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20
% in
hib
itio
n d
e l’H
PP
D
Toxicité microbienne des herbicides tricétones et de leurs métabolites
Inhibition de l’HPPD ?
Temps (heures)
Concentr
ation (
µM
)
0
20
40
60
80
100
120
0 1 2 4 6 8 10 12 20 24 32 38 48 72 96
Culture de Bradyrhizobium sp. SR1
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20
% in
hib
itio
n d
e l’H
PP
D
Toxicité microbienne des herbicides tricétones et de leurs métabolites
Toxicité microbienne liée à l’inhibition de l’HPPD est due aux molécules mères (mésotrione et sulcotrione) et non pas à leurs métabolites
Toxicité importante du CMBA mesuré par Microtox (V. fischeri ) (Bonnet et al. 2008)
Mesure de l’inhibition de l’HPPD par la sulcotrione et ses métabolites par un bioessai colorimétrique
(Rocaboy et al. 2014)
Temps (heures)
Concentr
ation (
µM
)
0
20
40
60
80
100
120
0 1 2 4 6 8 10 12 20 24 32 38 48 72 96
Culture de Bradyrhizobium sp. SR1
Stratégie 2 : recherche des gènes dans le génome complet (chromosome et plasmide)
Stratégie 1 : recherche des gènes sur le plasmide
Dégradation de la sulcotrione chez Bradyrhizobium sp. SR1 : Localisation du système génétique impliqué
Curage du plasmide
Plasmide non curé / phénotype de
dégradation stable
Transfert du plasmide
1- Marquage / transfert vers E.
coli par électroporation
2- Transfert vers Bradyrhizobium sp. G49
électroporatoion / conjugaison
Transfert non réussi Gènes essentiels à la survie de la souche Absence de dégradation chez E. coli
Dégradation de la sulcotrione chez Bradyrhizobium sp. SR1 : Localisation du système génétique impliqué
Stratégie 1 : recherche des gènes sur le plasmide
Profil plasmidique de SR1 (>48kb)
48 kb
1 2 3 4
2- Criblage d’une banque de 14 000 mutants Tn5 de la souche Bradyrhizobium sp. SR1 sur la perte de capacité de dégradation de la sulcotrione
1- Insertion aléatoire d’un Tn5 dans le génome de la souche à l’aide d’un plasmide suicide
Stratégie 2 : recherche des gènes dans le génome complet
(chromosome et plasmide)
Absence de sulcotrione HPPD non inhibé
Dégradation de la sulcotrione chez Bradyrhizobium sp. SR1 : Localisation du système génétique impliqué
Méthode de criblage : suivie de la dégradation
de la sulcotrione par les clones en utilisant un
test colorimétrique basé sur l’inhibition de
l’HPPDPrésence de sulcotrione HPPD inhibé
Conclusions
Identification des gènes impliqués dans la dégradation de la sulcotrione (en cours)
Perspectives
Isolement de Bradyrhizobium sp. SR1 qui dégrade la sulcotrione et la mésotrione
Identification d’autres métabolites de la voie de dégradation de la sulcotrione
Mise en évidence de l’adaptation à la biodégradation de deux β-tricétones
micro-organismes sensibles à l’inhibition de l’HPPD
micro-organismes sensibles au CMBA
Isolement d’une souche dégradant le CMBA