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CMH et Transplantation

CMH et Transplantation. Transplantation autogreffe : chez le même individu (dun endroit du corps vers un autre) isogreffe : entre des jumeaux homozygotes

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Transplantation

• autogreffe : chez le même individu (d’un endroit du corps vers un autre)

• isogreffe : entre des jumeaux homozygotes génétiquement identiques

• allogreffe : entre individus génétiquement distincts mais appartenant à la même espèce

• xénogreffe : entre individus d’espèces différentes

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Alloantigènes

• molécules dont le polymorphisme interindividuel est responsable de réponses immunitaires allogéniques

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• plusieurs mécanismes responsables du polymorphisme– au niveau de séquences codantes du gène : protéines de

séquences différentes d ’un individu à l ’autre (ex. CMH, Rhésus)

– au niveau de l’activité d’enzymes impliquées dans la synthèse des épitopes antigéniques (ABH, Lewis)

– au niveau de séquences régulatrices de l’expression du gène (selon les individus : expression ou pas d’expression de la protéine considérée).

Alloantigènes

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Les différents systèmes alloantigéniques

• groupes sanguins (ABO, Rh) et autres

• complexe majeur d’histocompatibilité

• antigènes mineurs d’histocompatibilité– 5% des allogreffes rénales HLA identiques sont

rejetées– tout ce qui n’est pas MHC (ou ABO Rh) et qui peut

provoquer un rejet. Ex : antigène H-Y

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• il existe beaucoup d’autres protéines polymorphiques allotypiques qui interviennent pas ou peu dans l ’histocompatibilité (p. ex. allotypes des immunoglobulines, allotypie de certains antigènes de différenciation des lymphocytes T (CD…)

Les différents systèmes alloantigéniques

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Les deux types d’alloreconnaissance

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Afférences du rejet aigu : rôle des cellules dendritiques

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Molécules du CMH

• Classe I et Classe II

• Molécules présentatrices de peptidesClasse I - intracellulaires / Classe II - extracellulaires

• Chaque molécule du CMH peut se lier à 1000 peptides différents

• Ligands pour TCR (sélection thymique)

• Gènes les plus polymorphiques du génome

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HLA : chromosome 6

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Classe I

• Chaînes des molécules HLA-A, HLA-B, HLA-C

• La chaîne (2-microglobuline) est codée sur le chromosome 15 (pas dans le HLA)

• Chaînes d’autres molécules dites « non classiques » (HLA-E, HLA-F, HLA-G)

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Classe II

• Chaînes et des molécules HLA-DR, DP et DQ

• Pour des DP et DQ, les chaînes et sont très polymorphiques et peuvent dimériser de quatre façons

• Pour DR, la chaîne n’est pas polymorphique, tout le polymorphisme provient de la chaîne

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HLA classe II

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HLA classe II

• DRB1 toujours exprimé• DRB 3, 4, 5 pas toujours exprimés et mutuellement exclusifs

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HLA-DR

• Dans certains cas, présence de deux locus DRB– Soit seulement DRB1– Soit DRB1 et DRB3– Soit DRB1 et DRB4– Soit DRB1 et DRB5

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HLA-DR

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Diversité des allèles HLA II

• HLA-DRB1 : 222 • HLA-DRB3 : 19• HLA-DRB4 : 9 • HLA-DRB5 : 14 • HLA-DRA : 2• HLA-DPA : 17• HLA-DPB : 86• HLA-DQA : 20• HLA-DQB : 42

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Typage HLA

• 1. Sérologie

• 2. Culture lymphocytaire mixte

• 3. Analyse génétique

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Sérologie

– Utilisation d’anticorps anti-HLA isolé du sérum de femmes multipares (anticorps dirigés contre les HLA d’origine paternelle)

– Discrimination limitée : reconnaissance de déterminants antigéniques communs à plusieurs molécules HLA très proches

– Exemple : plusieurs molécules HLA-DR différentes sont reconnues par le même anticorps anti-HLA-DR4

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Typage lymphocytaire mixte

• Le pouvoir de discrimination des lymphocytes T est supérieur à celui des lymphocytes B– Puisque le rejet est surtout lié aux

lymphocytes T, importance de faire mieux que la sérologie

– Utiliser les lymphocytes T pour faire le typage HLA

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Typage lymphocytaire mixte

• Utilisation de lymphocytes T de référence dirigés contre une seule spécificité HLA

• Grâce à ceux-ci, amélioration de la discrimination apportée par la sérologie

• Exemple– DR4 (en sérologie) est discriminé en

DR4Dw4, DR4Dw10, DR4Dw14 (en typage lymphocytaire mixte)

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Analyse génétique : DNA typing

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DNA typing

• Le DNA typing améliore encore la discrimination par rapport au typage lymphocytaire mixte

• Exemple DR4Dw14 comprend au moins deux allèles distincts identifiés par DNA typing

• C’est le DNA typing qui détermine in fine le numéro de série allélique

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HLA : nomenclature

Sérologie et génotypage

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HLA nomenclature

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HLA-A : nomenclature

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HLA-B : nomenclature

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HLA-C : nomenclature

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La fréquence des allèles varie selon les populations

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L’influence des différents alloantigènes HLA sur le rejet n’est

pas identique!

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L’initiation des réponses allogéniques directes par les DC implique la

participation des lymphocytes T CD4• Les molécules HLA de classe II sont les plus

importantes et en particulier les molécules HLA-DR• Rôle moindre mais non négligeable des molécules

HLA de classe I (phase effectrice de la réponse)– HLA-B

– HLA-A

– (importance beaucoup moindre de HLA-C)

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Mismatches HLA classe I et transplantation rénale

Ne plus considérer HLA-A et HLA-B en transplantation rénale?

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Typage HLA de routine

• HLA-DR (typage HLA-DRB1 de haute définition)

• HLA-B

• HLA-A

3 loci donc 6 allèles, donc de 0 à 6 3 loci donc 6 allèles, donc de 0 à 6 mismatchesmismatches possibles possibles entre donneur et receveurentre donneur et receveur

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Donneurs apparentés vs. non apparentés

• Donneurs cadavériques– 0, 1, 2, 3, 4, 5 ou 6 mismatches

• Donneurs vivants apparentés– 0, 3 ou 6 mismatches– Notion d’haplotype matching

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Transmission haplotypique et donneurs familiaux

• « 1 haplotype-match » = 3 mismatches

Car ces allèles ne sont pas transmis de façon indépendante

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Donneur ½ vie greffon % survie du greffon à 10 ans

Apparenté identique 0 MM

24.0 74

Cadavre 0 MM 20.3 65

Apparenté 1 haplotype (3MM)

12.0 54

Non apparenté vivant avec 6MM

12.0 54

Cadavre 1-2 MM 10.4 45

Cadavre 2-3 MM 8.4 38

Cadavre 4-5 MM 7.7 34

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Différentes techniques pour mettre en évidence les anticorps anti-HLA

• Technique de référence : cytotoxicité avec complément de lapin ajouté CROSSMATCH– Sérum du receveur

• Lyse de lympho T et lympho B : anti-HLA-I• Pas de lyse de lympho T et lyse de lympho B : anti-HLA-II• Aucune lyse : pas d’anti-HLA

• Autres techniques (très sensibles mais moins spécifiques)– ELISA– Cytométrie en flux

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Avantage des donneurs vivants par rapport aux donneurs cadavériques

• vivant avec 4 MM : 54% à 10 anscadavre avec 1-2 MM : 45% à 10 ans

• influence fondamentale de la souffrance (ischémie, reperfusion etc.) de l’organe dans son immunogénicité

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Autres facteurs qui influencent le risque de rejet

• En cas de donneur cadavérique, une ischémie du greffon de plus de 36h est associée à un risque accru de rejet quel que soit le nombre de mismatches

• Autres facteurs intrinsèques indépendants des mismatches HLA

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Culture lymphocytaire mixte

•Si blastogenèse en 5-7 jours, réponse considérée comme positive•Réponse positive reste prédictive du rejet•Adaptation des schémas immunosuppresseurs•Prend du temps, difficile à réaliser avec des donneurs cadavériques

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Culture lymphocytaire mixte et pronostic du rejet aigu

0

10000

20000

30000

40000

50000

60000

70000

0 20 40 60 80 100 120

[PHA] (ug/ml)

cpm

0

5000

10000

15000

20000

25000

1:1 1:2 1:4 1:8 1:16

Stimulator/Responder ratio

cpm

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Anticorps anti-HLA

• Les lymphocytes T jouent un rôle majeur dans le rejet

• Mais dans certains cas des anticorps peuvent induire des rejets très précoces

• Pourquoi certains patients ont-ils des anticorps anti-HLA– Transfusions– Grossesses– Transplantation préalable

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Tous les anticorps anti-HLA ne sont pas égaux

• Les anticorps anti-HLA-A ou –B ou –C sont plus dangereux que les anticorps anti-HLA-DR

• Les IgG ont plus de signification clinique que les IgM

• Les anticorps fixant le complément sont plus pathogènes

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Evaluer la présensibilisation aux antigènes HLA

• Deux approches– Présensibilisation « globale » contre un pannel

d’antigènes HLA (panel reactive antibodies : PRA) – avant sélection du donneur

– Présensibilisation spécifique contre les antigènes HLA du donneur considéré (crossmatch) – après sélection du donneur, avant transplantation

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PRA

• Le PRA peut être considéré comme un indice de la probabilité d’avoir un crossmatch positif– Aux EU, parmi les patients en liste d’attente, 20%

ont des PRA entre 10 et 79% et 14% sont au dessus de 80%

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Recherche d’anticorps anti-HLA chez le receveur

• Transfusions répétées

• Grossesses

• Transplantation préalable

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Un crossmatch anti-HLA-I est en principe une contre-indication à la

transplantation

• Protocoles de désensibilisation– Immunoglobulines intraveineuses– Plasmaphérèse