La Science Tout Simplement - Atom Scientific

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La Science Tout Simplement

Kits de Diagnostics

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Des Produits conformes aux

normes ISO15189, offrant fiabilité

et constance à la Science,

tout simplement

Notre HistoireAtom Scientific est une société spécialisée dans la fabrication de kits de diagnostic par colorationDepuis 50 ans Atom Scientific œuvre à délivrer une qualité exceptionnelle au service de l’industrie scientifique à travers le monde entier

Historique Qualité EquipementsEtablis en 2009, Atom Scientific est

spécialisé dans la fabrication de kits

de diagnostic par coloration ainsi que

dans la fabrication de ses colorants

pour l’industrie Sciences de Vie en

Laboratoires.

Alors que la société s’est agrandie notre

gamme de produits s’est logiquement

étendue pour incorporer une variété

complète de produits chimiques

complémentaires afin de satisfaire les

besoins de nos clients.

Nos principaux objectifs :

• La Qualité

• Le Service

• Le bon rapport Qualité/Prix

Notre Système de gestion en qualité est

certifié ISO9001 :2008

Notre QA/ Service Qualité contrôle et

garantit la conformité des composants

du produit brut au produit fini et

s’assure de la fiabilité de tous nos

produits

Notre Laboratoire d’examen de

Sciences de vie est géré par des

scientifiques expérimentés qui

s’assurent de la conformité requise par

ISO 15189, ce qui fait gagner du temps

et des ressources à nos clients tout en

leur garantissant un travail de qualité

constant

En 2014, la société a ouvert son seul et

unique site de Manchester, qui a permis

d’accroître massivement sa capacité

opérationnelle, tout en s’assurant d’être

en conformité avec la législation actuelle

et future

Nous offrons les produits finis sous

différents formats qui vont de 10ml/10mg

à 25L/25Kg et nous avons une capacité de

production pour des échantillons allant

par exemple de 500ml et jusqu’à 5000L

Nos équipements peuvent faire face à

différentes sortes de demandes allant

d’une commande d’une seule bouteille

de produits à quelques milliers de

bouteilles ce qui nous permet de réduire

considérablement les délais de livraison et

d’offrir des livraisons rapides

Tous les produits chimiques et réactifs

proposés par Atom Scientific sont

fabriqués, emballés par nos soins, et

distribués sur place - dans notre seul et

unique site de Manchester

Nous Contacter

0044 (0)161366 5123

0044 (0) 1704 33 7167

www.atomscientific.com

Notre mission est de faire une science pour tous, de proposer des produits certifiés haute qualité, accessibles en termes de prix, emballés soigneusement et livrés en

toute sécurité- où vous voulez - quand vous le désirez.

Les commandes

Supports Techniques

Certi f icate No: 11337ISO 9001 [email protected]

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Les commandes peuvent être passées en ligne, par E-mail ou par fax.

Toutes les commandes doivent inclure l’adresse de livraison ainsi que l’adresse de facturation et le détail du produitcomme suit :

• Code produit• Nom du produit• Format du produit • Quantité• Prix

Tous les prix de notre site web sont cotés EXW Sauf erreurs et omissions

Atom Scientific propose sur son site internet les fiches Techniques de ses produits, qui peuvent être téléchargées:

• Fiche Sécurité (MSDS)• Certificat de Conformité• Certificat d’Analyse• Fiche protocole du produit

Si vous nous transmettez l’adresse email de votre service technique, la fiche Sécurité vous sera envoyée automa-tiquement par retour e-mail au moment de l’expédition de votrecommande.

Et si vous avez besoin d’assistance technique, n’hésitez pas s’il vous plait à contacter notreservice à cet adresse mail :

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Kits de Coloration

100 TestCes Kits sont réalisés avec 50ml de composants , conditionnés dans notre emballage Atom Scientific.

Chaque kit contient un protocol d’utilisation du produit.







Formats100 Test fournis avec des bouteilles de 50ml 200 Test fournis avec des bouteilles de 100ml500 Test fournis avec des bouteilles de 250ml1000 Test fournis avec des bouteilles de 500ml

Qualité

Excellence Technique

Atom Scientific possède un service de controle qualité interne de renommée. Avec les systèmes de découpes, de coloration, de champ lumineux et microscopie fluorescente, chaque échantillon de coloration fabriquée est testé avant d’être mis en vente. Un lot de fabrication du produit est retenu durant la durée de conservation du produit. Les échantillons sont testés à interval régulier pour assurer la stabilité de la qualité sur le long terme. Les tests internes nous permettent de répondre rapidement aux éventuels questions techniques que nos clients peuvent avoir.

Fabriqué dans notre infrastructure à Manchester nous maintenons un large stock . Nous sommes capables de réagir rapidement aux demandes fluctuantes de nos clients.

Certifié ISO9001:2000 et opérant aux stricts normes HSE, notre capacité de fabrication varie de 100ml à 1600L.

Tous les produits chimiques et produits réactifs offerts par Atom Scientific sont préparés, emballés et distribués sur place.

T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.comT: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com

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Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration des sulfomucines et des protéoglycanes contenant du sulfate. Les tissus qui présentent cette coloration comprennent le cartilage, les mucines des cellules de gobelet du gros intestin et les mucines des glandes séreuses

Kit de Coloration Bleu d’Alcian pH 1.0

Contenu du Kit

Bleu d’alcian - 8GX 1% dans 0.1N HCL

Hémalum de Mayer

Informations Générales

Durée de la procédure

Durée de Conservation

Entreposage

40 min (environ)

3 ans ( à partir de la date de manufacture)

15-25 ° C

Résultats

Sialomucines carboxylées, Acide hyaluronique: Pas de coloration

Protocole

1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet

2. Teindre au bleu alcian 8GX 1% dans 0.1N HCL pendant 30 minutes

3. Bien laver à l’eau distillée

4. Colorer les coupes à l’hémalun de Mayer pendant 30sec -1 minute

5. Différencier rapidement et bleuir dans l’eau courante ou le substitut d’eau du robinet Scotts – non fourni

6. Déshydrater, nettoyer et monter

100 Test 200 Test 500 Test 1000 Test

Code - 100 -200 -500 -1000

RRSK300 2 x 50ml 2 x 100ml 2 x 250ml 2 x 500ml

Hazard Information

Mucines Sulfatées, Protéoglycanes Bleu

Ce kit de coloration est une coloration à large spectre pour les mucines. Il met en évidence les sialomucines, les sulfomucines et les protéoglycanes. Il a été démontré que le bleu Alcian se lie et précipite l’acide hyaluronique, le sulfate de chondroïtine et l’héparine à partir d’une solution aqueuse, mais ne précipite pas le glycogène et est donc glycogène négatif contrairement au PAS qui est positif.

Kit de Coloration Bleu d’Alcian pH 2.5

Contenu du Kit

Solution d’Acide acétique 1% dans 3% Acide Acétiquel

Rouge Neutre 0.1% Aqueux

Solution Acide Acétique 3% x 3




Entreposage

45-50 min (environ)


15-25 ° C

RésultatsMucosubstances acides, acide hyaluronique, sialomucines: Bleu/Vert

Rouge

Protocole


2. Teindre dans 1% de bleu alcian pendant 30 minutes

3. Rincer dans 3% d’acide acétique pendant 10-20 secondes

4. Laver à l’eau courant pendant 5minutes

5. Contre colorer au Rouge Neutre pendant 3 minutes

6. Rincer rapidement dans l’eau et sécher la coloration

7. Déshydrater rapidement dans les alcools, nettoyer et monter


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

Noyau/Cytoplasme :


Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration de Mycobacterium Tuberculosis et d’autres organismes acido-résistants dans les coupes de tissus et les frottis. Les parois des mycobactéries ne sont pas facilement pénétrées, donc le phénol est mélangé avec la fuchsine basique pour surmonter cela. Aucune chaleur n’est requise pour cette méthode.

Kit de Coloration AFB (Contre-Couleur Vert Clair)


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Carbol Fuchsin Kinyoun

Différentiateur TB x 2

Vert Clair Aqueux 0.5%




Entreposage

20 min (environ)


15-25 ° C

Résultats

Bacilles acido-résistants (M.tuberculosis):

Cellules et matériel de base, autres organismes:

Magenta / Rouge

Vert

Protocole

Frottis: Préparez les frottis sur des lames nettoyées et laissez sécher à l’air pendant 5 à 10 minutes. Fixer dans de l’éthanol absolu pendant 10 minutes Tissus: Un fixateur standard à base de formaldéhyde fournit des résultats satisfaisants. Les tissus doivent être traités et inclus dans de la cire de paraffine et coupés à 5 microns

1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inonder

2. Inonder les lames avec du carbol fuchsine Kinyoun filtré pendant 10 minutes


4. Démontrer avec le différenciateur TB jusqu’à ce que la préparation soit incolore ou rose pâle (jusqu’à ce


6. Contre-colorer en vert clair pendant 15 secondes


8. Déshydrater rapidement, clarifier et monter. L’immersion dans l’huile peut être utilisée pour la visualisa

qu’il n’y ait plus de colorant), environ 3-5 secondes

les lames avec de l’eau distillée

Hazard Information

UN1992

tion du frottis. La préparation doit être séchée à l’air pendant 20 à 30 minutes avant l’utilisation de l’huile d’immersion.

Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration de Mycobacterium Tuberculosis et d’autres organismes acido-résistants dans les coupes de tissus et les frottis. Les parois des mycobactéries ne sont pas facilement pénétrées, donc le phénol est mélangé avec la fuchsine basique pour surmonter cela. Aucune chaleur n’est requise pour cette méthode.

Kit de Coloration AFB (Contre-Couleur Bleu de Méthylène)

Contenu du Kit

Carbol Fuchsin Kinyoun


Bleu de Méthylène (AFB)


Résultats


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1992

Protocole

Frottis: Préparez les frottis sur des lames nettoyées et laissez sécher à l’air pendant 5 à 10 minutes. Fixer dans de l’éthanol absolu pendant 10 minutes Tissus: Un fixateur standard à base de formaldéhyde fournit des résultats satisfaisants. Les tissus doivent être traités et inclus dans de la cire de paraffine et coupés à 5 microns

1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inonder

2. Inonder les lames avec du carbol fuchsine Kinyoun filtré pendant 10 minutes


4. Démontrer avec le différenciateur TB jusqu’à ce que la préparation soit incolore ou rose pâle (jusqu’à ce


6. Contre-colorer en bleu de méthylène pendant 15 secondes


8. Déshydrater rapidement, nettoyer et monter


qu’il n’y ait plus de colorant), environ 3-5 secondes



Entreposage

20 min (environ)


15-25 ° C



Magenta / Rouge

Bleu


Ce kit de coloration est utilisé pour démontrer la présence de myéline normale. Lorsqu’il est combiné avec un contre-colorant violet de crésyl, la myéline et les substances nissl sont démontrées

Kit de Coloration Bleu Rapide de Luxol




Entreposage

140 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Luxol Fast Blue 0,1% dans du méthanol acidifié

Crésyl Violet 0,5% Solution aqueuse

Crésyl Violet Différentiateur (IMS 99%)

Protocole

1. Déparaffiner les sections et hydrater à 95% d’alcool. Ne pas rincer

2. Colorer dans une solution de bleu rapide luxol pendant 2 heures à 60 ° C ou à 37 ° C pendant une nuit

3. Laver dans de l’éthanol dénaturé à 70% pendant 2-3 secondes pour éliminer l’excès de tache

4. Laver à l’eau du robinet

5. Différencier avec du carbonate de lithium solution jusqu’à ce que les matières grise et blanche soient


7. Check differentiation under the microscope. Repeat step 5 if necessary

8. Stain in cresyl violet solution for 10-12 minutes

9. Wash in tap water

10. Differentiate in cresyl violet differentiator for 4-8 seconds

11. Check differentiation under microscope (only look at nissl substances and nuclei)

12. Dehydrate, clear and mount

Solution de carbonate de lithium 0,05%

Ethanol dénaturé 70%

Résultats

Myéline:

Noyaux, substances Nissl:

Bleu/Vert

Violet/Rose

Hazard Information

UN1992

distinguées

Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration des fibres élastiques et les protéines associées aux cuivres (CAP) dans les découpes de tissu. Certains états pathologiques voient une accumulation de cuivre dans les tissus tels que le foie. Une présence excessive de fibres élastiques dans le foie puissent indiquer une fibrose ou une cirrhose

Kit de Coloration Bleu Victoria


Code - 100 -200 -500 -1000





Entreposage

260 min (environ)


15-25°C

Contenu du Kit

Permanganate de Potassium 0.5% Aqueuse x 2

Acide Sulfurique 3% Aqueuse

Acide Oxalique 1% Aqueuse

Résultats

Copper associated protein, elastic fibres:

Other tissues:

Blue

Red/Pink

* Cette image type pour illustrer seulement

Coloration Bleu de Victoria

Rouge Neutre 0.1% Aqueuse

Protocole

Préparation du Permanganate de Potassium Acidifié

Mélanger 9.5ml de solution de Permanganate de Potassium avec 0.5ml de solution d’acide. sulphurique.

Cette solution violette se gardera pendant 3-4 semaines mais devra être jeter après 5 utilisations ou si elle

vire au marron.

1. Déparaffiner les coupes, hydrater dans les alcools et rincer à l’eau du robinet

2. Traiter avec le permanganate de potassium acidifié pendant 5 minutes

3. Laver bien à l’eau et javelliser avec l’acide oxalique durant 1 minute

4. Laver bien à l’eau

5. Rincer dans 70% alcool (pas fourni)

6. Colorer dans le colorant Bleu de Victoria filtré pendant 4 heures à température ambiante (voir note 1)

7. Différencier dans 70% alcool jusqu’à ce que la teinte ne coule pas de la lame. Cette étape peut

8. Bien laver à l’eau

9. Contrecolorer avec le rouge Neutre durant 30 secondes

10. Laver à l’eau

11. Déshydrater rapidement, clarifier et monter

prendre jusqu’à 30 minutes. Vérifier au microscope toutes les 5 minutes jusqu’à ce que le fond soit complètement décoloré.

Hazard Information

UN1170


Ce kit de coloration est couramment utilisé pour colorer les oocystes de l’espèce Cryptosporidium dans les frottis foecaux. Il est également utile de confirmer la présence d’oocystes d’Isospora belli et de Cyclospora cayetanensis

Kit de Coloration Cryptosporidium




Entreposage

25 min (environ)


15-25 ° C

Résultats

Oocystes de Cryptosporidium parvum: Magenta/Rouge


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1922

Contenu du Kit

Cryptospridium Fixatif

Carbol Fuchsine Kinyoun

TB Différentiateur x 2

Vert malachite 0,5% aqueux

Protocole

1. Immerger dans le fixateur Cryptosporidium pendant 3 minutes

2. Inonder les lames de carbol fuchsine Kinyoun pendant 20 minutes

3. Bien laver dans de l’eau distillée

4. Différencier avec le différenciateur TB jusqu’à ce que la préparation soit incolore ou rose pâle (jusqu’à


6. Contre-colorer avec du vert malachite pendant 1 minute


8. Si une immersion dans l’huile doit être utilisée pour la visualisation des frottis, la préparation doit être

ce qu’il n’y ait plus de colorant environ 10 sec.

séchée à l’air pendant 20-30 min

Oocystes d’Isospora belli:

Oocystes de Cyclospora cayetanensis:

Rouge granulaire

Coloration variable (certaines sont acido-résistantes donnant un trou rond de sphère ridée vitreuse

Ce kit de coloration est utilisé pour la détection de la protéine amyloïde dans les coupes de tissu. L’utilisation de solvants alcooliques alcalins a pour effet de supprimer la coloration d’autres composants tissulaires tout en améliorant la liaison hydrogène, améliorant ainsi la sélectivité pour l’amyloïde. Cette méthode a des solutions stables et a un haut degré de sélectivité.

Kit de Coloration Congo Red (de Highman)

Contenu du Kit

Rouge Congo dans 50% d’éthanol

Hémalun de Mayer

0,2% d’hydroxyde de potassium dans 80% d’éthanol




Entreposage

28 min (environ)


15-25 ° C

Résultats

Éosinophiles, amyloïde, élastine, kératine: Orange/Rouge

Protocole


2. Placer dans une solution de Rouge Congo pendant 15 minutes

3. Faire la différence dans une solution d’hydroxyde de potassium pendant 3 à 10 secondes

4. Laver à l’eau courante

5. Tacher les noyaux avec de l’Hémalum Mayer durant 5 minutes


7. Différencier dans de l’alcool acide à 1% pendant 2 à 10 secondes


9. Bleuir dans l’eau du robinet Scotts

10. Bien laver à l’eau du robinet



Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1170

Noyau: Bleu


Ce kit de coloration peut être utilisé pour démontrer les fibres élastiques dans les coupes tissulaires; recommandé pour la pathologie vasculaire

Kit de Coloration d’Elastique Orcein




Entreposage

135 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Solution d’orcéine (1% d’orcéine dans 1% d’alcool acide)

Permanganate de potassium Solution à 0,5% x 2

Solution d’acide sulfurique à 3%

Solution d’acide oxalique à 1%


Hazard Information

UN1170

Protocole

Préparation du permanganate de potassium acidifié.Mélanger 9,5 ml de solution de permanganate de potassium avec 0,5 ml de solution d’acide sulfurique. Cette solution violette se conserve 3-4 semaines mais doit être jetée après 5 utilisations ou si elle devient brune


2. Oxyder les coupes avec du permanganate de potassium acidifié pendant 5 minutes


4. Blanchir avec de l’acide oxalique à 1% pendant 5 minutes


6. Rincer les coupes dans de l’éthanol dénaturé à 70%

7. Coloration en solution d’orcéine pendant 2 heures à 37 ° C

8. Rincer à l’eau puis à l’éthanol dénaturé à 70%. S’il y a un fond brun (dans le collagène et les

9. Déshydrater, clarifier et monter

noyaux) différencier dans 1% alcool acide - quelques secondes seulement sont nécessaires

Résultats

Antigène de surface de l’hépatite B:

Fibres élastiques:

Protéine associée au cuivre:

Contexte:

Granulés bruns dans le cytoplasme

Marron

Marron foncé/Violet

Rose pâle/Marron

Ce kit de coloration est utilisé pour démontrer les différentes structures tissulaire. L’hématoxyline (Alun) Harris, colore le noyau en bleu-noir et l’éosine colore les cellules cytoplasmiques et la plupart des fibres tissulaires connectives en différentes teintes. Les tons s’intensifient du rose au rouge.

Kit de Coloration d’Eosine et Hématoxyline




Entreposage

35 min (environ)


15-25 ° C


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1770

Contenu du Kit

Hématoxyline Harris

Éosine Y 1% aqueux

Alcool acide 0,5%

Protocole


2. Colorer dans de l’hématoxyline de Harris filtrée pendant 10 minutes

3. Bien laver à l’eau courante du robinet

4. Différencier dans de l’alcool acide à 0,5% pendant 5 à 10 secondes

5. Bien laver dans eau courante


7. Bien laver à l’eau (si l’eau du robinet Scotts est utilisée)

8. Teindre à 1% d’éosine Y pendant 10 minutes

9. Laver à l’eau courante pendant 1 à 5 minutes


Eau du robinet Scotts

Résultats

Noyau:

Cytoplasme:

Fibres Musculaires:

Cellules Sanguines:

Fibres:

Bleu/Noir

Différentes teintes de rose

Rose Intense/Rouge

Orange/Rouge

Rose Intense


Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les lipides hydrophobes, en particulier les graisses neutres dans les tissus. Afin de pénétrer les graisses, le colorant doit être dissous dans des solvants organiques, le solvant doit être suffisamment dilué (aqueux) pour éviter l’extraction des lipides dans la solution. Le solvant le plus utilisé est l’alcool isopropylique (isopropanol / IPA). En outre, le tissu une fois coloré, peut être montré par la lumière polarisée pour démontrer le biréfringement cholestérol

Kit de Coloration d’Huile Rouge O




Entreposage

20 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Coloration Huile Rouge O Saturé dans l’Alcool

Isopropylique

Hémalum de Mayer

Hazard Information

UN1219

Résultats

Lipides hydrophobes saturés (c’est-à-dire cérébrosides, triglycérides, esters de cholestérol):

Phospholipides:

Noyaux:

Rouge

Rose

Bleu

Solution de stock de travail Solution de travail

Ajouter 4 doses d’eau distillée à 6 doses de colorant O d’huile rouge. Bien mélanger et laisser reposer 10 minutes, filtrer avant utilisation. Utiliser immédiatement après la filtration

Protocole

1. Laver les lames avec de l’eau distillée

2. Mélanger 2 parties de colorant Neisser A avec 1 partie de colorant Neisser B et inonder les lames

3. Rincer doucement à l’eau distillée

4. Colorer les lames avec le colorant Neisser C pendant 5 secondes


6. Colorer au colorant Neisser D pendant 10 secondes

7. Rincer et sécher à sec

8. Utiliser la méthode habituelle de visualisation au microscope, par exemple huile d’immersion

avec le mélange de colorant pendant 20-30 secondes.

Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration de mastocytes dans des coupes de tissus. Les granules dans le cytoplasme des mastocytes sont métachromatiques. La coloration métachromatique est due au pH, à la concentration du colorant et à la température du colorant basique

Kit de Coloration Bleu de Toluidine




Entreposage

12 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Bleu de Toluidine 1% dans 70% d’alcool

Chlorure de sodium 0.9% aqueux x 5

Résultats

Mastocyte:

Contours:

Violet

Nuances de bleu

Protocole

Solution de travail

Bleu de toluidine 1 ml

Solution de chlorure de sodium 9 ml

Faire au dernier moment, jeter après utilisation

1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec de l’alcool et rincer à l’eau du robinet

2. Rincer à l’eau distillée

3. Colorer avec la solution de travail au bleu de toluidine pendant 3 minutes

4. Laver avec 3 changements d’eau distillée 5. Déshydrater rapidement à travers les alcools, clarifier et monter

Hazard Information

UN1170


Ce kit de coloration est utilisé pour différencier le glycogène des autres éléments PAS positifs dans les coupes de tissus. Le glycogène est éliminé par digestion enzymatique. Il est souvent utilisé en conjonction avec le kit PAS

Kit de Coloration DPAS

Contenu du Kit

Lipase du pancréas porcin

Solution d’acide périodique 1%





Entreposage

75 min (environ)


Réactifs de Schiff & Lipase 2-8°C – Autres Réactifs 15-25°C

Résultats

Noyaux:

Glycogène:

Neutre/Sialomucines

Diverses glycoprotéines, lipofuchsines précoces:

Bleu-Noir

Pas de coloration magenta

Magenta

Magenta


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

Réactifs de Schiff (Feulgen)

Protocole


2. Traiter avec une solution à 1% de lipase pendant 20 minutes à 37 ° C puis bien laver à l’eau

3. Oxyder les lames avec une solution d’acide périodique pendant 5 minutes

4. Laver bien dans plusieurs changements d’eau distillée

5. Colorer avec du réactif de Schiff pendant 20 minutes à température ambiante

6. Lavez bien les lames à l’eau courante pendant 5 à 10 minutes

7. Colorer les coupes dans l’hématoxyline Harris pendant 1 minute

8. Bien laver à l’eau, différencier dans de l’alcool acide à 0,5% et bleuir à l’eau courante ou au Substitut de


l’eau du robinet Scotts

Ce kit de coloration est utilisé pour la détection des parasites du paludisme dans les frottis sanguins. La coloration de Fields est l’un des colorants originaux Romanowsky utilisant du bleu de méthylène dans une solution faible d’éosine. Avec quelques modifications, il peut être utilisé de manière assez satisfaisante pour la coloration rapide des frottis sanguins minces.

Kit de Coloration de Field

Contenu du Kit

Coloration de Fields A (Solution aqueuse de bleu de méthylène A)

Coloration de Fields B (Solution aqueuse d’éosine Y B)

Tampons Sorensens 200 x Concentré pH 6,8 25 ml pour faire 5 L




Entreposage

35 min (environ)


15-25 ° C

Résultats

Parasites du paludisme Bleu/Violet


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

Solution Mère Active

Mélanger 1 dose de Coloration B (Eosine Y ) avec 4 doses d’eau distillée. Prendre 12 gouttes de la coloration diluée et ajouter 12 gouttes de Coloration A (Bleu de Méthylène) et mélanger le tout avant application.

Protocole

1. Place fixed smear on staining rack and add freshly prepared stain (as above) for 1 minute

2. Rinse in distilled water

3. Differentiate the smear in Sorensens buffer (25ml diluted to 5L with distilled water) pH 6.8 for 5 seconds

4. Rinse in distilled water for 2-3 seconds

5. Stand upright on filter paper to drain and dry and if required dip the dry smear in xylene and mount


Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les micro-organismes Gram positifs et Gram négatifs. Le principe principal de la technique est l’augmentation de l’épaisseur, de la composition chimique et de l’intégrité fonctionnelle des parois cellulaires des bactéries à Gram positif qui, lorsqu’elles meurent, deviennent à Gram négatif.

Kit de Coloration de Gram (Contre-Coloration Fuchsine de Gram)




Entreposage

18 min (environ)


15-25 ° C


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

Contenu du Kit

Crystal Violet (0,5% aqueux)

Iode de Gram

Différentiateur de Gram* x 2

Gram Fuchsine (Carbol Fuchsine)

Résultats

Organismes Gram Positifs:

Organismes Gram Négatifs:

Noyaux:

Bleu/Noir

Rouge/Rose

Rouge/Rose

Protocole

1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inondez

2. Colorer au cristal violet pendant 3 minutes (filtrer avant utilisation)

3. Bien rincer à l’eau distillée

4. Traiter les lames avec de l’iode Grams pendant 3 minutes

5. Bien laver à l’eau distillée, égoutter

6. Différencier avec le différenciateur Grams jusqu’à ce qu’il n’y ait plus de couleur sort de la préparation.


8. Contre-colorer avec de la fuchsine Gram 1 minute

9. Laver à l’eau et éponger (laisser sécher les frottis)

10. Déshydrater rapidement avec les alcools, effacer et monter

(1-5 sec) Rincer rapidement, les sections tourneront jaune paille

UN1993

les lames avec l’eau distillée

* Veuillez noter que la formule de ce produit a été révisée le 12/08/19


Kit de Coloration de Gram (Contre-coloration Rouge Neutre)




Entreposage

20 min (environ)


15-25 ° C


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1993

Contenu du Kit

Crystal Violet 0.5% Aqueux

Gram d’iode

Grammes Différentiateur* x 2

Protocole

1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inonde

2. Colorer avec du cristal violet pendant 3 minutes (filtrer avant utilisation)


4. Traitez les lames avec de l’iode Grams pendant 3 minutes


6. Faites la différence avec le différenciateur de Grams jusqu’à ce que plus aucune couleur ne sorte de la


8. Contre-colorer avec du rouge neutre pendant 1 minute

9. Laver à l’eau et sécher (pour les frottis, laisser sécher)

10. Déshydrater rapidement dans les alcools, nettoyer et monter


préparation. (1 à 5 secondes) Rincer rapidement, les sections

Rouge Neutre (0.5%) Aqueux

Résultats

Organismes à Gram positif:

Organismes à Gram négatif:

Noyaux:

Bleu/Noir

Rouge

Rouge




Kit de Coloration de Gram (Contre-coloration Safranine)




Entreposage

18 min (environ)


15-25 ° C


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1993

Protocole






6. Différencier avec le différenciateur Grams jusqu’à ce qu’il n’y ait plus de couleur sort de la préparation. (1


8. Contre-colorer avec de la safranine pendant 1 minute

9. Laver à l’eau et sécher (pour que les frottis sèchent)

10. Déshydrater rapidement à travers les alcools, nettoyer et monter


à 5 secondes) Rincer rapidement , les sections seront de couleur jaune paille

Contenu du Kit


Gram d’iode


Safranine (0.5%) Aqueux

Résultats



Noyaux:

Bleu/Noir

Rouge

Rouge



Kit de Coloration de Gram (Contre-Couleur de Twort)




Entreposage

18 min (environ)


15-25 ° C


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1993

Contenu du Kit


Gram d’iode


Protocole






6. Différencier avec le différenciateur Grams jusqu’à ce qu’il n’y ait plus de couleur sort de la préparation. (1


8. Mélanger le colorant Twort A&B (solution active Twort) immédiatement avant utilisation, comme

9. Lavez à l’eau, séchez et laissez sécher à l’air

10. Déshydratez rapidement des alcools, nettoyez et montez.


suit: solution A (0,2%Rouge Neutre ) 3 mesures , pour 1 mesure de Solution B (0.2% Vert Rapide), Diluer ensuite 1mesure sur 5 avec l’eau distillée. Ex : 1.5ml Twort A + 0.5ml Twort B + 8ml d’eau distillée. Colorer avec la Solution de travail pendant 3 minutes.

à 5 secondes) Rincer rapidement , les sections seront de couleur jaune paille

Solution de Twort A (0.2% Rouge Neutre dans

l’alcool pure)

Solution de Twort B (0.2% Vert Rapide dans l’alcool

Résultats



Noyaux:

Cellules sanguines et la plupart des structures cytoplasmiques:

Fibres Elastique:

Bleu/Noir

Rouge/Rose

Rouge/Rose

Vert

Noir




Kit de Coloration de Gram (Hucker&Conn)




Entreposage

20 min (environ)


15-25 ° C


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1993

Contenu du Kit

Crystal Violet Hucker&Conn

Gram d’iode


Safranine 0.5% Aqueux

Résultats

Bactéries Gram positives et champignons:

Bactéries Gram négatives:

Bleu foncé/violet

Rouge

Protocole


2. Appliquez une solution de cristal violet et laissez agir 2-3 minutes

3. Lavez à l’eau

4. Appliquez de l’iode Grams et laissez agir 2-3 minutes

5. Appliquez plusieurs changements de différenciateur Grams jusqu’à ce qu’il ne semble plus s’écouler de

6. Laver bien dans l’eau

7. Appliquer la Safranine pendant 4 minutes

8. Laver à l’eau et sécher. Pour les frottis, laisser sécher

9. Déshydrater rapidement, nettoyer dans le xylène et monter (Pour les frottis, disposer dans le xylene et



la préparation

monter)

Protocole


2. Oxyder les coupes avec de l’acide chromique pendant 60 minutes à température ambiante


4. Traiter les coupes avec une solution de métabisulfite de sodium pendant 1 minute

5. Bien laver à l’eau courante du robinet puis dans plusieurs changements d’eau distillée

6. Colorer coupes dans la solution d’argent préchauffée à 56 ° C pendant 15 à 20 minutes jusqu’à ce

7. Laver dans plusieurs changements d’eau distillée

8. Tonifier les coupes avec du chlorure d’or pendant 5 minutes

9. Laver dans plusieurs changements d’eau distillée

10. Traiter avec du thiosulfate de sodium pendant 5 minutes

11. Laver à l’eau distillée et contre-colorer dans une solution vert clair durant 30 sec

12. Rincer à l’eau. Déshydrater, clarifier et monter

que la coupe vire au brun jaunâtre (vérifiez au microscope après le lavage dans de l’eau distillée distillée - les champignons doivent être brun foncé). Si la coloration n’est pas complète, retournez

Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les champignons, la membrane basale et certains autres organismes (par ex.Pneumocystis Carnii et l’histoplasme)

Kit de Coloration de Grocott




Entreposage

105 min (environ)


Nitrate d’Argent 2-8°C. Autres réactifs : 15-25°C

100 Test 200 Test

Code - 100 -200

RRSK80 11 x 50ml 11 x 100ml

Hazard Information

UN3082

Résultats

Champignons, pneumocystis, mélanine, membrane basale:

Mucines, Glycogène:

Fond:

Noir

Beige/Gris

Vert Pâle

Contenu du Kit

Solution d’acide chromique à 5% x 2

Solution d’hexamine (méthanamine) à 3% x 2

Solution de nitrate d’argent à 5%

Solution de tétraborate de sodium à 5% x 2

Solution de métabisulfite de sodium à 1%

Chlorure d’or Solution à 0,1%

Thiosulfate de sodium Solution à 2%

Vert clair (0,2% dans 0,2% d’acide acétique)


Solution Active d’Héxamine-argent:Dans un contenant cliniquement propre, mesurer 23ml d’Héxamine et 1.25ml de Nitrate d’Argent 5% . Un précipité blanc va se former et se dissoudre lorsque agiter. Ajouter 3ml de Tétraborate de sodium et 25ml d’eau distillée. Préparer frais à chaque fois.Filtrer la solution dans une cuvette de Coplin et mettre au four ou bain-marie à 56°C dans l’obscurité. Vérifier la température de solution avant de commencer.

à la solution d’argent chauffée pendant 2-3 minutes. Répéter la procédure d’examen



Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration de Mycobacterium Tuberculosis et d’autres organismes acido-résistants dans les coupes de tissus et les frottis. Les parois des mycobactéries ne sont pas facilement pénétrées, de sorte que le phénol est mélangé à la fuchsine basique pour surmonter cela. Aucune chaleur n’est requise pour cette méthode.

Kit de Coloration de Kinyoun Froid (Contre-couleur de Vert de Malachite)

Contenu du Kit

Carbol Fuschsine Kinyoun


Vert de Malalchite 0.5% aqueux




Entreposage

20 min (environ)


15-25 ° C

Résultats


Cells and background material, other organisms:

Magenta/Rouge

Vert


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1992

Protocole

1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour des frottis, sub

2. Submerger les lames avec la Carbol Fuschsine Kinyoun pendant 10 minutes.

3. Laver bien à l’eau distillée.

4. Différentier avec le différentiateur TB jusque la préparation soit incolore ou rose pale (jusqu’à ce qu’il


6. Contre-colorer avec du bleu de méthylène pendant 15 sec


8. Déshydrater rapidement à travers l’alcool absolu, nettoyer et remonter

n’y ait plus de colorant. Environ 3-5sec

merger les lames avec de l’eau distillée.

Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration de Mycobacterium Tuberculosis et d’autresorganismes acido-résistants dans les coupes de tissus et les frottis. Les parois des mycobactéries ne sont pas facilement pénétrées, de sorte que le phénol est mélangé à la fuchsine basique pour surmonter cela. Aucune chaleur n’est requise pour cette méthode.

Contenu du Kit

Carbol Fuschsine Kinyoun


Bleu de Méthylène




Entreposage

15 min (environ)


15-25 ° C

Résultats


Cellules et matériel de base, autres organismes

Magenta/Rouge

Bleu


Code - 100 -200 -500 -1000


Protocole

1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour des frottis, sub

2. Submerger les lames avec la Carbol Fuschsine Kinyoun pendant 10 minutes

3. Laver bien à l’eau distillée

4. Différentier avec le différentiateur TB jusque la préparation soit incolore ou rose pale (jusqu’à ce qu’il


6. Contre-colorer avec du Bleu de Méthylène pendant 15 secondes


8. Déshydrater rapidement, nettoyer et remonter

n’y ait plus de colorant. Environ 3- 5 sec

Hazard Information

UN1992

merger les lames avec de l’eau distillée

Kit de Coloration de Kinyoun Froid (Contre- Couleur de Bleu de Méthylène)


Ce kit de coloration permet la différenciation de la fibrine, du collagène et du muscle. La fibrine précoce et les globules rouges sont également mis en évidence avec cette technique

Kit de Coloration de Martius Bleu Ecarlate




Entreposage

45 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1170

Résultats

Fibrine:

Muscle:

Noyaux:

Collagène; membranes basales; réticuline:

Rouge (la fibrine précoce peut tacher en jaune et la vieille fibrine en bleu)

Rouge Pale

Bleu/Noir

Rouge pâle Bleu / noir

Bleu

Jaune

Contenu du Kit

Martius Yellow Sat. Alcoolique avec 2% d’acide phosphotungstique

Acide phosphotungstique Solution à 1%

Hématoxyline Weigerts (Solution A)

Brilliant Crystal Scarlet

Bleu d’aniline (aqueux à 1%)

Hématoxyline Weigerts (Solution B)

Protocole

1. Préparer de l’hématoxyline Weigert fraîche en mélangeant des volumes égaux de solution A et B selon les besoins 2. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet 3. Tacher les noyaux avec de l’hématoxyline ferrique Weigerts pendant 10 minutes 4. Laver rapidement à l’eau et différencier en Solution d’alcool acide à 1% (RRSP187 - non fournie), laissant les noyaux

5. Bien laver à l’eau courante puis au bleu dans l’eau ou à l’eau du robinet Scotts 6. Bien laver à l’eau courante 7. Rincer à l’alcool à 95% (non fourni) 8. Tacher avec une solution jaune de Martius pendant 5 minutes 9. Laver rapidement eau courante du robinet 10. Colorer avec une solution de cristal écarlate pendant 5 minutes 11. Laver à l’eau courante du robinet 12. Traiter avec une solution d’acide phosphotungstique pendant 10 minutes, vérifier au microscope. Traitez encore 5

13. Laver à l’eau courante du robinet 14. Tacher avec une solution de bleu d’aniline pendant 5 minutes 15. Laver à l’eau du robinet


légèrement sur colorés

minutes si nécessaire.

Fibres Elastiques:

Erythrocites:

Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration des mucines acides. La molécule de colorant active est un complexe d’acide carminique d’aluminium connu sous le nom de carmin (Lillie 1977). Le mécanisme exact n’est pas entièrement compris, mais on pense que les sels d’aluminium forment un complexe chélate avec l’acide carminique qui confère une charge positive globale au complexe carmin attirant les sialomucines et les sulfomucines et les colore ainsi tandis que les mucines neutres ne tachent pas

Kit de Coloration de Mucicarmine Southgate




Entreposage

45 min (environ)


Mucicarmine 2-8°C - Autres réactifs 15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1170

Contenu du Kit

Mucicarmine (Southgate)

Substitut d’eau du robinet Scotts

Martius Yellow Saturé Alcoolique

Hémalun de Mayer

Résultats

Mucines carboxylées, Sulfomucines:

Noyaux:

Tissu de fond:

Rouge

Bleu/Noir

Jaune

Protocole

1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet

2. Colorez les noyaux avec de l’hémalum de Mayer pendant 5 minutes.

3. Lavez bien à l’eau

4. Faites la différence entre de l’alcool acide à 0,5% et du bleu dans un substitut d’eau du robinet

5. Colorer dans la solution de mucicarmine pendant 30 minutes


7. Contre-colorer avec une solution jaune martius 30 secondes

8. Rincer rapidement à l’eau distillée


Scotts ou de l’eau courante. Les noyaux doivent être bleus / noirs lorsqu’ils sont vérifiés au microscope


Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence certaines souches de bactéries filamenteuses dans des coupes de tissus et / ou des frottis. La méthode peut démontrer les bactéries Bio-P responsables de l’élimination biologique du phosphate

Kit de Coloration de Neisser




Entreposage

5 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

Contenu du Kit

Neisser Stain A (solution de bleu de méthylène)

Neisser Stain B (Solution Crystal Violet)

Neisser Stain C (solution d’iode)

Neisser Stain D (solution de chrysoidine)

Résultats

Organismes positifs:

Organismes négatifs:

Bleu/Noir

Jaune/Marron

Protocole

1. Laver les lames avec de l’eau distillée

2. Mélanger 2 parties de colorant Neisser A avec 1 partie de colorant Neisser B et inonder les lames


4. Colorer les lames avec le colorant Neisser C pendant 5 secondes


6. Colorer au colorant Neisser D pendant 10 secondes

7. Rincer et sécher à sec

8. Utiliser la méthode habituelle de visualisation au microscope, par exemple huile d’immersion

avec le mélange de colorant pendant 20-30 secondes

Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration de cellules gynécologiques dans des

Kit de Coloration Papanicolaou




Entreposage

35 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Papanicolau EA50

Papanicolau OG6


Hazard Information

UN1992

Résultats

Noyaux:

Cytoplasm (Non-keratinising squamous cells):

Keratonising Cells:

Bleu/Noir

Bleu/Vert

Rose/Orange

Protocole

1. Laver les lames avec de l’alcool à 50% pendant 1 minute

2. Rincer à l’eau du robinet, tremper 15 fois

3. Immerger dans la solution (hématoxyline), jusqu’à ce que les noyaux soient bleus, ou pendant 5 minutes

4. Rincer à l’eau pendant 2 minutes

5. Différencier à 0,5% alcool acide pendant 10 secondes


7. Bleuir dans le Substitut d’eau du robinet Scotts pendant 2 minutes


9. Déshydrater dans de l’alcool à 70% pendant 2 minutes

10. Déshydrater dans de l’alcool à 95% pendant 2 minutes

11. Déshydrater dans de l’alcool frais à 95% pendant 2 minutes

12. Coloration en Pap. Colorer OG6 pendant 2 minutes

13. Rincer dans de l’alcool à 95% pendant 2 minutes

14. Rincer dans de l’alcool frais à 95% pendant 2 minutes

15. Teindre avec du Pap. Colorer EA50 pendant 2 minutes

16. Rincer dans de l’alcool à 95% pendant 1 minute



Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration de mucines neutres, de glycogène et de certaines lipofuchsines précoces. La technique est basée sur la réactivité des groupes aldéhyde libres dans les hydrates de carbone, le réactif de Schiff formant un produit final magenta rouge vif

Kit de Coloration de PAS




Entreposage

35 min (environ)


Schiff Reagent 2-8 °C. Autres réactifs 15-25 °C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit



Réactifs Schiff (Feulgen)

Hazard Information

Résultats

Noyaux:

Glycogènes:

Neutre /sialomucines:

Diverses glycoprotéines, lipofuchsines précoces:

Bleu-Noir

Magenta

Magenta

Magenta

Protocole


2. Oxyde les lames avec une solution d’acide périodique pendant 5 minutes

3. Bien laver dans plusieurs changements d’eau distillée

4. Colorer avec le réactif de Schiff pendant 20 minutes à température ambiante

5. Bien laver les lames dans de l’eau courante pendant 5 à 10 minutes (les coupes doivent être

6. Colorer les coupes à l’hématoxyline pendant 1 minute

7. Bien laver à l’eau, différencier dans de l’alcool acide à 0,5% et bleuir à l’eau courante ou au Substitut d’eau


macroscopiquement roses / magenta en coloration

du robinet Scotts

Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration des mucopolysaccharides acides sulfatés et carboxylés, et pour les radicules glucidiques (par exemple le glycogène). La technique du bleu Alcian et du PAS se combine pour différencier les mucines neutres des mucines acides. Il est utilisé comme colorant à large spectre pour les mucines, un manque de coloration avec le stade PAS combiné indique que la substance n’est pas de la mucine.

Kit de Coloration de Bleu d’Alcian - PAS


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Solution d’Acide Périodique 1%

Hémalum de Mayer

Réactifs de Schiff (Feulgen)




Entreposage

60 min (environ)


Réactif de Schiff 2-8 ° C / Autres Réactifs 15-25°C

Hazard Information

Bleu d’Alcian Blue 1% dans 3% Acide Acétique (pH 2.5)

Protocole

1. Dewax sections, hydrate through alcohols and rinse in tap water

2. Teindre au bleu alcian pendant 10 minutes


4. Traiter avec une solution d’acide périodique à 1% pendant 5 minutes

5. Bien laver avec de l’eau distillée

6. Traitez avec le réactif de Schiff pendant 20 minutes

7. Laver à l’eau courante pendant 5 à 10 minutes (les coupes doivent être macroscopiquement roses /

8. Colorer les coupes à l’hémalum Mayer pendant 1 minute

9. Rincer à l’eau courante, différencier dans 0,5% d’alcool acide et bleu dans l’eau courante ou l’eau du


magenta

robinet Scotts

Résultats

Acides mucines (sulfomucines et sialmucines): Bleu

Bleu

Bleu clair

Mélange des deux: Violet

Mucines Neutres, Glycogène, différentes glycoprotéines: Rouge

Protéoglycanes et acide hyaluronique:

Noyaux:


Ce kit de coloration est basé sur le fait que les parois cellulaires fongiques sont riches en polysaccharides qui peuvent être convertis par oxydation en dialdéhydes et démontrés avec le réactif de Schiff

Kit de Coloration PAS pour parois cellulaires fongique (modified McManus 1946)




Entreposage

35 min (environ)


Schiff reagent 2-8 °C. Autres réactifs 15-25 °C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit


Vert Clair 0.2% dans 0.2% d’acide acétique

Réactifs Schiff (Feulgen)

Résultats

Parois cellulaires fongiques:

Glycogène tissulaire:

Contexte:

Magenta

Magenta

Vert Pâle

Hazard Information

Protocole


2. Oxyde les lames avec une solution d’acide périodique pendant 5 minutes


4. Colorer avec le réactif de Schiff pendant 20 minutes à température ambiante

5. Bien laver les lames dans de l’eau courante pendant 5 à 10 minutes (les coupes doivent être

6. Colorer les coupes en Vert clair pendant 1-2sec

7. Rincer à l’eau


macroscopiquement roses / magenta en coloration

Protocole

1. Déparaffiner les sections et hydrater à travers les alcools et rincer à l’eau courante

2. Oxyder les sections avec l’acide périodique durant 20-30 à température ambiante


4. Colorer les sections dans la solution active préchauffée à 56 °c ( voir note 1) durant 20 mins initialement

5. Laver dans différents changements d’eau distillée

6. Teindre les sections avec le Chlorure d’Or durant 2 minutes

7. Laver dans différents changements d’eau distillée

8. Traiter avec le thiosulfate de Sodium durant 2 minutes

9. Laver à l’eau distillée et contre colorer dans une solution Rouge Neutre durant 30 secondes

10. Rincer à l’eau, déshydrater, clarifier et monter

bien différenciées) Si la coloration n’est pas complète, retourner à la solution active chauffée d’argent pendant 5 minutes d’intervalles et répéter la procédure d’examination

Ce kit de coloration est utilisé pour démontrer les membranes basales glomérulaire (MBG) dans le rein. Les composants du glucide sont d’abord oxydés avec une solution d’Acide Périodique pour produire des aldéhydes qui réduisent par la suite l’argent en argent métallisé concret.

Kit de Coloration PAS de Jones




Entreposage

105 minutes (environ)

3 ans (à partir de la date de fabrication)

Nitrate d’Argent 2-8 ° C. Les autres réactifs entre 15-25 ° C

100 Test

Code - 100

RRSK303 8 x 50ml

Hazard Information

UN1170

Résultats

Membranes Basales:

Fond:

Noir

Pink/Red

Contenu du Kit

Acide Périodique 1%

Héxamine ( Méthanamine) 3% Solution x 4

Nitrate d’Argent 5%

Tétraborate de Sodium 5% x 2

Chlorure d’Or 0.2%

Thiosulfate de Sodium 2%

Rouge Neutre 0.1%


Solution active Héxamine-Argent:Dans un container cliniquement nettoyé, mesurer 50ml d’héxamine et 2.5ml de Nitrate d’Argent 5%. Un précipité blanc se forme qui se dissoudra lorsque brassé.Ajouter 5ml de Sodium Tétraborate 5%. Renouveller à chaque fois.Filtrer la solution dans une Cuvette de Coplin et mettre au four ou au bain-marie à 56°C dans l’obscurité. Vérifier la temperature de la Solution avant de commencer.

initialement ( vérifier au microscope après laver à l’eau distillée- les membranes basales doivent être

* Cette image type pour illustrer seulement


Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence l’hémosidérine dans les macrophages de la moelle osseuse et le fer dans les sidéroblastes

Kit de Coloration de Perl (Version Hématologique)




Entreposage

30 min (environ)


Perls A et B 2-8°C / Rouge Neutre 15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Solution de coloration de Perls A - Solution d’acide Hydrochlorique 2%

Solution de coloration de Perls B - Solution de ferrocyanure de potassium 2%

Contre-coloration: Solution de rouge neutre 0,5%

Résultats

Noyau:

Fer Ferrique:

Rouge

Bleu

Protocole

Préparation de la solution de ferrocyanure de Perls:

Perls A 2,5 ml, Perls B 2,5 ml

Mélanger immédiatement avant utilisation. Doit être fraîchement préparé pour la coloration.

La quantité de solution A et B utilisée dépend du nombre de lames à colorer

1. Fixez les lames dans un fixateur approprié tel que le méthanol pendant 10 à 20 minutes. Laisser sécher à l’air

2. Traiter les lames avec une solution de ferrocyanure de Perls pendant 20 minutes

3. Laver à l’eau courante du robinet


5. Tacher avec une solution rouge neutre pendant 30 secondes

6. Laver rapidement à l’eau distillée et sécher par essuyage

7. Utiliser la méthode habituelle et observer au microscope, par exemple l’huile d’immersion

Hazard Information

Ce kit de coloration est utilisé pour démontrer les sels ferriques dans les coupes de tissus. Le traitement avec une solution de ferrocyanure acide entraînera le démasquage du fer ferrique sous forme d’hydroxyde Fe (OH) 3 par de l’acide chlorhydrique dilué. Le fer ferrique réagit ensuite avec une solution diluée de ferrocyanure de potassium pour produire un composé bleu insoluble, le ferocyanure ferrique (bleu de Prusse)

Kit de Coloration de Perl




Entreposage

30 min (environ)


Perls A et B 2-8°C / Rouge Neutre 15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Perls Stain Solution A - Hydrochloric Acid Solution 2%

Perls Stain Solution B - Potassium Ferrocyanide Solution 2%

Counterstain: Neutral Red Solution 0.1%

Résultats

Noyau:

Fer Ferrique :

Rouge

Bleu

Protocole







3. Traiter les lames avec une solution de ferrocyanure Perls pendant 15 minutes

4. Laver à l’eau courante


6. Teindre au rouge neutre solution pendant 15 secondes

7. Laver rapidement à l’eau distillée et sécher à sec

8. Déshydrater rapidement dans les alcools, clarifier et monter

Hazard Information


Ce kit de coloration permet la démonstration sélective des muscles, des fibres de collagène et des érythrocytes. Ce colorant trichrome utilise 3 colorants de taille moléculaire différente

Kit de Coloration de Picro-Mallory Trichrome




Entreposage

105 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Acide acétique glacial 0,5% aqueux x 2

Solution aqueuse saturée d’acide picrique

Picro Mallory Solution A

Protocole


2. Placer les lames dans une solution saturée d’acide picrique pendant 1 heure à 56°C

3. Laver à l’eau du robinet (3 changements d’eau courante pendant 2 min), puis à l’eau distillée

4. Colorer avec Picro Mallory Solution A pendant 2 minutes


6. Différencier avec de l’acide phosphotungstique pendant 5 minutes


8. Colorer avec Picro Mallory Solution B pendant 30 minutes

9. Rincer avec 0,5% d’acétique glaciale acide pour éliminer les taches excessives


Hazard Information

Picro Mallory Solution B

Solution d’acide phosphotungstique à 1%

Résultats

Noyaux:

Erythrocytes et myéline:

Cytoplasme:

Matrice muqueuse et cartilagineuse:

Collagène:

Rouge

Jaune

Différentes nuances de rouge, rose, orange

Bleu

Bleu

Ce kit de coloration démontre le fer ferrique, le collagène et le tissu conjonctif en sections

Kit de Coloration de Perls Van Gieson




Entreposage

30 min (environ)


Entreposer les Solutions de Perls 2-8°C / Autre Van Gieson 15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Solution de coloration de Perls A - Solution d’acide Hydrochlorique 2%

Solution de coloration de Perls B - Solution de ferrocyanure de potassium 2%

Van Gieson Extra

Résultats

Fer Ferric Reactif:

Collagène:

Autres Tissus:

Bleu

Violet/Rouge

Jaune

Protocole







3. Traiter les lames avec une solution de ferrocyanure Perls pendant 20 minutes

4. Laver à l’eau courante du robinet


6. Colorer avec la solution Van Gieson 2-3 minutes

7. Lavez rapidement à l’eau et séchez

8. Déshydratez rapidement avec les alcools, nettoyez et montez

Hazard Information

40 41T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com

Kit de Coloration de Réticuline (Sans Chlorure d’Or)Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les fibres de réticuline. La méthode Gordon & Sweet utilise une imprégnation de métal offrant un excellent contraste pour que même les fibres les plus fines puissent être vues




Entreposage

50 min (environ)


Nitrate d’Argent à 2-8°C - Autres Réactifs 15-25°C

100 Test 200 Test

Code - 100 -200

RRSK102 11 x 50ml 11 x 100ml

Résultats

Fibres Réticulines:

Noyaux:

Autres éléments:

Noir

Noir (Lipofuchsine et Mélamine sont aussi faiblement colorés)

Rouge

Contenu du Kit

Solution de permanganate de potassium à 0,5% x 2



Solution de sulfate d’ammonium ferrique à 2,5%


Solution d’Ammoniac à 33%

Solution d’hydroxyde de sodium à 3%

Solution sans tampon de formaldéhyde à 10% (v / v)

Solution de thiosulfate de sodium à 5%

Rouge neutre 0,5%

Hazard Information

UN3316

Protocole


2. Oxyder les coupes avec du permanganate de potassium acidifié pendant 5 minutes


4. Décolorer avec une solution d’acide oxalique pendant 1 minute

5. Bien laver les coupes à l’eau du robinet

6. Mordancer les coupes dans une solution de sulfate d’ammonium ferrique pendant 15 minutes

7. Bien laver avec plusieurs changements d’eau distillée

8. Traiter avec une solution d’argent ammoniacale filtrée pendant 12-15 secondes

9. Bien laver avec plusieurs changements d’eau distillée (la section doit être translucide)

10. Réduire la solution de formaldéhyde pendant 1 à 2 minutes, vérifier au microscope et si sous

11. Laver à l’eau distillée



14. Si un contre-colorant est nécessaire, colorer au rouge neutre pendant 30 secondes



imprégné répéter l’étape 8-10 fois.

Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les fibres de réticuline. La méthode Gordon & Sweet utilise une imprégnation de métal offrant un excellent contraste pour que même les fibres les plus fines puissent être vues

Kit de Coloration de Réticuline (avec Chlorure d’Or)




Entreposage

50 min (environ)


Nitrate d’Argent à 2-8°C - Autres Réactifs 15-25°C

100 Test 200 Test

Code - 100 -200

RRSK105 12 x 50ml 12 x 100ml

Hazard Information

UN3082

Résultats

Fibres Réticulines:

Noyaux:

Autres éléments:

Noir

Noir (Lipofuchsine et Mélamine sont aussi faiblement colorés)

Rouge

Contenu du Kit




Solution de sulfate d’ammonium ferrique à 2,5%


Solution d’Ammoniac à 33%

Solution d’hydroxyde de sodium à 3%

Solution sans tampon de formaldéhyde à 10% (v / v)


Solution de Chlorure d’Or à 0.2%

Rouge neutre 0,5%

Protocole

1. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet 2. Oxyder les coupes avec du permanganate de potassium acidifié pendant 5 minutes 3. Bien laver à l’eau du robinet 4. Décolorer avec une solution d’acide oxalique pendant 1 minute 5. Bien laver les coupes à l’eau du robinet 6. Mordancer les coupes dans une solution de sulfate d’ammonium ferrique pendant 15 minutes 7. Bien laver avec plusieurs changements d’eau distillée 8. Traiter avec une solution d’argent ammoniacale filtrée pendant 12-15 secondes 9. Bien laver avec plusieurs changements d’eau distillée (la section doit être translucide)10. Réduire la solution de formaldéhyde pendant 1 à 2 minutes, vérifier au microscope et si sous

11. Laver à l’eau distillée 12. Tonifier dans la solution à 0.2% de chlorure d’Or pendant 3-5 min13. Laver à l’eau distillée. Traiter avec du thiosulfate de sodium pendant 5 minutes14. Laver bien à l’eau 15. Si un contre-colorant est nécessaire, colorer au rouge neutre pendant 30 secondes 16. Rincer à l’eau 17. Déshydrater, nettoyer et monter

imprégné répéter l’étape 8-10 fois.


Ce kit de coloration est utilisé pour la détection des mucopolysaccharides acides et est basé sur l’attraction de cations ferriques dans une solution d’oxyde ferrique colloïdal pour les groupes carboxyle et sulfate chargés négativement des mucines acides et des protéoglycanes. Les ions ferriques liés au tissu sont visualisés par traitement avec du ferrocyanure de potassium pour former des dépôts bleu vif de ferrocyanure ferrique ou de bleu de Prusse

Kit de Coloration du fer Colloïdal

Contenu du Kit

Chlorure ferrique Solution aqueuse à 29%

Acide acétique Solution aqueuse à 25%

Rouge neutre Solution aqueuse à 0,5%




Entreposage

100 min (environ)


Réactif de Perles 2-8°C. Autres Composants 15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1760

Perles Colloïdales Réactif B (ferrocyanure de potassium à 5%)

Perles colloïdales Réactif A (acide chlorhydrique à 5%)

Protocol


2. Traiter avec de l’acide acétique dilué (12% - 1 dose d’acide acétique 25% pour 1 dose d’eau distillée)

3. Couvrir la lame de test (pas de contrôle) avec une solution de travail de fer colloïdal pendant 1 heure

4. Rincer dans une solution d’acide acétique diluée pendant 3 minutes. Répéter 4 fois

5. Placer le test et la lame de contrôle dans une solution de Perls colloïdale fraîchement préparée pen

6. Rincer brièvement à l’eau distillée

7. Colorer avec une solution rouge neutre à 0,5% pendant 5 minutes

8. Bien rincer à l’eau et sécher


Working Stock Solution

1. Solution Active mère de Fer colloïdal – Porter 62.5mls d’eau distillée à ébullition et ajouter 1.1ml de

2. Solution Active de Fer colloïdal – Mélanger une dose de Solution mère Ferrique avec une dose de

3. Solution Active de Perles colloïdales – Mélanger une dose de Perles colloïdales Réactif mère A avec une

Chlorure ferrique (Solution à 29%) Continuer l’ébullition jusqu’à ce que la Solution tourne rouge rouge foncé. Lorsque c’est le cas, la Solution doit être retiré du feu et mise à refroidir.

solution d’Acide Acétique à 25%. A préparer juste avant le processus de Coloration.

dose de Perles colloïdales Réactif mère B. Mélanger bien et fait pour usage instantané

Résultats

Protéoglycanes, Acides Mucines, Acides Hyaluronique:

Collagène:

Noyau:

Bleu Intense

Bleu Pale

Rouge

pendant 1 minute

dant 20 minutes

Ce kit de coloration est utilisé pour la détection de la protéine amyloïde dans les coupes de tissu. Cette méthode élimine la nécessité d’une étape de différenciation avec l’utilisation d’une solution de chlorure de sodium hautement concentrée qui réduit la coloration de fond tout en améliorant la liaison hydrogène du rouge Congo à l’amyloïde, ce qui entraîne une coloration progressive et une technique hautement sélective.

Kit de Coloration de Rouge Congo (Puchtler & Sweat)




Entreposage

60 min (environ)


15-25 ° C

RésultatsEosinophils, Amyloid, Elastin, Keratin:

Various glycoproteins, early lipofuchsins:

Nuclei:

Rouge

Magenta

Bleu

Protocole

Tout d’abord, 2 solutions de travail séparées doivent être préparées.

Solution de travail A - Ajouter 0,25 ml d’hydroxyde de sodium à 25 ml de chlorure de sodium alcoolique.

Utiliser rapidement.

La solution de travail B - Ajouter 0,25 ml de solution d’hydroxyde de sodium à 25 ml de solution de rouge

congo. Utilisez rapidement


2. Tacher les noyaux avec hémalun de Mayer pendant 5 minutes


4. Différencier avec 1% d’alcool acide 2-10 sec




8. Immerger dans la solution de travail A pendant 20 minutes. Égoutter

9. Immerger dans la solution de travail B de rouge congo pendant 20 minutes

10. Rincer brièvement à l’alcool (80%)

11. Déshydrater rapidement, éliminer et monter

100 Test 200 Test

Code - 100 -200

RRSK9 12 x 50ml 12 x 100ml

Contenu du Kit

Solution alcoolique de chlorure de sodium saturé x 5

Rouge Congo dans 80% d’éthanol saturé x 5

Hémalun de Mayer

Hydroxyde de Sodium 1% Solution Aqueuse

Hazard Information

UN1170

44 45T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com

Ce kit de coloration est utile pour démontrer les fibres élastiques, le collagène et les muscles. L’élastine a une forte affinité pour le colorant fer-hématoxyline et conservera donc le colorant plus longtemps que les autres composants tissulaires qui seront décolorés par la différenciation. La différenciation est cruciale à la coloration de fibres élastiques.

Kit de Coloration Elastic Van Gieson (Verhoeffs) (EVG)

Contenu du Kit

Hématoxyline à 5% alcoolique

Chlorure ferrique 10% Solution x 3

Van Gieson Extra




Entreposage

45 min (environ)


15-25 ° C

Résultats

Tissu élastique et noyaux:

Collagène:

Autres éléments tissulaires:

Noir

Rouge

Jaune (ou selon contre-couleur)


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN2924

Iodine Lugol


Protocole


2. Colorer dans la solution 1 pendant 30 minutes (conserver la solution jusqu’à ce que la tâche soit


4. Différencier dans la solution 2, vérifier au microscope les fibres noires sur le fond gris


6. Traiter avec du thiosulfate de sodium pendant 1 minute pour éliminer les tâche dues à l’iode seul


8. Contre-colorer dans Van Gieson Stain pendant 2 minutes

9. Tamponner pour éliminer l’excès de tâche

10. Déshydrater rapidement , nettoyer et monter


Solution 1: Ajouter 1.25ml d’ Hématoxylline alcoolique 5% avec 0.5ml de chlorure ferrique à 10% et

Solution 2: Ajouter 5ml de Chlorure ferrique 10% avec 20ml d’eau distillée dans un contenant de type mélanger. Ajouter 0.5ml d’iode de Lugol et mélanger bien. Préparer frais.

trieur pour lame microscopique. Préparer frais chaque fois.

terminée)

Ce kit de coloration utilise une technique combinée pour démontrer les fibres élastiques, le collagène et les muscles. Les fibres élastiques, en particulier les fibres fines, se coloreront intensément en bleu avec la teinture de Miller. Les fibres d’élastine et de pré-élastine sont des ponts disulfure hautement réticulés qui nécessitent une oxydation avec du permanganate de potassium suivie d’un blanchiment avec de l’acide oxalique

Kit de Coloration Elastic Van Gieson (Miller) (EVG)

Contenu du Kit







Entreposage

195 min (environ)


15-25 ° C

Résultats

Fibres élastiques:

Mature Collagen:

Other tissues e.g. muscle and red blood cells:

Bleu/Noir

Rouge

Jaune

Protocole

Préparation du permanganate de potassium acidifié Mélanger 9,5 ml de solution de permanganate de potassium avec 0,5 ml de solution d’acide sulfurique. Cette solution violette se conserve 3-4 semaines mais doit être jetée après utilisation 5 fois ou si elle devient brune


2. Traiter avec du permanganate de potassium acidifié pendant 5 minutes

3. Bien laver dans de l’eau et de l’eau de javel avec de l’acide oxalique pendant 1 minute


5. Rincer à l’alcool à 95% (non fourni)

6. Teindre à l’élastine Millers pendant 3 heures à température ambiante

7. Rincer brièvement à l’alcool à 95% pour éliminer excès de tache


9. Contre-colorer avec un colorant Van Gieson pendant 2 minutes

10. Sécher par tamponnage



Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1170

Coloration Millers Elastin

Coloration Van Gieson Extra


Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence la mélanine dans les tissus, mais peut également mettre en évidence les granules de cellules d’argentaffine et les lipofuscines

Kit de Coloration Masson Fontana




Entreposage

60 min (environ)


Stock Nitrate d’Argent à 2-8°C pour une performance optimale

100 Test 200 Test

Code - 100 -200

RRSK12 7 x 50ml 7 x 100ml

Contenu du Kit

Solution d’ammoniaque 33%

Solution de nitrate d’argent à 10% x 4


Solution de rouge neutre à 0,1%

Hazard Information

UN2672

Résultats

Mélanine:

Granules de cellules d’argentaffine, chromaffine, certaines lipofuchsines:

Noyaux:

Noir

Noir

Rouge

Protocole

PRÉPARATION DE LA SOLUTION D’ARGENT AMMONIACAL - Placer 20 ml d’une solution aqueuse de nitrate d’argent à 10% dans un flacon en verre. À l’aide d’une pipette compte-gouttes à pointe fine, ajoutez goutte à goutte de l’ammoniac concentré, en agitant constamment le flacon jusqu’à ce que le précipité formé se dissolve presque - Ce titrage est essentiel si la méthode doit fonctionner correctement - Le point final du titrage est observé lorsqu’un faible l’opalescence est présente et est mieux visualisée en

- Si trop d’ammoniac est ajouté par inadvertance, l’ajout de quelques gouttes de nitrate d’argent à 10%- À cette solution correctement titrée, ajoutez 20 ml d’eau distillée triple puis filtrez dans un flacon



3. Traiter avec la solution d’argent ammoniacal dans un pot Coplin propre, qui a été recouvert d’aluminium


5. Traiter les coupes avec du thiosulfate de sodium aqueux à 5% (hypo) pendant 1 minute

6. Bien laver à l’eau courante pendant 2-3 minutes

7. Contre-colorer dans 0,1% de rouge neutre pendant 1 minute

8. Rincer à l’eau courante et éponger


utilisant la lumière réfléchie sur un fond noir

sombre - Les solutions d’argent ammoniacal sont potentiellement explosives si elles ne sont pas stockées correctement - Conservez la solution au réfrigérateur (2-8 ° C) et utilisez-la dans les 4 semaines

Ce kit de coloration est utilisé pour détecter les cellules fœtales dans une circulation maternelle et est basé sur la capacité des cellules fœtales à résister à un pH acide tandis que les globules rouges adultes subissent l’élution de l’hémoglobine

Kit de Coloration Kleihauer




Entreposage

45 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1170

Résultats

Cellules foetales:

Cellules adultes:

Neutrophiles:

Lymphocytes:

Marron rougeâtre

Contours fantômes rose pâle

Apparaissent différenciés comme avec des films hématologiques

Gris/Rose

Contenu du Kit

Solution tampon Kleihauer 1 x 3

Solution tampon Kleihauer 2 x 2

Erythrosine 0,1% Solution Acidifiée

Hémalum Mayer


Protocole

Préparation de la solution de travail Kleihauer Buffer – mélanger 13.3ml de Solution 1 de Kleihauer Buffer à 36.7ml de

Solution 2 de Kleihauer Buffer.

La préparer au dernier moment pour une meilleure fraicheur.

1. Après la préparation, laisser les frottis sanguins sécher à l’air pendant 10 à 60 minutes

2. Placer les frottis sanguins secs dans un pot de coplin contenant de l’éthanol dénaturé à 80% pendant environ 5

3. Rincer à l’eau distillée et laisser sécher à l’air

4. Placer les lames dans la solution tampon Kleihauer (préchauffée à 37 ° C dans un pot Coplin) pendant 5 minutes.

5. Rincer à l’eau distillée et sécher à l’air

6. Teindre à l’hémalum de Mayer pendant 3 minutes


8. Colorer avec la solution d’érythrosine pendant 4 minutes

9. Rincer à l’eau distillée et laisser sécher à l’air

10. Les lames doivent être examinées en utilisant une immersion dans l’huile

Agitez les lames à 2min d’intervalle

minutes


Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les tissus conjonctifs. Trois colorants sont utilisés, chacun avec une sélectivité différente pour les muscles, les fibres de collagène et les érythrocytes, d’où le terme coloration «trichrome»

Kit de Colorations de Masson Trichrome (Vert Clair)




Entreposage

50 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1170

Contenu du Kit




Solution Ponceau Fuchsin Masson

Vert Clair Masson (2% Vert Clair dans 2,5% Acide Acétique)

Résultats

Noyau:

Cytoplasme, Fibres de neuroglie et Muscle:

Collagène et Mucus:

Bleu-Noir

Rouge

Vert

Protocole

1. Préparer l’hématoxyline de Weigert en mélangeant des volumes égaux de solution A et B selon les besoins2. Déparaffiner les coupes, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet3. Teindre les noyaux avec de l’hématoxyline de fer de Weigert pendant 20 minutes, laver rapidement à l’eau et

4. Rincer et bleuir dans l’eau5. Rincer et colorer avec la solution de ponceau fuchsine masson pendant 5 minutes. Rincer à l’eau déminéralisée 6. Différencier et mordancer dans l’acide phosphotungstique pendant 15 minutes 7. Transférer sans rinçage dans la solution vert clair pendant 3 minutes8. Rincer à l’eau


différencier dans une solution d’alcool acide à 1% (RRSP175 - non fourni), laissant les noyaux légèrement sur-colorés

Ce kit de coloration est utilisé pour mettre en évidence les tissus conjonctifs. Trois colorants sont utilisés, chacun avec une sélectivité différente pour les muscles, les fibres de collagène et les érythrocytes, d’où le terme coloration «trichrome»

Kit de Colorations de Masson Trichrome (Bleu de Méthyl)




Entreposage

50 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit




Solution Ponceau Fuchsin Masson

Bleu de Methyl (2% Bleu de Methyl dans 2,5% Acide Acétique)

Hazard Information

UN1170

Résultats

Noyau:

Cytoplasme, Fibres de neuroglie et Muscle:


Bleu-Noir

Rouge

Bleu

Protocole

1. Préparer l’hématoxyline de Weigert en mélangeant des volumes égaux de solution A et B selon les


3. Teindre les noyaux avec de l’hématoxyline de fer de Weigert pendant 20 minutes, laver rapidement

4. Rincer et bleuir dans l’eau

5. Rincer et colorer avec la solution de ponceau fuchsine masson pendant 5 minutes. Rincer à l’eau distillée

6. Différencier et mordancer dans l’acide phosphotungstique pendant 15 minutes

7. Transférer sans rinçage dans la solution bleu de Methyl pendant 5 minutes



à l’eau et différencier dans une solution d’alcool acide à 1% (RRSP175 - non fourni), laissant les noyaux

besoins

légèrement sur-colorés


Ce kit de coloration est utilisé pour colorer les frottis de sang périphérique et de moelle osseuse afin d’identifier les composants granulocytaires et monocytaires des cellules hémopoïétiques anormales. Le noir de Soudan B ne peut pas être extrait des granulés colorés par des solvants organiques et donne une coloration comparable à celle de la coloration MPO

Kit de Coloration Noir Soudan (Version Hématologie)




Entreposage

75 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Coloration noire du Soudan dans une solution d’éthanol à 70%

Ethanol à 70%

Solution tampon mordant

Hémalun de Mayer

Résultats

Noyaux:

Myélocytes/Promyélocytes:

Lymphocytes:

Neutrophiles matures:

Rouge

Granules Bleu / Noir augmentant avec la maturité cellulaire

Négative

Le cytoplasme contient des granules positifs (bleu / noir) de matière

à réaction positive

Protocole

1. Fixer les frottis selon la méthode habituelle

2. Rincer les frottis dans de l’eau distillée

3. Tacher les frottis dans une solution de colorant de travail, c’est-à-dire 2 doses de solution tampon

4. Retirer de la teinte et rincer dans de l’alcool à 70%. Après 30 secondes, basculez. Répétez 3 fois.

5. Rincer doucement les frottis à l’eau courante du robinet pendant 2 minutes maximum et sécher à l’air

6. Contre-colorer avec de l’hémalun de Mayer pendant 2-3 minutes

7. Rincer doucement à l’eau courante du robinet et essuyer

8. Monter dans un support aqueux ou examiner sous huile d’immersion

mordante pour 3 doses de noir Soudan B colorer pendant 1 heure dans un pot Coplin à couvercle. (Cette solution de travail se conservera 4 semaines)

Cela élimine l’excès de colorant

Hazard Information

UN1170

Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration différentielle des éléments cellulaires du sang. Les solutions de coloration Giemsa et May Grunwald sont classées comme colorations «Romanowsky». Ces colorants composés sont relativement insolubles dans l’eau et sont généralement préparés par solubilisation dans le méthanol

Kit de Coloration May Grünwald Giemsa




Entreposage

35 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1230

Contenu du Kit

Coloration May Grunwald

Coloration de Giemsa

Tampon Sorensen (200xconc) PH 6.8

Résultats

Noyau:

Cytoplasme - Lymphocytes / Monocytes:

Granules dans les neutrophiles:

Granules basophiles:

Granules éosinophiles:

Globules rouges:

Rouge/Violet

Bleu pâle

Rouge/Violet

Bleu/Noir

Orange vif

Rose/Orange

Protocole


2. Filtrer le colorant May Grünwald, diluer avec le tampon Sorensens 1: 1 et colorer pendant 15 minutes

3. Retirer le colorant mais ne pas rincer dans le tampon

4. Filtrer le colorant Giemsa et diluer 1 partie du colorant dans 9 parties du tampon et colorer pendant 10

5. Rincer dans un tampon Sorensens pH 6,8

6. Déshydrater, clarifier et monter. Pour les frottis, monter une fois séché à l’air


minutes

52 53T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.comT: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com

Ce kit de coloration est populaire pour la coloration de l’antigène de surface de l’hépatite B et de la protéine associée au cuivre que l’on trouve couramment dans des maladies telles que la maladie de Wilson et la maladie biliaire chronique

Kit de Coloration Orceine Shikata




Entreposage

45 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Orcein solution (1% Orcein in 1% acid alcohol)

Potassium Permanganate 0.5% solution x 2

Sulphuric Acid 3% Solution

Oxalic Acid 1% Solution

Denatured Ethanol 70%

Résultats

Antigène de surface de l’hépatite B:

Fibres élastiques:

Protéine associée au cuivre:

Contexte:

Granulés bruns dans le cytoplasme

Marron

Marron foncé/Violet

Rose pâle/Marron

Protocole

Préparation du permanganate de potassium acidifié Mélanger 9,5 ml de solution de permanganate de potassium avec 0,5 ml de solution d’acide sulfurique. Cette solution violette se conserve 3-4 semaines mais doit être jetée après 5 utilisations ou si elle devient brune


2. Oxyde les coupes avec du permanganate de potassium acidifié pendant 5 minutes


4. Blanchir avec de l’acide oxalique à 1% pendant 1 minute


6. Rincer coupes dans de l’éthanol dénaturé à 70%

7. Colorer en solution d’orcéine pendant 30 min à 56°C

8. Rincer à l’eau puis à l’éthanol dénaturé à 70%

9. Déshydrater, éclaircir et monter

Hazard Information

UN1170

T: 0044 (0)161366 5123 W: www.atomscientific.com

Ce kit de coloration est utilisé pour colorer les phospholipides ainsi que les graisses neutres. Le soudan black B ne colore pas le cholestérol, les lécithines et les acides gras libres. Il y a deux fractions distinctes dans ce colorant, la première colore les graisses neutres en bleu-noir, tandis que la seconde fraction (un colorant basique) colore les phospholipides en gris. Le noir Soudan B ne tache pas le cholestérol, les leathiris et les acides gras libres

Kit de Coloration Noir Soudan B (Version Histologie)




Entreposage

130 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Sudan Black Stain in 70% ethanol

Ethanol 70% solution

Neutral red 0.5% aqueous

Résultats

Phospholipides:

Esthers insaturés/triglicérides:

Noyaux:

Gris

Bleu/Noir

Rouge

Protocole

1. Rincer les coupes du cryostat dans de l’éthanol à 70%

2. Colorer pendant 2 heures dans une solution de noir soudan B

3. Rincer les coupes dans de l’éthanol à 70% pour éliminer l’excès de colorant pendant 2 à 3 minutes

4. Laver à l’eau du robinet pendant 2 minutes

5. Sécher par essorage et contre-colorer dans une solution rouge neutre pendant 2-3 minutes


7. Monter dans un support aqueux ou examiner sous huile d’immersion

Hazard Information

UN1170


Ce kit de coloration est utilisé pour l’évaluation différentielle rapide des frottis

Kit de Coloration Rapi-Diff II Extra




Entreposage

1 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

RRSP133 - Coloration Rapi-Diff II - Solution A

RRSP134 - Coloration Rapi-Diff II - Solution B

RRSP135 - Coloration Rapi-Diff II - Solution C

Tablette tamponnée PH6.8 (Chaque tablette pour 1L de tamponné)

Résultats

Noyaux:

Cytoplasme – Lymphocytes - Monocytes:

Granules dans les Neutrophiles:


Granules Eosinophile:

Globules Rouges:

Différentes teintes de Rouge/Violet

Bleu Pale

Rouge/Violet

Bleu/Noir

Orange vif

Rose/Orange

Protocole

1. Préparez de fines frottis de sang sur des lames sans graisse et séchez à l’air

2. Fixez par immersion dans la solution A pendant 5 secondes

3. Transférez, sans rinçage ni séchage, dans la solution B et colorez pendant 5 secondes en agitant

4. Transférer la lame dans la solution C et répéter la coloration comme pour la solution B

5. Diluer la tablette tamponnée comme suivant les instructions

6. Rincer brièvement la lame dans de l’eau tamponnée (pH 6,8) et laisser sécher

lentement la lame dans la solution ou immerger et retirer la lame plusieurs fois pendant une périodede 5 secondes. Égouttez l’excès de tache sur du papier absorbant

Hazard Information

UN1230

Ce kit de coloration est utilisé pour l’évaluation différentielle rapide des frottis hématologiques et cytologiques

Kit de Coloration Rapi-Diff II




Entreposage

1 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

RRSP133 - Coloration Rapi-Diff II - Solution A

RRSP134 - Coloration Rapi-Diff II - Solution B

RRSP135 - Coloration Rapi-Diff II - Solution C

Résultats

Noyaux:

Cytoplasme – Lymphocytes - Monocytes:

Granules dans les Neutrophiles:


Granules Eosinophile:

Globules Rouges:

Différentes teintes de Rouge

Bleu Pale

Rouge/Violet

Bleu/Noir

Orange vif

Rose/Orange

Protocole

1. Préparez de fines frottis de sang sur des lames sans graisse et séchez à l’air

2. Fixez par immersion dans la solution A pendant 5 secondes

3. Transférez, sans rinçage ni séchage, dans la solution B et colorez pendant 5 secondes en agitant

4. Transférer la lame dans la solution C et répéter la coloration comme pour la solution B

5. Rincer brièvement la lame dans de l’eau tamponnée (pH 6,8) et laisser sécher

lentement la lame dans la solution ou immerger et retirer la lame plusieurs fois pendant une période de 5 secondes. Égouttez l’excès de tache sur du papier absorbant

Hazard Information

UN1230


Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration de la M-Tuberculose et d’autres organismes acido-résistants dans des coupes de tissus et des frottis. Le protocole utilise l’auramine O qui est un colorant cationique jaune utilisé comme fluorochrome qui se fixe aux bacilles tuberculeux et est visualisé à l’aide de la microscopie fluorescente

Kit de Coloration TB Fluorescent II


Code - 100 -200 -500 -1000





Entreposage

30 min (environ)


15-25°C

Contenu du Kit

Solution Auramine Rhodamine Phenol Lempert

Différenciateur de phénol d’auramine

Solution aqueuse de permanganate de potassium 0,5%

Protocole

1. Déparaffiner les sections et hydrater avec de l’alcool et rincer à l’eau. Pour les frottis, rincer à l’eau distillée

2. Préchauffer l’auramine rhodamine à 60°C dans un four ou bain marie. Mélanger après réchauffer


4. Différencier avec le différenciateur d’auramine pendant 5 minutes


6. Traiter avec une solution de permanganate de potassium à 0,5% pour 30 secondes

7. Bien laver à l’eau distillée et égoutter les lames

8. Déshydrater rapidement avec des alcools, nettoyer et monter avec un montage non fluorescent

Résultats

Mycobactéries:

Contour:

Tiges jaunes dorées

Vert foncé

Hazard Information

UN1992

et filtrer les lames- colorer pendant 10 minutes.

Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration de la M-Tuberculose et d’autres organismes acido-résistants dans des coupes de tissus et des frottis. Le protocole utilise l’auramine O qui est un colorant cationique jaune utilisé comme fluorochrome qui se fixe aux bacilles tuberculeux et est visualisé à l’aide de la microscopie fluorescente

Kit de Coloration TB Fluorescent I (Auramine Phénol Lempert)




Entreposage

30 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Solution Auramine Phenol Lempert

Différenciateur de phénol d’auramine

Solution aqueuse de permanganate de potassium 0,5%

Protocole

1. Déparaffiner les sections et hydrater avec de l’alcool et rincer à l’eau. Pour les frottis, rincer à l’eau distillée

2. Colorer les lames avec de l’auramine phénol lempert pendant 15 minutes


4. Faire la différence avec le différenciateur d’auramine pendant 5 minutes


6. Traiter avec une solution de permanganate de potassium à 0,5% pour 30 secondes

7. Bien laver à l’eau distillée et égoutter les lames

8. Déshydrater rapidement avec des alcools, nettoyer et monter avec un montage non fluorescent

Résultats

Mycobactéries:

Contour:

Tiges jaunes dorées

Vert foncé

Hazard Information

UN1992

58 59T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.comT: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com

Ce kit de coloration est couramment utilisé pour la coloration des films fécaux pour aider au diagnostic des protozoaires intestinaux

Kit de Coloration Trichrome de Wheatleys




Entreposage

55 min (environ)

3 ans (à partir de la date de manufacture)

15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Coloration de Trichrome de Wheatley’s

Différentiateur de Wheatley

Ethanol Denaturé 70%

Résultats

Cytoplasme des trophozoïtes protozoaires:

Kystes:

Noyaux et inclusions (corps chromatoïdes, globules rouges, bactéries et cristaux de Charcot-Leyden):

Bleu/Vert

Violet

Rouge, parfois teinté de violet

Protocole

1. Retirez la lame du fixateur de Schaudinn et placez la lame dans de l’éthanol dénaturé à 70% pendant 5 min.

2. Placez la lame dans une solution alcoolique à 2% d’iode pendant 1 min pour les échantillons frais ou 5 à 10

3. Placer la lame dans de l’éthanol dénaturé à 70% pendant 5 min.

4. Placer la lame dans de l’éthanol dénaturé à 70% à nouveau pendant 3 min.

5. Placer dans un colorant trichrome pendant 10 min.

6. Placer dans le différenciateur de Wheatley pendant 1 à 3 secondes. Egouttez immédiatement le panier et

7. Trempez plusieurs fois dans de l’éthanol à 100% (non fourni). Utilisez cette étape comme un rinçage

8. Laisser sécher le frottis pendant une nuit ou après 1 heure à 37 ° C

9. Examiner sous huile d’immersion

Iode 2% alcoolique

Hazard Information

UN1170

min pour les échantillons conservés au PVA

panier et passez au suivant. Ne laissez pas les lames trempées dans cette solution.

Ce kit de coloration est utilisé dans la démonstration du tissu conjonctif. C’est une coloration trichrome en une étape et peut être utilisée pour différencier le collagène et les fibres musculaires lisses

Kit de Coloration Trichrome de Gomori




Entreposage

120 min (environ)


15-25 ° C


Code - 100 -200 -500 -1000


Hazard Information

UN1170

Contenu du Kit

Solution de Bouins aqueuse saturée

Hématoxyline Weigerts A

Hématoxyline Weigerts B

Alcool acide Solution à 0,5%

Tache de Gomori

Acide acétique glacial à 0,5%

Résultats

Noyau:

Cytoplasme, Kératine, Fibres Musculaire:


Bleu/Noir

Rouge

Vert

Protocole

1. Préparer l’hématoxyline de Weigert en mélangeant des volumes égaux de solution A et B selon les



4. Placer les coupes dans la solution Bouins pendant 1 heure à 56 °C

5. Retirer les lames et laisser refroidir à température ambiante, bien laver à l’eau courante jusqu’à ce que

6. Rincer abondamment à l’eau distillée

7. Colorer les noyaux avec de l’hématoxyline ferrique Weigerts pendant 20 minutes

8. Laver à l’eau et différencier dans une solution d’alcool acide à 0,5%, en laissant les noyaux légèrement

9. Rincer à l’eau courante

10. Colorer avec Gomoris trichrome pendant 15 à 20 minutes

11. Rincer les coupes dans de l’acide acétique à 0,5% et sécher


besoins

toute la coloration jaune ait disparu

sur-colorés


Ce kit de coloration est utilisé pour visualiser les dépôts de calcium dans les coupes de tissu. Les coupes sont traitées avec une solution de nitrate d’argent et l’argent est déposé en remplaçant le calcium réduit par une forte lumière qui peut alors être visualisée comme de l’argent métallique

Kit de Coloration Von Kossa




Entreposage

75 min (environ)


Nitrate d’Argent 2-8°C – Autres Réactifs 15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Solution Nitrate d’Argent 5%

Solution Thiosulfate 5%

Solution Rouge Neutre (0.5% Aqueux)

Résultats

Sels de Calcium:

Noyau:

Cytoplasme:

Noir

Rouge

Rose

Protocole


2. Placer dans une solution de nitrate d’argent et exposer à une forte lumière pendant 1 heure

3. Laver dans 3 changements d’eau distillée


5. Bien rincer dans de l’eau distillée

6. Contre-colorer au rouge neutre pendant 5 minutes


8. Déshydrater rapidement avec des alcools, éliminer et monter

Hazard Information

UN3082

Ce kit de coloration est utilisé pour la démonstration des fibres de collagène. La méthode de Van Gieson est un mélange de deux colorants anioniques qui confèrent une couleur au collagène et une autre au cytoplasme, y compris les fibres musculaires et les érythrocytes. En utilisant une hématoxyline de fer (Weigert) qui est une coloration nucléaire résistante aux acides, la contre-coloration de Van Gieson produit la coloration différentielle du collagène et du

Kit de Coloration Van Gieson / Hématoxyline de Weigerts




Entreposage

35 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Hématoxyline Weigert Coloration A

Hématoxyline Weigert Coloration B

Van Gieson Extra Coloration

Alcool acide 0,5%

Résultats

Noyaux:

Collagène:

Globules Rouges:

Muscle:

Bleu-Noir

Rouge

Jaune

Jaune

Protocole

1. Préparer la solution d’hématoxyline de travail en mélangeant à parts égales les solutions

2. Déparaffiner les coupes, hydrater avec de l’alcool et rincer à l’eau du robinet

3. Colorer dans une solution de travail d’hématoxyline pendant 20 minutes. (conserver la solution


5. Différencier dans de l’alcool acide à 0,5%. Vérifiez au microscope. Sous différenciation est nécessaire

6. Rincer à l’eau du robinet

7. Bleuir dans l’eau du robinet Scotts et rincer à l’eau courante

7. Colorer dans du Van Gieson Stain pendant 2 minutes

8. Rincer rapidement à l’eau distillée, essuyer

9. Déshydrater rapidement dans de l’alcool absolu (l’acide picrique est fortement soluble dans

comme la coloration Van Gieson enlèvera un peu d’Hématoxyline

Hazard Information

UN1170

l’alcool. L’exposition à l’alcool doit être minimale) nettoyer et monter

d’hématoxyline A et B

jusqu’à ce que la coloration soit terminée)


Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration de Mycobacterium tuberculosis et d’autres organismes acido-résistants. Les parois cellulaires des mycobactéries ne sont pas facilement pénétrées, donc afin de colorer les mycobactéries, la fuchsine basique est mélangée avec du phénol pour créer une coloration puissante. La chaleur peut être appliquée pour «forcer» la coloration dans le bacille. Une fois coloré, le bacille est très résistant à la décoloration en conservant la teinte même lorsque le reste de la préparation a été décoloré

Kit de Coloration ZN (Bleu de Méthylène)




Entreposage

35-45 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Carbol Fuchsine ZN

Différentiateur TB x2

Bleu de Méthylène (AFB)

Results



Magenta/Rouge

Bleu

Hazard Information

UN1992

Protocole

1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis, inondez les

2. Placer l’échantillon dans un bocal Coplin de 50 ml (ou dans une enveloppe de 20 ml) de carbol fuchsine.

3. Retirer de la solution de coloration et placer sur le support de coloration et bien laver avec de l’eau

4. Différencier avec le différenciateur TB jusqu’à ce que la préparation soit incolore ou rose pâle 20-30

5. Bien laver à l’eau du robinet pendant 5 minutes

6. Contre-colorer avec le Bleu de Méthylène pendant 15 secondes


8. Déshydrater rapidement sous alcools purs, clarifier et monter. Si l’huile d’immersion doit être utilisée dans

Mettre au four à 37 ° C, pour les frottis 20min, pour les coupes 30 min

déminéralisée pendant 3-5 min

le cas de visualisation de frottis, la préparation doit être séchée à l’air pendant 20-30 minutes

lames avec de l’eau distillée

secondes

Ce kit de coloration est utilisé pour visualiser les dépôts de calcium dans les coupes de tissu. Les coupes sont traitées avec une solution de nitrate d’argent et l’argent est déposé en remplaçant le calcium réduit par une forte lumière qui peut alors être visualisée comme de l’argent métallique

Kit de Coloration Von Kossa (Fort)




Entreposage

75 min (environ)


Nitrate d’Argent 2-8°C – Autres Réactifs 15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Résultats

Sels de Calcium:

Noyau:

Cytoplasme:

Noir

Rouge

Rose

Protocole


2. Placer dans une solution de nitrate d’argent et exposer à une forte lumière pendant 1 heure

3. Laver dans 3 changements d’eau distillée


5. Bien rincer dans de l’eau distillée

6. Contre-colorer au rouge neutre pendant 5 minutes


8. Déshydrater avec des alcools, nettoyer et monter

Hazard Information

UN3082

Contenu du Kit

Solution Nitrate d’Argent 10%

Solution Thiosulfate 5%

Solution Rouge Neutre (0.5% Aqueux)

64 65T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com

Ce kit de coloration est utilisé pour la coloration de Mycobacterium tuberculosis et d’autres organismes acido-résistants. Les parois cellulaires des mycobactéries ne sont pas facilement pénétrées, donc afin de colorer les mycobactéries, la fuchsine basique est mélangée avec du phénol pour créer une tache puissante. La chaleur peut être appliquée pour «forcer» la tache dans le bacille. Une fois coloré, le bacille est très résistant à la décoloration en conservant la tache même lorsque le reste de la préparation a été décoloré

Kit de Coloration ZN (Vert de Malachite)




Entreposage

35-45 min (environ)


15-25°C


Code - 100 -200 -500 -1000


Contenu du Kit

Carbol Fuchsine ZN

Différentiateur TB x2

Vert de Malachite 0.5% Aqueux

Résultats



Magenta/Rouge

Vert

Hazard Information

UN1992

Protocole

1. Déparaffiner les sections, hydrater avec des alcools et rincer à l’eau du robinet. Pour les frottis,

2. Placer l’échantillon dans un bocal Coplin de 50 ml (ou dans une enveloppe de 20 ml) de carbol fuchsine.

3. Retirer de la solution de coloration et placer sur le support de coloration et bien laver avec de

4. Différencier avec le différenciateur TB jusqu’à ce que la préparation soit incolore ou rose pâle 20-30

5. Bien laver à l’eau du robinet pendant 5 minutes.

6. Contre-colorer avec du vert malachite pendant 15-20 secondes


8. Déshydrater rapidement sous alcools purs, clarifier et monter. Si l’huile d’immersion doit être utilisée

Mettre au four à 37 ° C, pour les frottis 20min, pour les coupes 30 min.

l’eau déminéralisée pendant 3-5 minutes.

dans le cas de visualisation de frottis, la préparation doit être séchée à l’air pendant 20-30 minutes

inondez les lames avec de l’eau distillée

secondes

66 67

Kit de Coloration Bleu d’Alcian pH 1.0Kit de Coloration Bleu d’Alcian pH 2.5Kit de Coloration AFB (Contre-couleur Bleu de Méthylène)Kit de Coloration AFB (Contre-Couleur Vert Clair)Kit de Coloration Bleu Rapide de LuxolKit de Coloration Bleu VictoriaKit de Coloration Congo Red (de Highman)Kit de Coloration Cryptosporidium Kit de Coloration d’Elastique OrceinKit de Coloration d’Eosine et HématoxylineKit de Coloration d’Huile Rouge OKit de Coloration de Bleu de Toluidine Kit de Coloration de DPAS Kit de Coloration de FieldKit de Coloration de Gram (Contre-Coloration Fuchsine de Gram)Kit de Coloration de Gram (Contre-coloration Rouge Neutre)Kit de Coloration de Gram (Contre-coloration Safranine)Kit de coloration de Gram (Contre-Couleur de Twort)Kit de Coloration de Gram (Hucker&Conn)Kit de Coloration de GrocottKit de Coloration de Kinyoun Froid (Contre-couleur de Vert de Malachite)Kit de Coloration de Kinyoun Froid (Contre- Couleur de Bleu de Méthylène)Kit de Coloration de Martius Bleu EcarlateKit de Coloration de Mucicarmine Southgate Kit de Coloration de NeisserKit de Coloration de PapanicolaouKit de Coloration de PASKit de Coloration de Bleu d’Alcian - PASKit de Coloration de PAS pour parois cellulaires fongiques (modifié par McManus 1946)Le Kit de coloration PAS (Periodic Acid Schiff) de JonesKit de Coloration de PerlsKit de Coloration de Perls (Version Hématologie)

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Kit de Coloration de Perls Van GiesonKit de Coloration de Picro-Mallory TrichromeKit de Coloration de Réticuline (avec Chlorure d’Or)Kit de Coloration de Réticuline (Sans Chlorure d’Or)Kit de Coloration de Rouge Congo (Puchtler & Sweat)Kit de Coloration du Fer ColloïdalKit de Coloration Elastic Van Gieson (Miller) (EVG)Kit de Coloration Elastic Van Gieson (Verhoeffs) (EVG)Kit de Coloration KleihauerKit de Coloration Masson FontanaKit de Colorations de Masson Trichrome (Bleu de Méthyl)Kit de Colorations de Masson Trichrome (Vert Clair)Kit de Coloration May Grunwald GiemsaKit de Coloration Noir Soudan (Version Hématologie)Kit de Coloration Noir Soudan (Version Histologie)Kit de Coloration Orcein ShikataKit de Coloration Rapi- Diff IIKit de Coloration Rapi- Diff II ExtraKit de Coloration TB Fluorescent I (Auramine Phénol Lempert)Kit de Coloration TB Fluorescent II Kit de Coloration Trichrome de GomoriKit de Coloration Trichrome de WheatleysKit de Coloration Van Gieson / Hématoxyline de WeigertsKit de Coloration Von Kossa Kit de Coloration Von Kossa (Fort)Kit de Coloration ZN (Bleu de Méthylène)Kit de Coloration ZN (Vert de Malachite)

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T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com T: +44 (0) 0161 366 5123 W: www.atomscientific.com

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