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Immunoanal Btol Sp~c (1991) 28, 29-31 29 © Elsevier, Paris Strategies d'exploration fonctionnelle et de suivi therapeutique Methode de detection directe simplifiee par PCR sur tache de sang seche de la mutation principale responsable de la mucoviscidose G Lucotte 1, F David2, JL P~rignon 3 i Laborato#red'anthropolog#e phys#que, Coll~ge de France, 11, place Marcehn-Berthelot, 75005 Par#s, 2 Laborato#res Eurobto, ZA de Courtaboeuf, 7, avenue de Scandmawe, 91953 Les Uhs, 3 laboratotre de btochtm#em~d#cale, facultd de mddecme Necker-Enfants-Malades, 156, rue de Vauglrard, 75015 Parts, France (Regu le 28 d~cembre 1990, accept~ le 16 mai 1991) Rdsum~ m Nous ddcrivons une m~thode de d~tect~on de la ddl6tlon, nomm~e AF508, par une r~actton de polymdrisa- t~on en cha~ne (PCR) fatsant mterven~r deux comblnaisons d'amoroes oligonucl~ot~ques, qui peuvent permettre la d~s- traction des alleles mutants et normaux Cette amphfication sp~cifique d'all61es constltue une m~thode rap~de, non radtoact~ve et tr~s fiable de d~tection g~n~quedirecte sur les taches de sang s~ch~ mucoviscidose / d(H(~tion &F508 / PCR / ARMS / taches de sang s~ch~ Summary -- A direct detection method by means of a simplified PCR procedure of the main cystic fibrosis mutation on dried blood spots A method is described for the detectton of the so-called AF508 deletton wa a polyme- rase chain reaction (PCR) wtth 2 combinations of ohgonucleotide pnmers which differentiate between mutant and wild- type alleles This allele-specific amplification provides a rapid, non-radioactive and very reliable method for direct geno- typing on dried blood spots cystic fibrosis / AF508 deletion / PCR / ARMS / dried blood spots Introduction On a r~cemment d~couvert qu'approx~mat~ve- ment 80% de pattents mutants pour la mucovtsc~- dose (CF = cyst#c f#brosls) en France [4], corres- pondent & une d~l~tion spdcffique de trois patres de bases (pb) en position de I'actde amind 508 (nomm6e AF508) du produtt putatif du g~ne CF[3] Deputs, un certain nombre de m~thodes ont ~t~ propos6es pour la d~tectton rap~de de cette mutation Toutes ces m~thodes utihsent la techntque de Polymerase Chain Reaction (PCR), mais dtff~rent entre elles par des modaht6s de d~tatl Nous d~crivons ici une m~thodologie partl- cuh~re s~mpllfi6e, car ne faisant mtervenlr ni hybridatton du produit d'amphficatlon avec un couple d'ohgosondes sp~cifiques des chromo- somes normaux (N) et mut~s (S), ni enzyme de restnct~on, ni marquages radioact~f ou frotd, cette m6thode est tout spdc~alement apphqu~e tct & la d~tection d~recte de la mutatton AF508 au niveau des taches de sang s~ch6 sur papier buvard Principe C'est la technique ASPC (Allele SpeclDc POEt), nomm~e aussi ARMS (Amphflcated Refractory Mutation System), qu~ est utihs6e dans notre cas particuher [6, 8] Son pnncipe r6stde dans le fait que certams ohgonucl6ottdes, mcapables de s'ap- paner par leur extr6mit6 3' avec la matrice d'ADN, ne peuvent server d'amorce Iors de I'amphficat~on, parmt les couples d'amorces synth~tis~es, cor- respondant aux chromosomes normaux ou mut~s, seules peuvent ~tre utJhs6es Iors de la PCR celles qu~ sont homologues des fragments d'ADN correspondants, de telle sorte que la stra-

Méthode de détection directe simplifiée par PCR sur tache de sang séché de la mutation principale responsable de la mucoviscidose

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Page 1: Méthode de détection directe simplifiée par PCR sur tache de sang séché de la mutation principale responsable de la mucoviscidose

Immunoanal Btol Sp~c (1991) 28, 29-31 29 © Elsevier, Paris

Strategies d'exploration fonctionnelle et de suivi therapeutique

Methode de detection directe simplifiee par PCR sur tache de sang seche

de la mutation principale responsable de la mucoviscidose

G Lucotte 1, F David 2, JL P~rignon 3

i Laborato#re d'anthropolog#e phys#que, Coll~ge de France, 11, place Marcehn-Berthelot, 75005 Par#s, 2 Laborato#res Eurobto, ZA de Courtaboeuf, 7, avenue de Scandmawe, 91953 Les Uhs,

3 laboratotre de btochtm#e m~d#cale, facultd de mddecme Necker-Enfants-Malades, 156, rue de Vauglrard, 75015 Parts, France

(Regu le 28 d~cembre 1990, accept~ le 16 mai 1991)

Rdsum~ m Nous ddcrivons une m~thode de d~tect~on de la ddl6tlon, nomm~e AF508, par une r~actton de polymdrisa- t~on en cha~ne (PCR) fatsant mterven~r deux comblnaisons d'amoroes oligonucl~ot~ques, qui peuvent permettre la d~s- traction des alleles mutants et normaux Cette amphfication sp~cifique d'all61es constltue une m~thode rap~de, non radtoact~ve et tr~s fiable de d~tection g~n~que directe sur les taches de sang s~ch~

mucoviscidose / d(H(~tion &F508 / PCR / ARMS / taches de sang s~ch~

Summary - - A direct detection method by means of a simplified PCR procedure of the main cystic fibrosis mutation on dried blood spots A method is described for the detectton of the so-called AF508 deletton wa a polyme- rase chain reaction (PCR) wtth 2 combinations of ohgonucleotide pnmers which differentiate between mutant and wild- type alleles This allele-specific amplification provides a rapid, non-radioactive and very reliable method for direct geno- typing on dried blood spots

cystic fibrosis / AF508 deletion / PCR / ARMS / dried blood spots

In t roduct ion

On a r~cemment d~couvert qu'approx~mat~ve- ment 80% de pattents mutants pour la mucovtsc~- dose (CF = cyst#c f#brosls) en France [4], corres- pondent & une d~l~tion spdcffique de trois patres de bases (pb) en position de I'actde amind 508 (nomm6e AF508) du produtt putatif du g~ne CF[3] Deputs, un certain nombre de m~thodes ont ~t~ propos6es pour la d~tectton rap~de de cette mutation Toutes ces m~thodes utihsent la techntque de Polymerase Chain Reaction (PCR), mais dtff~rent entre elles par des modaht6s de d~tatl Nous d~crivons ici une m~thodologie partl- cuh~re s~mpllfi6e, car ne faisant mtervenlr ni hybridatton du produit d'amphficatlon avec un couple d'ohgosondes sp~cifiques des chromo- somes normaux (N) et mut~s (S), ni enzyme de restnct~on, ni marquages radioact~f ou frotd, cette

m6thode est tout spdc~alement apphqu~e tct & la d~tection d~recte de la mutatton AF508 au niveau des taches de sang s~ch6 sur papier buvard

Principe

C'est la technique ASPC (Allele SpeclDc POEt), nomm~e aussi ARMS (Amphflcated Refractory Mutation System), qu~ est utihs6e dans notre cas particuher [6, 8] Son pnncipe r6stde dans le fait que certams ohgonucl6ottdes, mcapables de s'ap- paner par leur extr6mit6 3' avec la matrice d'ADN, ne peuvent server d'amorce Iors de I'amphficat~on, parmt les couples d'amorces synth~tis~es, cor- respondant aux chromosomes normaux ou mut~s, seules peuvent ~tre utJhs6es Iors de la PCR celles qu~ sont homologues des fragments d'ADN correspondants, de telle sorte que la stra-

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30 G Lucotte et al

t~gie de d~tectlon dans cette technique part~cuh~- re conslste & determiner le g~notype de I'mdiwdu ~tudi~ gr&ce & la seule presence/absence des produits d'amphficatlon Iors des d~verses combi- naisons entre ces couples Une telle m~thodolo- gie de d~tection apphqu~e ~. la mise en ~vtdence de la mutation AF508 a d'allleurs d~j& ~t~ propo- s~e [7], et plusieurs couples d'amorces ont fa~t I'objet d'~tudes pr~hmmatres, deux d'entre eux [1] ~tant utflis~s act

Materiel et methode

Extract#on de I'ADN

La tache de sang sur le papter buvard est dissoute dans 500 ILl de tampon, comprenant 2 mg/ml de prot~l- nase K et 0,5% de SDS La digestion est ensuite r~ah- s~e 3 h & 37°C L'extractlon de I'ADN se falt trois fois au ph~nol-chloroforme, suivte d'une extraction au chlo- roforme seul Puis I'ADN est pr~cipit~ dans I'~thanol absolu sur la glace, le culot ~tant enfln resuspendu dans 200 ILl d'H20 Une prise de 20 ILl est r~ahs~e pour chaque r~actlon d'amphficatlon

Dans ces conditions, nous obtenons en moyenne (calcul~e sur 30 ~chantlllons) 1,6 ILg d'ADN total par papter Un contr61e sur gel a permis d'~tabhr qu'tl s'agissatt bien d'ADN long bnn non d~grad~

Couples d'amorces ut#hs~s

Deux couples d'amorces sont uttlis~s le premier couple (AB) permettant I'amphficatlon du chromosome N, et le second (AC) celle du chromosome A

Les formules des trois amorces utihs~es [1] sont les sulvantes - A (016D) 5' - GTTGGATGCTTTGATGACGCTTC - 3', - B (1468) 5'-GGCACCATTAAAGAAAATATCATCTT- 3', - C (1469) 5' - GGCACCATTAAAGAAAATATCATTGG - 3'

PCR

Sont amphfi6s 500 ng d'ADN g~nomiques punfi~ dans un volume r~actionnel total de 100 ILl, comprenant dans le tampon PCR (20 mmol Tns-HCI, pH = 8,3, 2 mmol MgCI2, 25 mmol KCI, 0,05%, Tween 20, 100 ILg/ml BSA) 250 mmol de dNTP, 25 pmol de chacune des amorces A et Bet A et C, et 2,5 U de Taq polym~- rase Lors d'exp~nences pr~hmma~res, le t~mo~n inter- ne d'amphflcation KM 19 a ~t~ syst~matiquement intro- dult dans chaque tube Pour la d~tection des h~t~rozygotes cependant, les couples d'amorces ABet AC constituent leurs propres t6moms internes, puts- qu'au morns I'un des deux chromosomes (normal ou mut~) est present dans la r~action

La d~naturation inittale est r~alis~e & 95°C pendant 5 mm L'ADN est amphfi~ automatiquement sur appareil thermocycle pendant 30 cycles, les 29 premiers com- portant les phases successlves de d~naturatlon (94°C, 45 s), d'hybndatlon (60°C, 1 ram) et d'extension (72°C, 1 mm), Iors du 30 e cycle, rextenslon est r~ales~e pen- dant 7 min

R(~sultats

Les dtverses combmatsons des produits d'amphfi- cat~on peuvent ~tre wsuahs~es d~rectement apr~)s migration sur gel d'agarose par coloration au bet (bromure d'~thidium) Pour ce fatre, 25 ILl du pro- duit d'amphflcation de chaque ~chanttllon sont d~pos~s sur un gel d'agarose & 2% (tampon Tns- borate) et sont mis & megrer pendant 3 h & 100 V

Pour chaque ~chantillon, sont ~tud~s les pro- duJts de la PCR par les couples d'amorces ABe t AC (fig 1) Cette figure montre que les ~chan- tillons h6t~rozygotes N/A correspondent ~. deux bandes en bet par la m~thode d~cnte ~c~ Iors des PCR A B e t AC, les ~chantillons normaux N/N ne montrent qu'une seule bande, en AB (les mutants ~,A ont uniquementla bande AC)

La m~thode d~cnte ~c~ a ~t~ ut~hs~e & la d~ter- mmatJon du g~notype de 57 pap~ers buvards dif- f6rents La m6thode a ~t~, dans un premier temps, vahd6e sur I'ADN d'6chantfllons sangums de 12 nouveau-n~s de g~notypes d~termm~s par PCR classlque [5] comportant une amplification avec deux amorces sttu~es de part et d'autre du site mut~, suivie d'une hybndation sur dot-blot avec un couple d'ohgosondes sp~ctfiques de chaque allele, et marquees de fa(;on "y-termmale

1 2 3 4 AB AC AB AC AB AC AB AC

79pb 76pb

+ + + + + - - + +

Fig 1 Coloration au bet des couples de PCR pour les amorces AB et AC de quatre ~chanhllons M marqueur de tallle (pBR diger6 par Haelll), d d~pSt, a amorces reslduelles Les echantlllons 1,2 et 4 sont h~terozy- gotes N/D,, et le 3 normal N/N (intensite de la bande doublee) La distinction entre les produits amplifies de 79 et 76 pb est mieux resolue en gel d'acylamlde & 15%

Page 3: Méthode de détection directe simplifiée par PCR sur tache de sang séché de la mutation principale responsable de la mucoviscidose

Mutation responsable de la mucovlscldose 31

au 32p, dans tous les cas, une correspondance absolue a ~t~ not6e entre les r~sultats obtenus par notre m~thode et la techn=que de r~f~rence La reproduct=bdlt~ a ~t~ test~e sur les 25 pre- miers ~chantlllons de paplers buvards, un dlsque de 1 mm de dlarn~tre pr~lev~ & I'emporte-pl~ce dans la tache correspondant & une quant=t~ d'ADN suffisante pour le bon fonctlonnement de la PCR dans nos conditions, dans tousles cas, le m~me g~notype a ~t~ retrouv~ pour chacun des deux ~chantlllons du couple d'exp6rlences r~ah- sdes sur le m~me sang

Discussion

Au terme de la pr6sente 6tude, nous avons mls au point une m~thode rap~de, flable et reproduc- t=ble, de d~tect=on de la mutat=on AF508 sur tache de sang s6chd Le type de d~tect~on, coupl~ ~. la mesure de la trypslne immunor6actlve [2], paraTt tout part=cuh~rement =nt~ressant pour le d6plsta- ge ndonatal de la mucoviscidose En effet, la m~se en dvldence d'une hypertrypsin~mle persls- tante n~cess~ta=t deux pr~l~vements, dont un tar- dlf, vers le 30 e jour de vie II est malntenant pos- sible de remplacer ce deuxl~me pr~l~vement par une d~tectlon d=recte de la mutat=on CF pnnclpale sur le papler buvard initial Une large dtude r~trospect~ve est actuellement entrepnse pour ~valuer cette nouvelle strat~g~e de d~p=stage n~onatal de la mucowscldose

Remerciements

Nous remerc~ons pour sa collaboration technique ~. ce trava=l, le Dr S Berrlche Les amorces utfllsdes ont ~t~

synth~tlsdes dans le laboratolre du Pr Igolen, de I'lnst~- tut Pasteur de Paris La m~thodologle de ddtectlon de la mutation AF508 a falt I'objet du d~p6t de brevet d'ln- ventlon FR 51849A (Laboratolres Euroblo)

Ref6rences

1 Ballablo A, Gibbs RA, Caskey CT (1990) PCR test for cystic fibrosis deletion Nature 343, 220

2 Bowling FG, Mc Gill J J, Sheperd RW, Danks DM (1990) Screening for cystic fibrosis use of AF508 mutation Lancet 335, 925-926

3 Kerem BS, Rommens JM, Buchanan JA, Markle- wlcz D, Cox TK, Chakravartl A, Buchwald M, Tsul LC (1989) Identification of the cystic fibrosis gene, genetic analytls Science 245, 1073-1080

4 Lucotte G (1989) Mucovlscldose fr~quence de la mutation pnnclpale dans les families fran(~alses Ophon/B#o 24, 13-14

5 Lucotte G, Barr~ E, Bernche S (1990) D~tectlon de la mutation prlnclpale de la mucovlscldose ~tude sur soixante et une families (soumls pour publica- tion)

6 Newton CR, Graham A, Heptlnstall LE, Powell S J, Summer C, Kalshekr M, Smith JC, Markham AF (1989) Analysis of any point mutation in DNA the amphficatlon refractory mutation system Nucle#c Aclds Res 17, 2503-2515

7 Wagner M, Schloesser M, Relss J (1990) Direct gene diagnosis of cystic fibrosis by allele specific polymerase chain reactions Mol B#ol Med 7, 359- 364

8 Wu DY, Ugozzoh, Pal B J, Wallace RB (1989) Allele- specific enzymatic amphflcatlon of beta-globm DNA for diagnosis of s~ckle cell anemia Proc Natl Acad Sc# USA 86, 2757-2760