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Bordetella JM Scheftel 2010

Bordetella JM Scheftel 2010. Historique: Jules Bordet décrit en 1900 un bacille à Gram (-) comme lagent de la coqueluche dans le frottis dun prélèvement

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Bordetella

JM Scheftel 2010

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Historique:

Jules Bordet décrit en 1900 un bacille à Gram (-) commel’agent de la coqueluche dans le frottis d’un prélèvement respiratoire.

En 1906, Bordet et Gengou mettent au point le milieu de culture à base de fécule de pomme de terre + sang qui permet la culture du germe.

Ils le dénomment Haemophilus pertussis.

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Taxonomie : L’agent de la coqueluche porte maintenant le nom de Bordetella pertussis (Bp)

Un autre agent responsable d’une coqueluche plus atténuée: Bordetella parapertussis (Bpp)

B.bronchiseptica : agent de la rhinite atrophique du porc

Les Bordetella ont en commun un tropisme pour les muqueuses respiratoires supérieures

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Taxonomie :Autres espèces de BordetellaB.holmesiiB.hinziiB.trematumB.aviumB.petrii

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Bordetella

Petits bacilles à Gram (-) de 0,5 à 1μ L sur 0,2 à 0,4μ l, à coloration bipolaire, immobiles, aérobie strict, exigeant pour Bp du NAD et des dérivés soufrés

Bp ne pousse pas sur milieu ordinaire, est sensible aux lipides; ne se cultive que sur milieu au charbon (Regan-Love) ou sur milieu de Bordet-Gengou (au sang défibriné et fécule de pomme de terre).

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Bordetella pertussis

Culture lente (2 à 3 j) en atmosphère humide: colonies de 0,5 mm de diamètre, brillantes ressemblant à des gouttelettes de mercure, entourées d’une zone d’hémolyse ( colonies S: phase I).

En phase IV, les colonies sont rugueuses.

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Bordetella pertussis

agent de la coqueluche

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Genre Bordetella

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Epidémiologie

La coqueluche atteint selon l’OMS près de 60 M de personnes /an avec une mortalité de 600000 décès /an (1%)

Principalement parmi les nourrissons de moins d’un an dans les pays où la vaccination est insuffisante ou absente.

La vaccination a permis d’éradiquer la coqueluche à partir des années 50 aux US et ensuite en Europe à partir des années 65. (15 ans après)

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Epidémiologie

Or depuis 1976 aux US, on enregistre une résurgence de la coqueluche , malgré la couverture vaccinale et en France depuis 1990, soit également 15 ans après les US.

Causes: affaiblissement de l’immunité protectrice vaccinale chez l’adulte et de l’absence de rappel vaccinal tardif (après 6 ans).

Maladie à déclaration obligatoire entre 1950 et 1986.

1950: 5000 cas1985: 86 casDécès : 600 en 50 et <7 en 80

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CliniqueA) Forme commune chez l’enfant non vacciné: de 4-5 ans

L’incubation est de 7 à 15 jours1-La phase catarrhale: ressemble à rhino-pharyngite

Toux + à +++, émétisantes, cyanosante et nocturneDurée de 5 à 10 jTrès contagieuse car Bp présent sur la muqueuse

2-La phase des quintes: spécifiqueaccès paroxystiques violents de toux rapprochés , suivis d’une reprise inspiratoire difficile comparée au « chant du coq » + vomissements (20 à 30 accès /j)

Durée de 3 à 4 semaines3-phase de convalescence

Plusieurs semaines (2 à 3 mois)

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Clinique (2)B) Forme clinique du petit nourrisson non vaccinéMoins typique , chant du coq le + souvent absent, mais +sévèreQuintes cyanosantes , asphyxiantes, + apnée, bradycardie, vomissements,

Formes suraiguës dyspnéisantes > > > léthales

C) Forme clinique de l’enfant et de l’adulteImmunité vaccinale réduite

moins sévère et atypique mais quintes prolongées possibles chez l‘adulte ce qui doit faire évoquer ce diagnostic.

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Facteurs de virulence

2 phases: colonisation des muqueuses et effets toxiques

1) facteurs d’adhésionfimbriae (agglutinogènes)FHA: Filamentous Hemagglutinin AntigenPT: pertussis toxin (ou PTX)

2) toxines:PTX, Adénylate cyclase, Toxine cytotrachéale (TCT),Toxine thermolabile (HLT) , endotoxine

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Toxine cytotrachéale (TCT)

Exprimée par Bp, Bpp, Bb en phase I ou IV

Sous-unité monomérique du peptiglycane, libérée dans milieu de culture pendant la phase exponentielle de croissance. Clivage spécifique de type muramidase du PG.

Structure: disaccharide tétrapeptide (muramylpeptide)NAcGlc-NAcMur-Ala-Glu-DAP-Ala (921 daltons)

Non soumise à régulation

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TCT Modifications morphologiques:

Arrondissement cellulaireRéduction du nombre de cilsGonflement des mitochondries et vacuolisationDisparition des jonctions intercellulairesSynthèse d’ADN inhibée

À fortes conc : toxique sur PNN , pas effet sur Mφ

Inhibition de la migration et de la chimioluminescence

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TCT

Pourrait jouer un rôle dans la survie de Bp

TCT : seule toxine capable d’induire la destruction des cellules ciliées de l’épithélium respiratoire.

Stimulerait la capacité de la cellule de l’hôte à produire de

cytokines et du NO apoptose

Destruction des cellules ciliées: absence élimination mucus (toux)

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Adénylate-Cyclase Hémolysine (AC Hly)

Découverte en 1973 par Wolff dans une préparation vaccinale commerciale.

Membre de la famille des toxines RTX, protéine bifonctionnelleActivité AC + faible activité hémolytiquePM: 177 KDa,

Catalyse la réaction ATP AMPc, activée 100 à 1000 x par la calmoduline (Cam), n’est pas strictement dépendante du Ca2+

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AC Hly

Confer et Eaton : les premiers à suggérer que AC-Hly pénétrait dans les Mφ alvéolaires et les PNN : hauts niveaux AMPc

AC-Hly altère les fonctions phagocytaires et bactéricidesInhibition du chimiotactisme , chimiluminescence, libération d’ions superoxydes et synthèse de leucotriènesCytotoxicité par apoptose

Facteur de virulence majeur de Bp

Mutants n’expriment pas AC sont avirulents dans un modèle murind’infection léthale

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La toxine pertussique (PTX)

S1 ADP ribosyle la SU α de la Gi protéine au niveau d’une cystéine de la région C-terminale

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L’endotoxine

Effet pyrogène, toxicité, effet local et généralisé de Schartzmann-Sanarelli, induction d’une immunité non spécifique, induction de la production d’interféron, propriétés adjuvantes

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Physiopathologie

Colonisation spécifique des cellules ciliées de l’épithélium respiratoire

Destruction des cellules ciliées

Résistance vis-à-vis des défenses de l’organisme

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Diagnostic direct

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Prélèvements frottis naso-pharyngés

aspiration pharyngée

Milieu de transport: milieu de Stainer et Scholte

Culture: Milieu de Bordet-Gengou ou de Regan-Love

Incubation à 37°C en chambre humide

colonies en 3 à 4 j pour Bp,

colonies en 2à 3j pour Bpp

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Prélèvement naso-pharyngé (écouvillon en dacron)

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Amplification génique: PCR en temps réel (LightCycler PCR)

oligonucléotides et sondes pour cibler séquence d’insertion

IS481 pour B.pertussis

IS1001 pour B.parapertussis

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Diagnostic indirect

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Sérodiagnostic:

Western Blot

- Anticorps anti toxine pertussique

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Prophylaxie et Traitement

Vaccination et calendrier vaccinal

Mesures de prévention

Traitement antibiotique

CONCLUSION