Livret regroupant les plans d’études et les syllabi · 1- Conduction 2- Convection (nombre de Reynolds, nombre de Nusselt, le nombre de ... -Les bases de la thermodynamique, cours

Institut Polytechnique Privé (IP2)

2017-2018

Département de Biotechnologie

Livret regroupant les plans d’études et les syllabi

Elaboré par Mme ANTIT BEN REJEB Mouna

2ème

année Licence Appliquée en Biotechnologie

LICENCE APPLIQUÉE EN BIOTECHNOLOGIE

Plan d'Etudes : BT2-Semestre 1

Unités d'enseignement (UE)

Volume

horaire Crédits

Coef Régime d'examen

UE Fondamentales C TP

Tot.

UCUE UCUE

UE UCUE UE

Contrôle

Continu

Régime

mixte

UEF1 Physiologie animale 1,50 1,50 3,0 3 6

3 6

x

Biotechnologie animale 1,50 1,50 3,0 3 3 x

UEF2 Enzymologie & génie Enzymatique 1,50 1,50 3,0 3 6

3 6

x

Génie des procédés 1,50 1,50 3,0 3 3 x

UEF3 Génétique Moléculaire 1,50 1,50 3,0 3 6

3 6

x

Génie génétiqaue 1,50 1,50 3,0 3 3 x

UE Transversales

UET1 Anglais I 1,50 1,5 2

6

2

6

x

Bioéthique/biosécurité 1,50 1,5 2 2 x

culture de l'Entreprise 1,50 1,5 2 2 x

UE Optionnelles

UEOp3 Op 3,1 : Management de la qualité 1,50 1,50 3,00 3 6

3 6

x

Op 3,1 : Instrumentation et métrologie 1,50 1,50 3,00 3 3 x

Total/semaine 28,5 30 30

LICENCE APPLIQUÉE EN

BIOTECHNOLOGIE

Fiches des contenus de chaque ECUE de L3

1

UE Fondamentales

UEF1

Physiologie animale

Biotechnologie animale

2

UNIVERSITÉ LIBRE DE TUNIS Institut Polytechnique Privé (IP²)

2ème année : BT2

LICENCE APPLIQUEE EN BIOTECHNOLOGIE A.U. : 2017/2018

Semestre (s) 1 Enseignant de la matière:

ANTIT BEN REJEB MOUNA Semaines 14

Type de matière Cours-TD-

TP

Intitulé de la matière :

PHYSIOLOGIE ANIMALES Heure / semaine

1,5h

Cours

1,5h TP

Coefficient 3

Objectifs

Faire acquérir des connaissances de base sur quelques aspects de la physiologie animale en tant que spécialité

carrefour qui considère l’être vivant dans son ensemble, intégrant les aspects moléculaires, cellulaires et

fonctionnels, en relation avec les autres disciplines biologiques, avec pour finalité une meilleure

compréhension des processus vitaux.

Méthodologie

Cours magistral assuré grâce à une projection de diapositives incluant le cours, des photos, des

schémas afin de faciliter à l’étudiant la compréhension.

Travaux pratiques : Rappel de connaissances du secondaire particulièrement la classe terminale (la

structure histologique du système nerveux). Etude d’un frottis sanguin, détermination du groupe

sanguin de chaque étudiants et étude des glandes endocrine (dissection d’un mammifère : rat). Pré Requis

Embryologie, Biologie cellulaire, biologie animale, Histologie

Evaluation

Note de TP (30%) Contrôle Continu (70 %) la moyenne obtenu compte pour 40%

L’examen Final (60 %)

Plan du cours

INTRODUCTION

CHAPITRE1 : I-LE MILIEU INTERIEUR

1. Les compartiments liquidiens de l'organisme

1.1.Définition et caractéristiques du milieu intérieur

1.2.Classification des compartiments liquidiens de l’organisme

1.3.Volume des composants liquidiens de l’organisme

2. Les échanges liquidiens entre les compartiments

2.1.Les mécanismes impliqués dans les échanges entre compartiments

2.2.Les échanges entre compartiment extra et intra-cellulaire

2.3.Echanges entre compartiment interstitiel et compartiment vasculaire

2.4.Régulation du volume des liquides extra cellulaires

2.5.Les mécanismes homéostatiques

CHAPITRE 2 : LE SANG ET LE SYSTEME VASCULAIRE

1. Hématologie

1.1.Les éléments figurés du sang

1.2.Eléments à considérer dans la transfusion sanguine

1.3.Hématopoïèse

1.4.Equilibre acido-basique

3

2. Structure et caractéristiques des vaisseaux du système vasculaire

2.1.Structure des Veines

2.2.Structure des Artères

2.3.Structure des Capillaires

CHAPITRE 3. PHYSIOLOGIE ENDOCRINE

1. Introduction

2. Mécanismes de l’action hormonale

2.1. Définition

2.2. Biosynthèse

2.3. Mécanisme d’action

2.4. Mécanisme de rétroaction hormonale (Feedback négatif ou positif)

CHAPITRE 4: PHYSIOLOGIE NERVEUSE 1. Présentation générale

2. Physiologie du neurone : propriétés physiologiques des cellules nerveuses et musculaires :

Excitabilité, transport et transduction de signaux

3. Histologie du système nerveux

3.1. Le système nerveux sympathique

3.2. Le système parasympatique

Travaux pratiques

4

1ère

séance : Etude des cellules sanguines

Observation d’un frottis sanguin et repérage des différentes cellules sanguines.

2ème

séance : Eude du sang : la numérotation globulaire

Comptage du nombre de globules rouges, de globules blancs et des plaquettes dans 1mm3e

sang dilué en utilisant les pipettes de dilutions et la cellule de Malassez.

3ème

séance : Les Groupes Sanguins

1. Le Système ABO

2. Le système Rhésus

4ème

séance : Etude des glandes endocrines

1. Pancréatectomie

2. Surrénalectomie

5ème

séance : Exercices

Bibliographie

Biologie et Physiologie animale : Cours et questions de révision (DUNOD).

Guide de travaux pratiques de Zoologie (Troisième édition) : Masson et Cie ŔParis.

5


2ème

année : BT2 LICENCE APPLIQUEE EN BIOTECHNOLOGIE A.U. : 2017/2018 Semestre (s) 1 Enseignant de la matière :


Type de matière cours Intitulé de la matière :

BIOTECHNOLOGIES ANIMALES Heure / semaine 1,5 h

Coefficient 3

Objectifs -Faire acquérir les notions de biologie de la reproduction et d’embryologie et de reproduction assistée

- Initier les étudiants à la culture et la manipulation de cellules animales ainsi qu’à la transgenèse animale.

Méthodologie Cours magistral

Enseignement de notions de la reproduction animale et les méthodes de la manipulation de la cellule animale

Pré Requis Embryologie, Biologie cellulaire, biochimie, biologie animale, génétique, microbiologie, biologie moléculaire

Evaluation Note des tests (30%) Contrôle Continu (70 %) la moyenne obtenu compte pour 40%


Plan du cours

INTRODUCTION A LA BIOTECHNOLOGIE

CHAPITRE 1 : NOTIONS DE BIOLOGIE DE LA REPRODUCTION ET

D’EMBRYOLOGIE

*La reproduction sexuée

*La reproduction asexuée

*Ontogenèse :

*Embryogenèse

*Développement post-embryonnaire

CHAPITRE 2 : CULTURE DE CELLULES ANIMALES

Sources des cellules

*La limite de Hayflick

*Les milieux de culture

*Intérêt des cellules en culture

*Comptage des cellules sur Malassez

*Essais de la thérapie cellulaire

CHAPITRE 3 : LE CLONAGE ANIMAL

*Définition

*Historique du clonage

*Les techniques du clonage

*Clonage reproductif

*Clonage thérapeutique

*Expérience de Dolly et les techniques du clonage animal

*Clonage humain

6

CHAPITRE 4 : TRANSGENESE ANIMALE :

*Définition

*Les types de transgénèse

*Les méthodes de transgénèse de gènes chez les animaux

*Techniques de transgénèse

* Les applications de la transgénèse

*La xénogreffe

CHAPITRE 4 : LA PROCREATION MEDICALEMENT ASSISTEE (PMA)

*Insémination artificielle (IA),

*Fécondation in vitro (FIV)

*Injection intra-cytoplasmique des spermatozoïdes-ICSI

*Conservation et transfert d’embryon, clonage.

CHAITRE 5 : LES GREFFES ET TRANSPLANTATIONS D’ORGANES

*Transplantation de la moelle osseuse

*Les greffes d’organes

Bibliographie

- Cours de microbiologie générale (édition DUNOD)

- Biochimie générale (édition DUNOD)

- Biologie moléculaire et cellulaire (édition DUNOD)

7


2ème

année : BT2 LICENCE APPLIQUEE EN BIOTECHNOLOGIE A.U. : 2017/2018 Semestre (s) 1 Enseignant de la matière:

BEZZAOUIA AMINA Semaines 14

Type de matière TP Intitulé de la matière :

BIOTECHNOLOGIES ANIMALES Heure / semaine 1,5 h

Coefficient 3

Objectifs

-Faire acquérir les notions de biologie de la reproduction et d’embryologie, de reproduction assistée

- Initier à la culture et la manipulation de cellules animales.

Méthodologie

TP/ TD

Pré Requis

Biologie cellulaire, biochimie, biologie animale, génétique, microbiologie, biologie moléculaire

Evaluation

Notes d’examens et travaux pratiques

Contrôle Continu (30 %) Examen Final (70 %)

Travaux pratiques

8

TPn° 1 : Culture cellulaire

Définition /Historique/ Application /Obtention de cellules/ Les étapes de la culture cellulaire/Milieux

de culture/Conditions de culture.

TPn°2 : Fusion ou hybridation cellulaire (partI)

Définition /comment s’effectue la fusion / la voie de sécrétion /la fusion virale

TPn° 3 : Fusion ou hybridation cellulaire (partII)

Formation du placenta /les ostéoclastes /obtention d’hybridomes.

TPn°4 : Insémination artificielle, fécondation in vitro, transfert et congélation

d’embrayons:

Insémination artificielle /Fécondation in vitro /Transfert et congélation d’embryons

TPn°5 : Greffe de moelle osseuse

Visite du centre national de greffe de la moelle osseuse :

Visite du service hospitalier, l’unité de cytaphérèse, le protocole de la collecte et la congélation des

cellules souches hématopoïétiques

Bibliographie


- Biochimie générale (édition DUNOD)

- Biologie moléculaire et cellulaire (édition DUNOD)

- projection de vidéo scientifique explicative (INSERM, odycée.....)

9

UE Fondamentales

UEF2

Enzymologie &Enzymatique

Génie des procédés

10

UNIVERSITÉ LIBRE DE TUNIS

Institut Polytechnique Privé (IP²) Semestre (s) 1 Enseignant de la matière:

INES BRAHMI Semaines 14

Type de matière Cours,

TD, TP Intitulé de la matière :

ENZYMOLOGIE ET GENIE ENZYMATIQUE Heure / semaine 3 h

Coefficient 3

Objectifs

-Acquérir des connaissances élémentaires concernant les enzymes, les propriétés des réactions

enzymatiques dans le cas de la cinétique Michaelienne

-Etudier et déterminer les paramètres de la cinétique Michaelienne en présence ou en absence des

effecteurs biologiques et physiques de la réaction enzymatique

-connaitre les méthodes de préparation et d’immobilisation des enzymes pour pouvoir les utiliser en

biotechnologie

Méthodologie

Cours Ŕ Travaux dirigés-travaux pratiques

Pré Requis

Chimie générale, Chimie organique, Biochimie Structurale, Math et Physique

Evaluation

Notes d’examens et travaux dirigés

Contrôle Continu+ Note de TP (30 %) Examen Final (70 %)

Plan du cours

ENZYMOLOGIE

Les enzymes

1- Définition

2- La catalyse enzymatique : état de transition et énergie d’activation

3- Spécificité enzymatique

4- Les cofacteurs enzymatiques

5- Classification des enzymes

Cinétique Michaelienne

1- Equation de Michaelis-Menten

2- Les phases de la réaction enzymatique

3- Détermination des constantes cinétiques Km et Vmax

4- Etape limitante de la réaction et signification de l’éfficacité

catalytique, unité enzymatique, et activité spécifique

5- Détermination des constantes cinétique à partir de représentations

graphiques (Représentation de Lineweaver et Burk et

Représentation d’Eadie Hofstee et autres représentations

graphiques)

11

I. Effecteurs de réaction enzymatique

1- Les différents types d’effecteurs de la réaction enzymatique

2- Les inhibiteurs (compétitifs, non compétitifs, incompétitifs) et

détermination des paramètres cinétiques

3- Influence de la température et du pH

4- Clonage thérapeutique et reproductif

GENIE ENZYMATIQUE I. Nature et origine des enzymes

II. Les préparations industrielles des enzymes

III. Les méthodes d’immobilisation des enzymes

1- Les méthodes physiques : immobilisation par adsorption

2- M Les méthodes chimiques : immobilisation par fixation

covalentes sur un support

IV. Les applications en biotechnologie

Travaux pratiques

TP N° 1 : Extraction d’une enzyme, l’invertase, à partir de la levure boulangère et établissement

d’une gamme étalon

TP N° 2 : Mesure de l’activité de l’invertase en fonction du temps

TP N°3 : Influence de la concentration de l’enzyme sur son activité

TP N°4 : Influence du pH sur l’activité de l’invertase

TP N°5 : Influence de la température sur l’activité de l’invertase

TP N°6 : Influence d’un inhibiteur sur l’activité de l’invertase

Bibliographie

-Enzymologie et Application, J.P. Sine, 2010

12


2ème

année : BT2 LICENCE APPLIQUEE EN BIOTECHNOLOGIE 2017-2018 Semestre (s) 1 Enseignant de la matière:

ASMA BEN SALEM Semaines 11

Type de matière Cours

intégré Intitulé de la matière :

Génie des procédés Heure / semaine 3 h

Coefficient 3

Objectifs

Les objectifs de ce cours sont :

- Faire comprendre les mécanismes d’écoulement des fluides, les lois de la diffusion de la

matière et de la chaleur ainsi que les mécanismes de transfert de matière et de chaleur entre

phases.

- Faire apprendre à établir des bilans

- Distinguer les différentes transformations

- Tracer les différentes transformations dans les diagrammes (P, V) et (T, S)

- Connaître les différents modes de propagation de la chaleur

- Faire apprendre à calculer de la distribution de température sur les parois chauffées.

Méthodologie

Cours - TP- TD - Sortie

Pré Requis

Mathématique -Physique- Chimie -

Evaluation

Notes d’examens et travaux pratiques -Contrôle continu (30%)-Examen final (70%)

Plan du cours

Introduction sur le génie des procédés

I- Bilan des procédés alimentaires

1-Généralités

2-Bilan de matière en régime permanent

II- Transfert de quantité de mouvement et machines thermiques

1- Rappel de thermodynamique

2- Les transformations réversibles

III-Transfert thermique 1- Conduction

2- Convection (nombre de Reynolds, nombre de Nusselt, le nombre de

Grashof (Gr), le nombre de Prandtl (Pr)

3- Rayonnement

Application : -Travaux dirigés pour chaque chapitre : établir des bilans /calculer les températures

pour chaque transfert / Calculer V1, T1, P1 et les énergies échangées au cours des

transformations et déterminer le type de transformation

-Travaux pratiques : Illustration et démonstration d’une opération unitaire : le séchage

Bibliographie

-Les bases de la thermodynamique, cours et exercices, 3eme édition DUNOD 2013

-Bruno Cheron, "Transfert thermique: Résumé du cours et problèmes corrigés", Ellipse 2009.

- Site web : www.technologuepro.com

http://www.technologuepro.com/

13

UE Fondamentales

UEF3

Génétique moléculaire

Génie génétique

14


2ème


MME HEND YOUNSI KAABACHI Semaines 14

Type de matière Cours-

TP-TD Intitulé de la matière :

GENETIQUE MOLECULAIRE Heure / semaine 3 h

Coefficient 3

Objectifs

-Connaître les différents types de mutations et leurs causes

-Comprendre le test de complémentation fonctionnel et ses applications

-Les suppresseurs et leurs modes d'action

Méthodologie

Cours -TP-TD

Pré Requis

Niveau de première année licence en biotechnologie ou équivalent

Evaluation

Notes d'examens (70%) et contrôle continu (30%)

Plan du cours

1. Rappels sur la nature, structure, organisation et fonctionnement du matériel génétique

2. Les mutations géniques :

2.1.Définition

2.2.Classes de mutation

2.3.Agents mutagènes et mode d'action

2.4.Gènes mutateurs et gènes anti-mutateurs

3. Test de complémentation fonctionnelle :

1- Principe et application in vivo

2- Applications in vitro

4. Les suppresseurs :

4.1.Définition :

4.2.Classes des suppresseurs et mode d'action

5. Régulation de l'expression des gènes

6. Notion de génétique inverse

Application : Travaux pratiques et travaux dirigés sur :

Recherche et sélection de mutants chez les bactéries et/ou phages

Test de croissance et de complémentation fonctionnelle

Détection de mutations par des techniques moléculaires

Des séries d'exercices seront proposés parallèlement aux étudiants comme complément du cours.

Bibliographie

-BIOLOGIE ET GENETIQUE MOLECULAIRE DE BERNARD SWYANGHEDAUW

GENETQIUE DE JEAN-LUIS SERRE

15


2ème


NIDHAL GHORBEL EPOUSE CHTOUROU Semaines 14

Type de matière Cours-

TP-TD Intitulé de la matière :

GENIE GENETIQUE Heure / semaine 3 h

Coefficient 3

Objectifs

- Permettre à l’étudiant de connaître et comprendre les concepts et méthodes théoriques et pratiques

en génie génétique

Méthodologie

Méthodes et outils pédagogiques, ouvrages de référence, recours aux TIC, possibilités

d’enseignement à distance.

Enseignements de cours et des activités pratiques (Purification, séparation et/ou amplification des

acides nucléiques, Etablissement de banques d’ADN (digestion, ligation, préparation de plasmides

recombinants, transformation, sélection de clones recombinants), Hybridation ADN/ADN, Criblage

de banques d’ADN, Analyse et établissement de cartes de restriction)

Pré Requis

Les compétences indispensables pour suivre ce module en génétique et en biologie moléculaire

Evaluation Régime mixte : contrôle continu et examens finaux

Plan du cours

I- Les outils du génie génétique

1- Définition du génie génétique

2- Les outils de base du génie génétique

2.1- Les enzymes agissant sur les acides nucléiques

2.1.1- Les enzymes de restriction

2.1.2- Les outils enzymatiques autres que les enzymes de restriction

2.2- Les vecteurs

2.2.1- Généralités

2.2.2- Les plasmides

2.2.3- Les phages

2.2.4- Les cosmides

2.2.5- Les vecteurs eucaryotes

2.2.6- Autres types de vecteurs : BAC, PAC, YAC, …

16

2.2.7- Les vecteurs navettes

2.2.8- Les vecteurs d’expression

II- Techniques de base en génie génétique

1- Préparation des acides nucléiques

1.1- Extraction et purification

1.2- Estimation des quantités d’ADN

1.3- Conservation de l’ADN

2- Rappel des techniques de séparation des acides nucléiques

2.1- Electrophorèse

2.2- Centrifugation

3- Clonage moléculaire

3.1- Principe et stratégies de clonage moléculaire

3.2- Les banques d’ADN

4- Détection et caractérisation des acides nucléiques

4.1- Hybridation moléculaire

4.2- Séquençage de l’ADN

5- Amplification, modification des acides nucléiques

5.1- Amplification enzymatique de l’ADN

5.2- La mutagenèse

6- Autres techniques

6.1- Cartographie à la nucléase S1

6.2- Polymorphisme de la taille des fragments de restriction (RFLP)

6.3- Amplification aléatoire de l’ADN polymorphe (RAPD)

TRAVAUX PRATIQUES ET DIRIGES

- Purification, séparation et/ou amplification des acides nucléiques

- Etablissement de banques d’ADN (digestion, ligation, préparation de plasmides

recombinants, transformation, sélection de clones recombinants)

-Détection de mutations par des techniques moléculaires

-Des séries d'exercices seront proposés parallèlement aux étudiants comme complément du cours

Bibliographie

- BIOLOGIE MOLECULAIRE DE LA CELLULE

GENE ET GENOME

17

UE Transversales

UET1

Anglais

Bioéthique / Biosécurité

Culture de l’entreprise

18


2ème


NASRA RANIA Semaines 14


ANGLAIS Heure / semaine 1,5 h

Coefficient 2

Objectifs

Familiarize students with the different language forms

Practise using the language in a practical context.

Evaluate information or experience (express judgement if information is correct, reasonable,

relevant and interesting )

Méthodologie

- reading comprehension

- oral skills

- writing on different topics

Pré Requis

Encourage the students to guess the meaning of unfamiliar words through context or situation.

Ability to produce their own comments ,analysis , ideas and report

Evaluation Cette matière est en régime Contrôle continue. L’évaluation porte uniquement sur le contrôle continu et la progressivité

dans le travail des étudiants.

Plan du cours

1. LESSON: Have a go

1.1.Students can learn and check the meaning of new vocabulary

1.2.Practice activities immediately after the presentation of vocabulary to help consolidate

the new language

1.3.Study grammar in realistic context

2. LESSON : Social networking :

2.1.Vocabulary and skills

2.2.Develop students’ range of receptive skills

2.3.Practice : exercises students’ book

3. LESSON : the best medicine:

3.1.Adjective feelings, preposition with adjectives

3.2.Listening how to relax reading: laugh?

3.3.Practice ; exercice student’s book

4. LESSON what’s the matter:

4.1.showing concern , giving and responding to advice:

4.1.1. intonation ; showing concern

4.1.2. positive and negative verb forms

4.1.3. Evaluation TEST ; Writing

4.2.IPART A - …Decisions and choices - Lesson / MAKE UP YOUR MIND

- make and do

- Grammar ; first conditional -future time clause

4.3.PART B : …What’s your opinion/ Discussion language

Bibliographie : face to face intermediate level

19


2ème


INES BRAHMI Semaines 14


BIOETHIQUE ET BIOSECURITE Heure / semaine 1,5 h

Coefficient 2

Objectifs

-Sensibiliser les étudiants aux problèmes liés aux développements des technologies en Sciences du Vivant

-Etudier l’impact de la biotechnologie sur la santé, la sécurité et l’environnement

-Identifier des approches d’évaluation des risques en présentant les normes et les législations ainsi que les

questions éthiques

Méthodologie

Cours intégrés Pré Requis

Biologie cellulaire, Biochimie, génétique, microbiologie, Biochimie

Evaluation

Notes d’examens et travaux dirigés -Contrôle Continu (30 %) - Examen Final (70 %)

Plan du cours

Introduction

II. Risques Biologiques et Biotechnologiques :

6- Microorganismes pathogènes et armes biologiques

7- Substances toxiques et cancérigènes

8- Organismes génétiquement modifiés

III. Concept de biosécurité

6- Principe de précaution

7- Méthodes d’évaluation de risque

8- Normes de sécurité

IV. Problèmes éthiques et avancées technologiques

5- Expérimentation animale

6- Essais cliniques

7- Reproduction médicalement assistée

8- Clonage thérapeutique et reproductif

9- Génétique prédictive

10- Thérapie génique

11- Don d’organe

V. Législation en Tunisie et conventions internationales

Bibliographie

-Amélioration des plantes et biotechnologies, Y. Dermarly et Sibi M.

-Manuel de prévention des risques associés aux techniques biologiques ; Application à

l’enseignement, J. Favelier et al, Elsevier, Paris

20


2ème


MME SALOUA TOUIL Semaines 14

Type de matière Cours Intitulé de la matière :

CULTURE ENTREPRENEURIALE 1 Heure / semaine 1,5 h

Coefficient 2

Objectifs

Ce cours de culture entrepreneuriale vise à sensibiliser l’étudiant aux principaux concepts à la base

des comportements, des motivations et des actions des entrepreneurs. Il vise également la

compréhension des notions d'entrepreneuriat, d'esprit d'entreprise et de culture entrepreneuriale ainsi

que leurs implications dans la société.

La diffusion de la culture entrepreneuriale à travers ce cours permettra de «déplacer» les jeunes

diplômés de la logique de demandeurs d'emploi à celle de pourvoyeurs d'emploi. Donner aux jeunes

générations l’envie de prendre leur avenir en main constitue le principal objectif de ce module

Méthodologie

Cours magistral

Du 25 septembre au 17 décembre 2017 : enseignement de notions théoriques relatives au module

accompagnées de diverses activités d’apprentissage actif

Pré Requis

Aucun

Evaluation

Cette matière est en régime Contrôle continue. L’évaluation porte uniquement sur le contrôle continu

et la progressivité dans le travail des étudiants.

Plan du cours

Chapitre 1 : L’entreprise

Chapitre 2 : L’entrepreneuriat

Chapitre 3 : La créativité

Chapitre 4 : L’entrepreneur

Bibliographie

Réf 1 : Drucker P. (1985), Les entrepreneurs, L'expansion Hachette.

Réf 2 : Fayolle A. (2004), Entrepreneuriat. Apprendre à Entreprendre, Dunod, Collection Gestion

Sup.

Réf 3 : Fayolle A. et Filion L-J., (2006), Devenir entrepreneur, Village Mondiale.

Réf 4 : Fayolle A. (2003), Le métier de créateur d’entreprise, Edition d’Organisation.

21

UE Optionnelles

UEo3

Management de la qualité

Instrumentation et métrologie

22


2ème


HANEN MONCEF Semaines 14


MANAGEMENT DE LA QUALITE Heure / semaine 1,5 h

Coefficient 3

Objectifs

-Faire connaître aux étudiants l’importance d’une démarche qualité au sein des

organisations/entreprises

-Faire connaître aux étudiants les enjeux de la qualité

-Faire connaître aux étudiants la relation entre la satisfaction du client et le système du

management de la qualité

Méthodologie

Cours-TD

Pré Requis

Statistiques, Mathématiques

Evaluation

Contrôle continu (30%) Examen Final (70%)

Plan du cours

Introduction Générale

I- Historique et évolution du management de la qualité :

1- Historique du management de la qualité

2- L'évolution de la démarche qualité

II- Principes du management de la qualité :

1- Origine des incidents

2- Les 7 principes du management de la qualité

III- Organisation internationale de la reconnaissance mutuelle

1- Principes et bases de la reconnaissance internationale

2- Organisation en international : de l’habilitation à la certification

IV- Environnement normatif du management de la qualité

1-Référentiels guides

2-Référentiels recommandations

Application : le management de la qualité dans les sociétés de service ……………

Bibliographie

-« l’approche processus » de Hans Brandenburg et Jean-Pierre Wojtyna - Editions

d'Organisation

- « Dictionnaire de la qualité » de Bernard Froman et Christophe Gourdon - AFNOR

- « Comprendre les normes ISO 9001 version 2000 » de Stéphane Mathieu - AFNOR

- « le guide qualité de la résolution de problème » De Katsuya Hosotani - Dunod

- « Guide des méthodes qualité », J.P. Hubérac - Maxima

23


2ème


MME. SENDA GHARBI Semaines 14


METROLOGIE ET INSTRUMENTATION Heure / semaine 1,5 h

Coefficient 3

Objectifs

- Connaître le vocabulaire du domaine de la métrologie

- Maîtriser les principaux outils de probabilités et de statistique pour établir les seuils de confiance

dans les résultats de mesurage

- Choisir les paramètres permettant d’instrumenter un procédé

Méthodologie

Cours- TD

Pré Requis

Statistiques, Mathématiques

Evaluation

Contrôle continu (30%) Examen Final (70%)

Plan du cours

1. Introduction :

1.1.Place de ma métrologie dans la démarche de management des risques

1.2.Le système de mesure

1.3.Principes essentiels du Système de Mesure

2. Système de mesure et Fonction métrologie :

2.1.Définition du système de mesure

2.2.La fonction Métrologie

2.3.ISO 10012 : 2003 : Domaine d’application/Termes et Définitions

3. Mesures et Incertitudes.:

3.1.Mesures et Incertitudes : Le processus de mesure/La confirmation métrologique

4. Introduction à la validation des méthode

4.1.Introduction

4.2.Validation des méthodes selon ISO 17025 : 2005

Termes et définitions

Prescriptions et Management

Prescriptions techniques

5. Cas d’application de validation

5.1.Définition d’une portée d’accréditation

5.2.La validation des méthodes

5.3.Exercices pratiques de calcul

Bibliographie

- Le système International d’unités- 8ème édition BIPM

- Norme ISO 10012 :2003

- Métrologie dans l’entreprise Ŕ Outil de la qualité Ŕ MFQ préface de Jean-René Fourtou,

AFNOR, 1996

- Norme ISO 17025 :2005-

LICENCE APPLIQUÉE EN BIOTECHNOLOGIE

Plan d'Etudes : BT2-Semestre 2

Unités d'enseignement (UE)

Volume

horaire Crédits

Coef Régime d'examen

UE Fondamentales C TP

Tot.

UCUE UCUE

UE UCUE UE

Contrôle

Continu

Régime

mixte

UEF1 Biochimie Métabolique 1,50 1,50 3,0 3 6

3 6

x

Microbiologie Industrielle 1,50 1,50 3,0 3 3 x

UEF2 Physiologie végétale 1,50 1,50 3,0 3 6

3 6

x

Biotechnologie végétale 1,50 1,50 3,0 3 3 x

UEF3 Opérations unitaires 1,50 1,50 3,0 3 6

3 6

x

Immunologie et Immunotechnologie 1,50 1,50 3,0 3 3 x

UE Transversales

UET1 Anglais II 1,50 1,5 2

6

2

6

x

Gestion d'entreprise 1,50 1,5 2 2 x

Statistiques 1,50 1,5 2 2 x

UE Optionnelles

UEOp4 Op 4,1 : Histologie 1,50 1,50 3,00 3

6 3

6

X

Op 4,2 : Optimisation et validation des méthodes

analytiques 1,50 1,50 3,00 3

3 X

Total/semaine 28,5 30 30

1

UE Fondamentales

UET1

Biochimie métabolique

Microbiologie Industrielle

2


2ème


SAMIRA FARES Semaines 1

Type de matière Cours/TD

/TP Intitulé de la matière :

BIOCHIMIE METABOLIQUE Heure / semaine 1,5 h cours

1,5h TD-TP

Coefficient 3

Objectifs

- Décrire les lois fondamentales qui sont à la base de l'aptitude de la cellule à extraire, transformer et

utiliser l'énergie pour l'édification de structure et pour son fonctionnement.

- Énoncer les bases sur lesquelles reposent la nomenclature des enzymes et les types de réactions et

introduire la notion de réactions réversibles et irréversibles.

- Montrer et décrire la logique des étapes de formation de l'énergie stockée sous forme d'ATP à

travers la succession des réactions, des enzymes, des coenzymes dans les voies cataboliques :

glycolyse, cycle tricarboxylique, Béta- oxydations des acides gras, phosphorylation oxydative, etc.

- Montrer comment établir le bilan énergétique de dégradation des molécules.

- Montrer et décrire la logique des étapes de la mise en réserve de l'énergie à travers les voies

anaboliques comme la néoglucogenèse, la glycogénogenèse. Montrer comment établir le bilan de

formation des molécules biochimiques de manière à en déterminer le coût énergétique pour la

cellule.

Méthodologie

- C'est une matière atypique qui mise sur la compréhension et l'apprentissage.

- Faire des fiches en approfondissant le cours peuvent être utiles. En effet, cela permettra de

réexpliquer divers mécanismes moléculaires et de vérifier la compréhension de l’étudiant via des

schémas.

- Les travaux dirigés et les travaux pratiques peuvent se révéler particulièrement utiles en

approfondissant le cours.

Pré Requis

Ce cours ne revient pas sur les structures de molécules de base vues en Biochimie structurale et sur

l’enzymologie. Il est conseillé aux étudiants aussi de revoir les chapitres de la chimie organique

traitant des propriétés des fonctions alcool, amine, acides carboxylique et phosphorique.

Evaluation



Plan du cours

I- Métabolisme des Glucides

1. La glycolyse

2. Cycle tricarboxylique

3. Phosphoryltion oxydative

4. Néoglucogenèse

5. Voie des pentoses phosphates

6. Cycle glyoxylique

7. Métabolisme du glycogène et sa régulation

II- Métabolisme des lipides : 1. Voie de dégradation des lipides et bilan énergétique

2. Voies de Biosynthèse des lipides

3

III- Métabolisme des acides aminés 1. Voie de Biosynthèse des AA

2. Voie de Dégradation des AA

VI- Cycle de l’Urée

1. Phases mitochondriale et cytosolique

2. Bilan du cycle

Travaux pratiques &dirigés

Travaux pratiques 1- Dosage de glycogène hépatique

2- Dosage de pyruvate

3- Dosage de cholestérol

Travaux dirigés 1- Bioénergétique et glycolyse

2- Cycle de krebs et chaine respiratoire

3- Cycle glyoxylique et métabolisme des lipides

4- Métabolisme des acides aminés

Bibliographie

Jacques Borg, André Reeber, Christian, Andrès, Biochimie métabolique, Paris, Ellipses Marketing,

2ème

édition, 2008.

Kai Meyer-Rogge, Sabine Meyer-Rogge, Biochimie métabolique, de boeck, 1ère édition, 201

4


2ème


COURS : FERIEL REZOUGA, Enseignant chercheur en Génie des

Procédés de l’environnement et en ingénierie des Industries Alimentaires,

Tél. : (+216) 71 84 21 09 , poste 253 email : feriel.rezouga@ult-

tunisie.com

Semaines 14


Heure / semaine 1,5 h

Coefficient 3


MICROBIOLOGIE INDUSTRIELLE

COURS

Objectifs

- Etudier les différentes applications des microorganismes en biotechnologie

- Se familiariser avec les cinétiques microbiennes

- Appliquer les bilans matières massiques sur un fermenteur -

Méthodologie

C’est un cours intégré organisé essentiellement autour de l’apprentissage des bases fondamentales

de la microbiologie générale sous forme de cours magistral et de Travaux Pratiques

Pré Requis

- Microbiologie générale

- Biochimie générale

- Opérations unitaires

- Bonnes pratiques de laboratoire

Evaluation

- Cours : DS + Examen final

- Travaux Pratiques : Comptes rendus + Examen TP

Plan du cours

1. Les microorganismes industriels

2. Les voies métaboliques et leur régulation

2.1. Cas de métabolites Iaires

2.2. Cas de métabolites IIaires

3. Technologie de fermentation

3.1. Cinétique de croissance microbienne

3.2. Les modes de conduites de fermentation

3.2.1. Conduite en milieu fermé (batch)

3.2.2. Alimentation en continu (CSTR)

3.2.3. Alimentation discontinue (Fed-Batch)

3.3. Bilan matière massique des fermentations

3.4. Opérations en aval des fermentations et récupération des métabolites (extraction,

purification et concentration).

4. Amélioration de la production des métabolites

4.1. Par voie génétique : amélioration des souches

4.2. Par voie fermentaire en régulant les différents paramètres de culture (pH, température,

aération, conduite etc...)

mailto:[email protected]

mailto:[email protected]

5

Bibliographie

- SINGLETON PAUL, BACTERIOLOGIE POUR LA MEDECINE, LA BACTERIOLOGIE ET LES

BIOTECHNOLOGIES, LIEGE BELGIQUE, DUNOD, 6ème

EDITION, 2005, 542 PAGES.

- MICROBIOLOGIE DE BOECK, 2010, MICROBIOLOGIE ET QUALITE DANS LES INDUSTRIES

AGROALIMENTAIRES, BIOSCIENCES ET TECHNIQUES, 2002, COURS DE MICROBIOLOGIE GENERALE,

BIOSCIENCES ET TECHNIQUES 2004, ARTICLES SCIENTIFIQUES DE SCIENCE DIRECT ET SPRINGER

- PAVLOVIC, M., BIOENGINEERING : A CONCEPTUAL APPROACH SPRINGER INTERNATIONAL

PUBLISHING AG; ÉDITION : 2015 ED., 11 OCTOBRE 2014, 298 PAGES

6


2 ème année LICENCE APPLIQUEE EN BIOTECHNOLOGIE A.U. : 2017/2018 Semestre (s) 2 Enseignante de la matière:

Jouda DHAMBRI Semaines 5


MICROBIOLOGIE INDUSTRIELLE

TP

Durée 1.5h s

Coefficient 3

Objectifs

Connaître les différentes applications biotechnologiques des microorganismes

Connaitre les différents types de fermentation

Méthodologie

Réalisation des manipulations

Pré Requis

Les bonnes pratiques du laboratoire

Les notions de base de microbiologie générale

Les techniques de manipulation en microbiologie générale

Evaluation Evaluation sommative :

Rédaction d’un compte-rendu à la fin de chaque séance de travaux pratiques

-Examen TP à la fin du semestre

Plan des Travaux pratiques

TP 1 : Etude des moisissures aux applications biotechnologiques / Fermentation des olives

- Observation microscopique et isolement des moisissures : Rhizopus nigricans / Pénicillium

roquefortii/ Aspergillus à partir de trois matrices différentes

- Suivi et comparaison de deux processus de fermentation des olives (fermentation spontanée

et fermentation dirigée en utilisation des ferments)

TP 2 : Etude de la croissance de la levure Saccaromyce cerevisae

Détermination de la concentration cellulaire par dénombrement sur gélose YPG

Détermination de la biomasse : mesure de la densité optique, matière sèche

TP 3 : Utilisation des ferments lactiques dans la préparation du yaourt

- Etude des ferments lactiques (Lactobacillus bulgaricus & Streptococcus thermophilus) :

Observation microscopique des ferments lactiques

- Suivi du processus de fermentation lactique : préparation d’un aliment fermenté (le yaourt) :

Suivi du pH au cours du processus de fermentation

Suivi de la production de l’acide lactique au cours de la fermentation (dosage par la soude Dornic)

Estimation de la viabilité des ferments lactiques (ensemencement de l’échantillon sur gélose MRS)

TP 4 : Fermentation alcoolique de Saccaromyce cerevisae : Etude en fermenteur de

laboratoire

- Connaître les différents composants du bioréacteur, son paramétrage et son utilité

- Suivi de la fermentation alcoolique de la levure :

- Détermination de la concentration cellulaire : dénombrement sur gélose

- Détermination de la biomasse : mesure de la turbidité et la matière sèche

- Suivi du Substrat à différents stades de fermentation : dosage du glucose par deux méthodes

différentes : dosage colorimétrique par DNS et dosage par HPLC

- Suivi du produit (éthanol) au cours de la fermentation par la méthode HPLC

7

UE Fondamentales

UET2

Physiologie végétale

Biotechnologie végétale

8


2ème


GHARBI IMENE Semaines 14

Type de matière Cours /

TD et TP Intitulé de la matière :

PHYSIOLOGIE VEGETALE Heure / semaine 3h

Coefficient 3

Objectifs

Tout comme les animaux, les végétaux arrivent à communiquer entre eux via des phénomènes et des

mécanismes qui leurs sont propres. Les étudiants doivent être capable de :

* Identifier les différentes classes d’hormones et les différents phénomènes contrôlés par chacune

d’entre elles.

* Mettre en relation les structures végétales et les mécanismes qui s’y déroulent.

* Etablir les rapports essentiels entre les fonctions, les structures, les milieux et les modes de vie des

plantes.

Méthodologie


schémas …afin de faciliter à l’étudiant la compréhension. Par ailleurs, le cours intègre des stratégies

de pédagogie actives :

*TD en groupe et possibilité de discussion des résultats, les étudiants peuvent se concerter (après

avoir traité les exercices chez eux, individuellement) et chaque étudiant doit justifier son idée.

D’anciens examens sont à faire par l’étudiant après assimilation du cours en classe et à corriger

ensemble afin qu’ils puissent avoir une idée sur le type de questions qu’ils pourraient avoir …

Pré Requis

Activation et re mémorisation des connaissances préalables.

Cours de biologie végétale et de biologie cellulaire de l’année précédente (BG1)

Evaluation

Note de TP (30%) Contrôle Continu (70 %) la moyenne obtenue compte pour 40%


Plan du cours

Chapitre I : L’appareil reproducteur des Angiospermes : la reproduction sexuée

1. Introduction

2. Structure de la fleur

2.1. pièces stériles

2.2. pièces fertiles

3. Le gamétophyte mâle : le grain de pollen

4. Le gamétophyte femelle : le sac embryonnaire

5. La pollinisation

6. La double fécondation

Chapitre II : Physiologie de la germination

1. La germination

2. Phases de la germination

3. Les deux types de germination

3.1. Germination épigée

9

3.2. Germination hypogée

4. Conditions de la germination

5. Influence des facteurs externes

5.1. eau

5.2. oxygène

5.3. température

5.4. lumière

6. Influence des facteurs internes

6.1. maturité

6.2. longévité / viabilité

6.3. dormance

7. Traitements favorisants la germination

8. Mobilisation (dégradation) des réserves

9. Mise en germination

Chapitre III : Les phytohormones : substances responsables de défense contre les stress

1. L’acide abscissique

1.1. Formation des graines et dormance

1.2. Action sur la fermeture des stomates

1.3. Dormance des bourgeons

2. L’éthylène

2.1. Stimulation de la maturation des fruits

2.2. Rôle dans le développement végétatif

2.3. Abscission des feuilles (ou d’autres parties de la plante)

2.4. Intervient dans des situations de stress

3. Le jasmonate

Chapitre IV : Métabolisme carboné des plantes vasculaires

1. Introduction

2. Les chloroplastes

2.1. Extraction et séparation des pigments chlorophylliens

2.2. Spectre d'absorption des pigments

3. Etapes de la photosynthèse

3.1. Les mécanismes de la phase claire

*Structure des photosystèmes (PS)

*Mécanismes des PS

*Transport des électrons dans la phase claire

3.2. Les mécanismes de la phase sombre

*Fixation du CO2

*Réduction du carbone fixé

*Régénération de l’accepteur de CO2

4. Les facteurs limitant de la photosynthèse

5. Les différents types de fixation du carbone

5.1. Les plantes en C3

5.2. Les plantes en C4

5.3. Les plantes CAM

10

Travaux pratiques

TP 1 : Germination : effet du sel sur la germination

TP 2 : Mise en évidence de la dégradation de l’amidon durant la germination

TP 3 : Mise en évidence de l’activité enzymatique : l’alpha amylase. Effet PH, concentration et

temps.

TP4 : Mise en évidence des changements au cours de la maturation d’un fruit climactérique

Bibliographie

Physiologie végétale. William G. Hopkins. De Boeck.

11


2ème


GHARBI IMENE Semaines 14

Type de matière Cours /

TD Intitulé de la matière :

BIOTECHNOLOGIE VEGETALE

COURS Heure / semaine 1h30

Coefficient 3

Objectifs

La biotechnologie végétale résulte d'un mariage harmonieux et stable entre la science des êtres

vivants : la biologie et un ensemble de techniques nouvelles utilisées en laboratoire. Elle est

considérée comme le perfectionnement des techniques d'amélioration génétique qui ont déjà

commencé il y a des millions d'années avec la culture de plantes sauvages pour la consommation

humaine.

La biotechnologie végétale est un domaine précis dans lequel des techniques scientifiques servent à

mettre au point de nouvelles variétés de plante. Elles s’appliquent sur des organes, des tissus, des

cellules ou sur de l’ADN des végétaux dont le but est d'augmenter la productivité de l’agriculture et

la fabrication de nouveaux produits par les plantes, comme par exemple des molécules

thérapeutiques ou des sources renouvelables d’énergie…

L’ingénierie génétique végétale peut entre autres procurer aux plantes des propriétés de résistance à

la sécheresse, aux pesticides, aux herbicides ou à des insectes.

L’étudiant est appelé durant ce cours à :

* Identifier et mémoriser les modes de reproduction naturelle et artificielle que la plante met en

place.

* Comparer ces modes de reproduction.

* S’initier puis examiner les différentes techniques utilisées de nos jours pour transformer les

plantes.

* Comparer les différentes techniques en fonction de leur utilité, faisabilité, intérêt scientifique,

agronomique, économique… en se mettant à la place du sélectionneur.

Méthodologie


schémas …afin de faciliter à l’étudiant la compréhension.

Le cours intègre des stratégies de pédagogie actives :

*1 2 tous : des questions sont posées aux étudiants, ils essayent d’y répondre individuellement puis

par groupe de deux puis un étudiant passe au tableau et corrige et ce sont ses camarades, tous

ensemble, qui discutent les réponses.

*TD en groupe et possibilité de discussion des résultats, les étudiants peuvent se concerter pour

identifier, classer, choisir, évaluer et comprendre ce qu’ils font...

Travaux dirigés à faire par l’étudiant au préalable chez lui et à corriger en classe. Généralement ce

sont d’anciens examens afin que l’étudiant puisse avoir une idée sur le type de questions qu’il

pourrait avoir …

12

Pré Requis

Activation et re mémorisation des connaissances préalables.

Cours de biologie végétale de l’année précédente (BT1)

Evaluation

Note de tests (30%) Contrôle Continu (70 %) la moyenne obtenue compte pour 40%


Plan du cours

Chapitre I : les tissus végétaux

I. Généralités

II. Les tissus indifférenciés : Les méristèmes

1. Méristèmes primaires

2. Méristèmes secondaires

III. Les tissus différenciés

1. Les tissus superficiels : de revêtement ou de protection

2. Les tissus vasculaires : Tissus conducteurs

Xylème

Phloème

3. Les tissus parenchymatiques : assimilateurs ou de réserves

4. Les tissus de soutien

Collennchyme

Sclérenchyme

5. Les tissus de sécrétion ou d’excrétion

Les cellules sécrétrices isolées

Les épidermes et les poils sécréteurs (cellules sécrétrices groupées) :

Les laticifères

Les poches et les canaux sécréteurs

Chapitre II : La multiplication végétative naturelle et artificielle des Angiospermes

Introduction

Multiplication par organes non spécifiques

1. Le bouturage

2. Le marcottage

2. 1. Le marcottage par couchage

2.2. Le marcottage aérien

3. L’éclatage

4. Le greffage

4.1. La greffe en fente

4.2. La greffe en chip-budding

5. La micro propagation

Multiplication par organes spécifiques

1. Les stolons

2. Les rhizomes

3. Les tubercules

4. Les bulbilles

Chapitre III : Les phytohormones, substances régulatrices du développement

1. Les auxines

1.1. Croissance cellulaire et différenciation

13

1.2. Différenciation des vaisseaux

1.3. Croissance des bourgeons axillaires

1.4. Allongement des racines et développement

1.5. L’abscission des feuilles

1.6. Développement des fleurs et des fruits

1.7. Les tropismes

Phototropisme

Géotropisme

Thigmotropisme

2. Les gibbérellines

2.1. Contrôle de l’allongement des tiges

2.2. La germination des graines

3. Les cytokinines

3.1. Division cellulaire et morphogénèse

3.2. Différenciation

3.3. Sénescence

3.4. Levée de dormance

3.5. Effet sur la mobilisation des métabolites

3.6. Modification de la dominance apicale

Chapitre IV : Biotechnologie végétale

1. La biodiversité : La diversité du vivant

1.1. Une constante évolution

1.2. La biodiversité agricole

2. La sélection végétale

2.1. Les principes de la sélection végétale

2.2. Les limites de la reproduction sexuée

3. La biotechnologie

3.1. La reproduction sexuée

3.2. Le sauvetage d'embryons : culture d’embryons immatures

3.3. Le sauvetage d'embryons : culture d’embryons interspécifiques

3.4. L'obtention de protoplastes

3.5. La transgénèse : issue du génie génétique

3.6. Les cartes génétiques

3.7. La sélection assistée par marqueurs

3.8. L’ haplodiploïdisation

Bibliographie

Amélioration des espèces végétales cultivées. INRA Editions.

14


2ème

année : BT2 LICENCE APPLIQUÉE EN BIOTECHNOLOGIE A.U. : 2017/2018 Semestre (s) 1 Enseignant de la matière:

BEZZAOUIA AMINA Semaines 14


BIOTECHNOLOGIES VEGETALES Heure / semaine 1,5 h

Coefficient 3

Objectifs

-Faire acquérir les notions de la culture in vitro, les règles générales d’asepsie

- Initier à la culture et la manipulation de cellules végétales ainsi qu’à la transgénèse végétale.

Méthodologie

TP

Pré Requis

Biologie cellulaire, biochimie, biologie végétale, génétique, microbiologie, biologie moléculaire

Evaluation



Plan des travaux pratiques

TPn° 1 : Le milieu de culture

TPn°2 : La culture des méristèmes

TPn° 3 : La culture des anthères

TPn°4 : La culture des protoplastes

TPn°5 : Les techniques de transfert de gènes.

TP n°6: Présentation de sujet traitant les thèmes étudiés et examen d’évaluation.

Bibliographie


- projection de vidéos scientifique(inserm, odycée).

15

*

UE Fondamentales

UET3

Opérations unitaires

Immunologie et Immunotechnologie

16


2ème

année : BT2 LICENCE APPLIQUÉE EN BIOTECHNOLOGIE A.U. : 2017/2018 Semestre (s) 2 Enseignant de la matière:

JAMEL KHERIJI Semaines 14

Type de matière Cours (1h30)

TP (1h30) Intitulé de la matière :

OPERATIONS UNIAIRES Heure / semaine 3 h

Coefficient 3

Objectifs

Comprendre le fonctionnement des différentes opérations unitaires du génie des

procédés.

Fournir à l’étudiant les outils nécessaires pour procéder au dimensionnement et au

calcul de tout l’appareillage utilisé dans l’industrie.

Méthodologie

Lister les opérations unitaires et les appareillages de séparation et de purification utilisées.

Citer plusieurs exemples précis d'applications industrielles pour chacune de ces opérations

unitaires.

Décrire précisément le principe de fonctionnement des opérations en identifiant les

phénomènes physicochimiques, les contraintes thermodynamiques et les limites cinétiques qui

dictent la séparation.

Repérer les paramètres opératoires qui dictent l'efficacité des procédés de séparation et

purification susmentionnés.

Etablir et calculer des bilans de matière et des bilans énergétiques à la fois pour des

procédés discontinus et continus et dimensionner des installations permettant de réaliser des

opérations unitaires.

Pré Requis

Notions fondamentales de la thermodynamique

Concentrations, fractions massique et molaire,

Calculs des bilans de matière et d’énergie

Evaluation

DS, tests et examen final

Plan du cours

I. Introduction aux opérations unitaires

1. Définitions

2. Classification des opérations unitaires

3. Processus continus et processus discontinus

4. Mode de mise en contact

5. Bilans

6. Etage théorique

II. Evaporation

1. Généralités

2. Facteurs influençant l’évaporation (concentration, solubilité, miscibilité, viscosité, écart de

la température…)

3. Equilibre liquide Ŕ vapeur

17

a. Diagramme d’équilibre

b. Pression de vapeur saturante

c. Vaporisation de l’eau : évaporation et ébullition

4. Evaporateur simple effet

a. Evaporateur flash

b. Evaporateur avec chauffage à la vapeur

c. Exemple d’évaporateur simple effet

Evaporateur à multiple-effetDS, tests et examen final

III. Distillation

1. Généralités

2. Equilibre liquide Ŕ vapeur d’un mélange binaire

a. Cas d’un mélange idéal

b. Mélanges zéotrope et azéotrope

c. Courbe d’équilibre liquide-vapeur

d. Principe de la distillation

3. Distillation simple

4. Distillation étagée (continue et discontinue)

5. Construction de McCabe et Thièle

a. NETmin

b. Rmin

c. NET, HEPT et efficacité

6. Manipulation : séparation d’un mélange binaire eau Ŕ éthanol

IV. Cristallisation

1. Généralités

2. Théorie de la cristallisation

3. Calculs des bilans de matière et d’énergie

4. Technologie

a. Cristallisation par refroidissement simple

b. Cristallisation par évaporation isotherme

c. Cristallisation par refroidissement et classification (type OSLO)

5. Manipulation : Evaporation cristallisation de sulfate de cuivre

V. Extraction liquide-liquide

1. Généralités

2. Théorie d’extraction liquide-liquide

3. Procédés d’extraction

4. Appareillage

5. Manipulation : Extraction liquide-liquide d’un mélange MIBC-Acide acétique

Bibliographie

Aide-mémoire « Génie chimique », édition Dunod, Emilian Koller.

Les Opérations Unitaires : Procédés Industriels Cours et Exercices Corrigés, Ellipses

Marketing, Daniel Morvan.

18


2ème

année : BT2 LICENCE APPLIQUÉE EN BIOTECHNOLOGIE A.U. : 2017/2018 Semestre (s) 2 Enseignant de la matière :


Type de matière Cours/TP Intitulé de la matière :

IMMUNOLOGIE ET IMMUNOTECHNOLOGIE Heure / semaine 3h

Coefficient 3

Objectifs

Le cours d’immunologie et immunotechnologie vise à donner une formation fondamentale en

immunologie et à fournir les connaissances nécessaires à la compréhension des mécanismes qui

conduisent aux immunopathies. Donc introduire l’histoire de l’immunologie ; l'immunité non

spécifique ; antigénicité et immunogénicité; cellules immuno-compétentes; organes du système

immunitaire; les immunoglobulines; les molécules du complexe majeur d'histocompatibilité et le

récepteur T; la régulation de la réponse immune; la réponse humorale; la réponse cellulaire. Les

techniques immunologiques utilisées dans un but de diagnostic d’analyse, de production, de

prévention et de traitement. Ces techniques sont basées sur l’application de connaissances

immunologiques fondamentales que l’étudiant devra maitriser.

Méthodologie

Méthodes et outils pédagogiques, présentation de documents audiovisuels

Les travaux dirigés sont organisés sous forme d’exercices écrits

Pré Requis

Les compétences indispensables pour suivre l’immunologie : Chimie, Biologie cellulaire et

moléculaire, Microbiologie, Génétique et Génie génétique

Evaluation Note des tests (30%) Note des TP (70 %) la moyenne obtenue compte pour 40%


Plan du cours

INTRODUCTION A L’IMMUNOLOGIE

1. Un peu d’histoire

2. Pourquoi un système immunitaire ?

CHAPITRE 1 : CONCEPTS EN IMMUNOILOGIE

1. Types d’antigènes

2. Critères d’immunogénicité

3. Les épitopes

CHAPITRE 2 : STRUCTURE ET ORGANISATION GENERALE DU SYSTEME

INMMUNITAIRE

1. Introduction

2. Les organes du Système Immunitaire

3. Les organes lymphoïdes Primaires

3.1.La moelle Osseuse

3.2.Le thymus

4. Les Organes lymphoïdes Secondaires

19

4.1.La Rate

4.2.Les Ganglions

CHAPITRE 3 : LES CELLULES DE L’IMMUNITE

1. Les cellules de la réponse immunitaire innée

1.1.Les phagocytes

1.2.Le mastocyte

1.3.Les cellules NK « Natural Killer »

2. Les cellules de la réponse immunitaire adaptative

2.1.Le lymphocyte T

2.2.Le lymphocyte B

3. Les cellules à interface entre les deux systèmes

3.1.La cellule NKT

3.2.Le lymphocyte Tδγ

CHAPITRE 4 : L’IMMUNITE INNEE

1. Les barrières aux infections

1.1.Facteurs mécaniques

1.2.Facteurs chimiques

1.3.Facteurs biologiques

2. Les facteurs solubles

2.1.La phagocytose et l’opsonisation

2.2.La cytotoxicité

CHAPITRE 5 : L’IMMUNITE ADAPTATIVE

1. Le lymphocyte T

1.1.Le TCR

1.2.Activation des lymphocytes T

1.3.Différentiation et polarisation des profils de lymphocyte T CD4+

1.4.Fonctions effectrices des lymphocytes Tcytotoxiques CD8+

2. les lymphocytes B

2.1.le BCR

2.2.La fonction effectrice des anticorps

3. La coopération entre lymphocytes T et B

4. La mémoire immunologique

Plan du TP et TD

TD n-°1 : Structure et diversité de anticorps : purification des Ig et d’anticorps par chromatographie

TD n-°2 : la réaction antigène anticorps et techniques d’étude

TD n-°3 : notion d’affinité, d’avidité et de spécificité

TDn-°4 : la précipitaion Ag/Ac

TP n-°5 : ELISA ET Immunoempreinte

Immunohistochimie, immunoflorescence, Cytométrie de flux

Préparation d’anticops monolonaux

Bibliographie

Immunologie Animale, Flammarion, Paris, 1990 Immunobiologie Janeway, 2ème édition française, édition deboek, 2003

20

UE Transversales

Anglais II

Gestion d'entreprise

Statistiques

21


Faculté Privé de Droit, d’Economie et de Gestion

2ème

année : BT2 LICENCE APPLIQUÉE EN BIOTECHNOLOGIE A.U. : 2017/2018


Ben Nasr Dorra Semaines 14



ANGLAIS II

Heure / semaine 1.5 h

Coefficient 2

Objectifs

Ce cours a pour objectif de développer la compréhension de l’anglais générale , d’aider les

étudiants à savoir communiquer oralement en anglais tout en respectant les règles grammaticales,

et de familiariser les étudiants avec les principes d’une langue étrangère et ses différents

domaines.

Méthodologie

Exposés théoriques. Exercices individuels et collectifs.

Pré Requis

Cours d’anglais II

Evaluation

40% _ 80%

Plan du cours

I- Work collocations

II- Reading and writing portfolio

III- Speaking

IV- Grammar

V- Use of Electronical devices

Bibliographie

-FACE TO FACE INTERMEDIATE LEVEL

-PROJECT THIRD EDITION

-NEW ENGLISH FILE INTERMEDIATE LEVEL

WRITING SKILLS :

HTTPS://AMERICANENGLISH.STATE.GOV/FILES/AE/RESOURCE_FILES/DEVELOPING_WRITING.

PDF

.

22


Institut Polytechnique Privé (IP²) 2

ème année : BT2 LICENCE APPLIQUÉE EN BIOTECHNOLOGIE A.U. : 2017/2018


MRABET ABIR Semaines 14


GESTION D’ENTREPRISE Heure / semaine 1,5 h

Coefficient 2

Objectifs

Ce cours de Gestion de L’entreprise vise trois objectifs essentiels :

- Permettre à l'étudiant de connaître l'entreprise et la nature de ses relations avec

l'environnement

- L'initier aux principes fondamentaux de gestion des principales fonctions de I'entreprise

- Préparer l'étudiant aux différentes spécialités de la gestion (Marketing, Finance, Gestion de

la production, Management, Gestion des ressources humaines)

Méthodologie

- Cours

- Travaux dirigés : Textes spécialisés, études de cas.

- Lecture d’appui pour chaque chapitre.

Pré Requis

Principe de Gestion de l’entreprise

Evaluation

Contrôle continu : 40%.-Examen final : 60%

Plan du cours

I- Chapitre Introductif : l’entreprise et son environnement

1. L’entreprise

2. Les typologies

3. L’environnement de l’entreprise

4. Les caractéristiques de l’environnement

II- Chapitre II : La fonction Marketing

1. le marketing, définition et objectifs

2. Le marketing, quelques caractéristiques

* Le marketing, trois approches

* Le démarche du marketing

Chapitre III : la fonction approvisionnement

1. Définition et objectifs de la fonction approvisionnement

2. Processus d’approvisionnement

3. Gestion des achats

4. Gestion des stocks

Chapitre IV : la fonction Production

3. La production, définition et objectifs

4. Les politiques de production

5. Les modes de production

6. Le processus de production

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Chapitre V : la fonction Ressources Humaines

1. Définition et objectifs de la fonction RH

2. Evolution de la fonction RH

3. Activités de la fonction RH

Chapitre VI : la fonction Financière

1. Définition et objectifs de la fonction financière

2. Financement de l’entreprise

3. Analyse financière

Application : Etudes de ca

Bibliographie

Barranger, P. et al. (1985). Gestion : Les Fonctions de l'Entreprise. Vuibert, Paris.

Bergeron, P-G. (1989). La Gestion Moderne : Théorie et Cas (2e ed.). Gaëtan Morin, Québec.

Koontz, H. et O’Donnel, C. (1978). Management : Principes et Méthodes de Gestion. McGraw-

Hill, Québec.

Rojot, J. et Bergmann A. (1995). Comportement et Organisation. Vuibert, Paris.

Terry, G.R. et Franklin, S.G. (1985). Les Principes du Management. Economica, Paris.

Zouaoui, M. et Zouaoui-Karoui, S. (1999). Le Management : Processus de gestion et fonctions de

l’entreprise. Editions CLE, Tunis.

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2ème


Issa MEHREZ Semaines 14


Statistiques

Heure / semaine 1,5 h

Coefficient 2

Objectifs

Le but de ce cours est de faire acquérir à l’étudiant une connaissance de notion de base des

principaux concepts en statistique.

Méthodologie

*Un travail personnel régulier est nécessaire pour la réussite de ce cours. La présence aux cours est

indispensable et constitue un facteur essentiel de réussite.

*Les périodes de cours consistent en exposés théoriques et en exemples

Pré Requis

Analyse combinatoire

Evaluation

Les examens sont évalués selon les critères suivants :

la qualité du déploiement d’un raisonnement mathématique

l’expression claire d’une démarche

la rigueur dans la justification des étapes

Plan du cours

Statistiques

I. Statistiques descriptives

1- Définition - Interprétations probabilistes

2- Caractéristiques ou paramètre d’une série statistique à une variable

3- Séries statistiques doubles

II. Estimations 1- Echantillonnage

2- Propriété des statistiques

3- Estimation

4- Estimation par intervalle de confiance.

Bibliographie

Pierre Dagnélie. Statistique théorique et appliquée. De Boeck Université, 1998.

J.-M. Azaïs et J.-M. Bardet : Le modèle linéaire par l’exemple. Dunod, 2006

F. Grosjean, J.-Y. Dommergues et G. Macagno : La Statistique en clair. Ellipses, 2011.

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UE Optionnelle

UE oP4

Histologie

Optimisation et validation des

méthodes analytiques

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2ème



Type de matière Cours/TP


HISTOLOGIE Heure / semaine

1,5 h

Cours

1,5h TP

Coefficient 3

Objectifs

L’histologie c’est la science qui s’occupe de l’étude des tissus entrant dans la constitution des

animaux. Donc faire de l’histologie, c’est aider les étudiants en Biologie, à la connaissance des

diverses structures cellulaires et tissulaires, la compréhension de leur fonctionnement et à retenir ce

qui est essentiel à leur formation en Sciences du vivant.

Méthodologie

Apporter le plus clairement possible, les notions de la structure des tissus des animaux qui

s’associent pour former les animaux à l’aide d’illustrations originales par des micrographies en

couleur. Quelques applications histologiques dans un laboratoire d’Histologie ouvrent ainsi une

perspective d’éducation à la santé et permet d’approfondir l’étude des méthodes permettant la

préparation des tissus.

Pré Requis

Des rappels anatomiques et embryologiques (cours de Biologie animale de la première

année) permettant de situer les tissus dans les organes et d’expliquer l’origine de chaque

tissu.

Evaluation Note des tests (30%) Note des TP (70 %) la moyenne obtenue compte pour 40%


Plan du cours

CHAPITRE 1 : TECHNIQUES DE PREPARATION DES TISSUS

3. Introduction

4. Méthodes d’études des cellules et des tissus

5. Les instruments d’observation 5.1.Les microscopes photoniques

5.2.Les microscopes électroniques

6. Techniques de préparation des tissus : techniques hiqtologiques

6.1.Introduction

6.2.Principes des techniques histologiques

6.3.Description des différentes étapes

6.3.1. La fixation

6.3.2. L’inclusion

La déshydratation

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L’imprégnation par un liquide intermédiaire

L’imprégnation à la paraffine

La mise en bloc

6.3.3. La confection, l’étalement et le collage des coupes

Confection des coupes

Etalement et collage des coupes

6.3.4. La coloration

Déparaffinage

Réhydratation

Coloration

6.3.5. Le montage

CHAPITRE 2 : LES TISSUS

Introduction : définitions et caractéristiques

1. Les tissus épithéliaux ou épithéliums

1.1.Les épithéliums de revêtement

1.1.1. Les épithéliums simples

1.1.2. Les épithéliums stratifiés

1.2.Les épithéliums glandulaires

1.2.1. Glandes exocrines

1.2.2. Glandes endocrines

1.2.3. Mode de sécrétion : Holocrine, mérocrine, apocrine.

2. Les tissus conjonctifs

2.1.Introduction

2.2.Constitutions

2.2.1. Les cellules

2.2.2. La substance fondamentale

2.2.3. Les fibres

Les fibres de collagènes

Les fibres de réticulines

Les fibres élastiques

2.3.Différents types de tissus conjonctifs

2.3.1. Les tissus purement conjonctifs

Le tissu conjonctif lâche

Le tissu conjonctif dense (fibreux) : régulier ou irrégulier

Le tissu conjonctif muqueux

2.3.2. Les tissus spécialisés

Le tissu adipeux

Le tissu cartilagineux

Les cellules : les chondroblastes, les chondrocytes, les

chondroplastes

La substance cartilagineuse

Différents types de tissus cartilagineux :

cartilage hyalin

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cartilage fibreux

cartilage élastique

Le tissu osseux

Les cellules : les ostéoblastes, les ostéocytes, les ostéoclastes.

La matrice extracellulaire

Différents types de tissus osseux

L’os réticulaire (non lamellaire)

L’os lamellaire

L’os compact

L’os spongieux

Le tissu sanguin

Le plasma

Les éléments figurés du sang

Les érythrocytes

Les thrombocytes

Les leucocytes

3. Le tissu musculaire

3.1.Le muscle squelettique

3.1.1. Structure de la fibre striée au microscope photonique

3.1.2. Structure fine de la fibre striée

3.2.Le muscle lisse viscéral

3.3.Le muscle cardiaque

4. Le tissu nerveux

4.1.Introduction

4.1.1. Anatomie

4.1.2. Origine

4.1.3. Protection

4.1.4. Rôles

4.1.5. Propriétés

4.2.Le neurone

4.2.1. Structure

4.2.2. Différents types

4.2.3. Fibres myélinisées et amyélinisées

4.2.4. Application clinique : sclérose en plaque

4.3.Les jonctions synaptiques

4.4.Le tissu nerveux central

4.5.Le tissu nerveux périphérique

CHAPITRE 3 : STRUCTURE DE QUELQUES ORGANES DE VERTEBRES

1. Les téguments

1.1.Structure générale de la peau

1.1.1. L’épiderme

1.1.2. Le derme

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1.1.3. L’hypoderme

1.1.4. Particularité de la peau selon le groupe de vertébrés

1.2.Les productions cutanées

1.2.1. Les glandes cutanées

Les glandes cutanées des Amphibiens

Les glandes cutanées des Mammifères

1.2.2. Les phanères

2. Le tube digestif

2.1.Structure générale de la paroi

2.1.1. La muqueuse

2.1.2. La sous-muqueuse

2.1.3. La musculeuse

2.1.4. La séreuse

2.2.L’œsophage

2.2.1. La muqueuse œsophagienne

2.2.2. La sous-muqueuse

2.2.3. La musculeuse

2.2.4. L’adventice

2.3.Le tractus gastro-intestinal

2.3.1. Structure générale de la paroi

2.3.2. La muqueuse stomacale

2.3.3. L’intestin

3. Etude de quelques glandes

3.1.Les glandes exocrines

3.2.Les glandes endocrines

3.2.1. La thyroïde

3.2.2. La glande surrénale

3.3.Les glandes amphicrines

3.3.1. Le pancréas

3.3.2. Le foie

4. Le rein

4.1.Anatomie du rein

4.2.Histologie du rein

4.2.1. Le néphron : le glomérule et le tubule

4.2.2. Les tubes collecteurs

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Plan du TP

TP n-°1 : Techniques histologiques : visite d’un laboratoire d’Histologie-Laboratoire de la Biologie

de la reproduction de la Faculté des Sciences de Tunis.

TP n-°2 : Etude des tissus épithéliaux de revêtement et glandulaires.

TP n-°3 : Etude des tissus conjonctifs, musculaires et nerveux.

TP n-°4 : Histologie de la peau et du tube digestif : (Œsophage Ŕ Estomac Ŕ Intestin).

TP n-°5 : Histologie du Rein, de la glande surrénale et du Foie.

Bibliographie

Histophysiologie (Atf BOUAZIZ-AZZOUNA). Centre de Publication Universitaire-2010

L’Histologie illustrée-Licences en Sciences du vivant : cours et Travaux Pratiques-(Saida

TEKAYA)-Centre de Publication Universitaire-2011.

Elément d’histologie.Maloine, Paris (BEVELANDER G, 1973).

Histologie des tissus, Masson, Paris. (POIRIER et al, 2000).

Histologie fonctionnelle. De Boeck Unversité. (WHETER P.R., YOUNG B., HEARTH J.W.

2001).

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2ème


GHALLOUZE CHELBI Leila Semaines 14


OPTIMISATION ET VALIDATION DES METHODES

ANALYTIQUES

Heure / semaine 3 h

Coefficient 3

Objectifs Acquisition des fondamentaux à la base des principes de la validation et l’optimisation des

méthodes Acquisition des connaissances relatives à la place de la validation des méthodes dans les

démarches de Management Qualité .

Méthodologie

*Un travail personnel régulier est nécessaire pour la réussite de ce cours. La présence aux cours est

indispensable et constitue un facteur essentiel de réussite.

*Les périodes de cours consistent en exposés théoriques et en exemples

Pré Requis

Connaissance en Démarche Qualité

Evaluation

Régime mixte : Contrôle continu et Examens finaux

Plan du cours

Chapitre 1 : Vocabulaire et définitions pour la Validation des Méthodes

Chapitre 2 : Place de la Validation des Méthodes dans la démarche de management qualité

- Objectifs d’un Système Qualité

- Caractéristiques d’un Système Qualité:

Conception

Mise en œuvre

Contrôle

- Validation et efficacité d’un Système Qualité

- Compétence, satisfaction des clients internes et externes et pérennité d’un Système Qualité

Chapitre 3 : Environnement Réglementaire et normatif de la Validation des Méthodes

- les Bonnes pratiques de laboratoire (BPL)

- le Guide de bonne exécution des analyses (GBEA)

- les normes d’accréditation

- les normes de certification

Chapitre 4 : Principes fondamentaux de la Validation des Méthodes

- Objectifs de la validation des méthodes :

Fiabilité de l’information

Prise de décision

- Qualification et tests

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Chapitre 5 : Organisation de la Validation des Méthodes

- Identification du besoin et du périmètre de validation

- Planification de la validation

Identification des responsabilités

Organisation de l’équipe de validation

Etablissement des procédures de validation

Mise à disposition des ressources

- Réalisation

- Interprétation des résultats et calcul des critères de performance requis

- Etablissement du dossier de validation

Rédaction de la méthode avec ses critères de performance

Compilation des enregistrements de validation

Chapitre 6 : Cas d’application : Validation de Méthodes Analytiques

- Méthodologie

- Méthodes de Référence et Méthodes Alternatives

- Plans d’expériences

- Essais Inter laboratoires pour le contrôle externe

Bibliographie

Documents

Livret regroupant les plans d’études et les syllabi · 1- Conduction 2- Convection (nombre de Reynolds, nombre de Nusselt, le nombre de ... -Les bases de la thermodynamique, cours